Адаптивный потенциал подвоя Rosa canina L., полученного in vitro, в условиях юга Западной Сибири

Автор: Васильева О.Ю., Амброс Е.В., Козлова М.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Клональное микроразмножение

Статья в выпуске: 3 т.57, 2022 года.

Бесплатный доступ

Размножение садовых роз проводится посредством прививки сортов на устойчивые подвои, преимущественно внутривидовые формы Rosa canina L. Подземная часть этих подвоев зимостойка даже в условиях лесостепи и южной тайги Западной Сибири, однако их системы побегов формирования (СПФ), на которых образуются генеративные побеги, повреждаются в период зимовок. В Центральном сибирском ботаническом саду СО РАН (ЦСБС, г. Новосибирск) проводятся многолетние исследования сезонного развития, онтогенеза, биоморфологии, репродуктивной биологии и зимостойкости видов шиповников из секции Caninae Crėp. В настоящей работе впервые приведены результаты многолетнего изучения зимостойкости и семенной продуктивности микроклонально размноженной высокозимостойкой отборной формы R. canina , дана оценка состояния СПФ после экстремальных зимовок. Выявлено, что после экстремальных зимовок растения отборной формы не переходят в категорию «временно не цветущих». Целью работы было введение в культуру in vitro и размножение посредством прямого органогенеза перспективной зимостойкой формы Rosa canina , используемой в качестве подвоя для садовых роз, а также оценка адаптивного потенциала у растений, полученных посредством клонального микроразмножения, в условиях континентального климата. Эксперименты in vitro проводили на отборной зимостойкой форме, выделенной в ЦСБС из растений F3 местной репродукции. Первичными эксплантами служили меристемы с двумя листовыми примордиями, изолированные из пазушных почек однолетних вегетативных побегов. На этапе введения в культуру in vitro экспланты культивировали в течение 3 сут на жидкой питательной среде по прописи Мурасиге-Скуга (МС), дополненной глутатионом (100,0 мг/л) и глюкозой (30,0 г/л). Для индукции прямого органогенеза использовали среду МС с 2,0 мг/л 6-бензиламинопурина (6-БАП) и 1,0 мг/л 3-индолилуксусной кислотой (ИУК). Собственно микроразмножение регенерантов проводили на среде МС с 1,0 мг/л 6-БАП. Микрорастения укореняли на среде МС с половинным содержанием микро- и макроэлементов, дополненной 1,0 мг/л ИУК. Переводу регенерантов в почвенную культуру предшествовало выращивание в контейнерах со стерильным песком, затем в горшках с субстратом, состоящим из смеси торфа с перлитом, перегноя, песка и кокосового субстрата (1:1:0,5:0,5). Дальнейшие исследования проводили в 2015-2021 годах на экспериментальном участке ЦСБС, расположенном в лесостепной зоне юга Западной Сибири (г. Новосибирск, Академгородок), которая характеризуется континентальным климатом. При изучении морфогенеза использовали классические и современные биоморфологические подходы, которые рассматривают кустарниковую форму роста как совокупность систем побегов формирования (СПФ) в пространстве и смену этих систем во времени. Сезонную динамику крахмала в побегах исследовали с помощью реакции с йодом в йодистом калии. Учитывали семенную продуктивность. На этапе собственно микроразмножения на средах с 1,0 мг/л 6-БАП получили 8±1 микропобегов на эксплант. При укоренении регенерантов на среде МС с половинным содержанием микро- и макроэлементов и 1,0 мг/л ИУК частота ризогенеза равнялась 60 %, число корней, развившихся у каждого микропобега, составило в среднем 2±1. Выявлено, что прегенеративный период у R. canina микроклонального происхождения сокращается на год, в онтогенетическое состояние g1 особи вступают на третий год, а образование парциальных кустов, которые могут быть использованы для пополнения семенных плантаций, начинается на четвертый год вегетации. В условиях континентального климата лесостепи Западной Сибири у всех особей отборной формы, размноженных in vitro, было отмечено ежегодное плодоношение на побегах выше снегового покрова. Исключением была зимовка 2020-2021 годов, однако даже после суровой зимовки гипантии сформировались в нижней части СПФ. Продолжительное снижение температуры до -30 °С в декабре приводило к частичному повреждению средней части СПФ, кратковременное снижение температуры воздуха до -28 °С в январе не наносило серьезных повреждений даже средней части СПФ. Отборная форма оказалась также устойчива к сильным весенним заморозкам во II декаде мая. При благоприятных зимовках и сохранении терминальных почек СПФ зрелых генеративных растений (g2) продолжала нарастать в высоту. Сочетание двух благоприятных зимовок подряд привело к образованию и сохранению мощных СПФ до 2 м высотой, а также к формирова-нию на укороченных плодовых побегах преимущественно 2-3 гипантиев с высоким числом выполненных семян. Гидролиз крахмала у тех побегов R. canina , у которых в октябре отмечалось полное опадение листьев (фенофаза Л5), практически завершался в ноябре, однако единичные крахмальные зерна еще находились в однорядных и многорядных сердцевинных лучах, а также перимедуллярной зоне.

Еще

Rosa canina, клональное микроразмножение, онтогенез, парциальный куст, семенная продуктивность, гистохимические исследования, лесостепь западной сибири

Короткий адрес: https://sciup.org/142236343

IDR: 142236343   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2022.3.579rus

Список литературы Адаптивный потенциал подвоя Rosa canina L., полученного in vitro, в условиях юга Западной Сибири

  • Balaj N.X., Zogaj R. Production seedlings of roses by grafting with bud for hybrid teas and climbing roses cultivars. Research Journal of Agricultural Science, 2011, 43(2): 155-160.
  • Шагапов Р.Ш., Шагапов Р.Р. Подвои шиповника для культурных роз в Приуралье. Известия Оренбургского государственного аграрного университета, 2016, 2(58): 144-145.
  • Plugatar Yu.V., Klimenko Z.K., Zykova V.K., Plugatar S.A. Methods and results of roses' breeding from different garden groups in the south of Russia. Acta Horticulturae, 2019, 1255: 31-34 (doi: 10.17660/ActaHortic.2019.1255.6).
  • Plugatar S., Klimenko Z., Zykova V., Kuzmenko D. Reproductive traits of some hybrid tea rose cultivars from the collection of the Nikita botanical gardens. Acta Horticulturae, 2021, 1324: 159164 (doi: 10.17660/ActaHortic.2021.1324.24).
  • Хржановский В.Г. Розы. М., 1958.
  • Васильева О.Ю. Биологические особенности видов рода Rosa L, интродуцируемых в качестве подвоев в Западной Сибири. Докт. дис. Новосибирск, 2002.
  • Werlemark G., Nybom H. Dogroses: botany, horticulture, genetics, and breeding. In: Horticultural Review. Vol. 36/J. Janick (ed.). John Wiley, New Jersey, 2010 (doi: 10.1002/9780470527238.ch4).
  • Verma M.K., Lal S., Nazeer A., Sagoo P.A. Character association and path analysis in hip rose (Rosa sp.) accessions collected from North Western Himalyan region of Kashmir. African Journal Agricultural Research, 2013, 8(39): 4949-4955 (doi: 10.5897/AJAR2013.6950).
  • Üzün I., Bayir A. Horticultural biodiversity in Turkey. Bulletin UASVM Horticulture, 2009, 66: 536-543 (doi: 10.15835/buasvmcn-hort:4418).
  • Iakovoglou V., Radoglou K. Breaking seed dormancy of three orthodox Mediterranean Rosaceae species. Journal Environmental Biology, 2015, 36(2): 345-349.
  • Izadi Z., Zarei H., Alizadeh M. Studies on vegetative propagation of Rosa canina. Indian Journal of Horticulture, 2012, 69(4): 598-601.
  • Jürgens A., Seitz B., Kowarik I. Genetic differentiation of Rosa canina (L.) at regional and continental scales. Plant Syst. Evol, 2007, 269: 39-53 (doi: 10.1007/s00606-007-0569-3).
  • Кожевникова З.В., Кожевников А.Е. Новые и редкие виды заносных растений для флоры Российского Дальнего Востока. Комаровские чтения, 2017, 65: 89-102.
  • Grant V. Plant speciation. 2nd ed. Columbia University Press, New York, NY, 1981.
  • Vasil'eva O.Yu. Reproduction systems of representatives of the genus Rosa L. under condition of continental climate. Contemporary Problems of Ecology, 2009, 2(4): 361-368 (doi: 10.1134/S1995425509040109).
  • Elliott R.F. Axenic culture of meristem tips of Rosa mutiflora. Planta, 1970, 95: 183-186 (doi: 10.1007/BF00387250).
  • Walter R.J., Kamp M., Smith R.H. In vitro propagation of Rosa chinensis Jacq. Red Cascade. Journal of the Rio Grande Valley Horticultural Society, 1979, 33: 125-127.
  • Voyiatzi C., Voyiatzis D.G., Tsiakmaki V. In vitro shoot proliferation rates of the rose cv. (hybrid tea) 'Dr. Verhage', as affected by apical dominance regulating substances. Scientia Horticulturae, 1995, 61(3-4): 241-249.
  • Markovic M., Dunisijevic-Bojovic D., Skocajic D., Milutinovic M., Buvac K. Optimizing the micropropagation protocol for Rosa canina L. elite genotype propagation in the Belgrade area. Glas-nik Sumarskog fakulteta, 2021, 123: 87-96 (doi: 10.2298/GSF2123087M).
  • Badzian T., Hennen G.R., Fotyma-Kern J. In vitro rooting of clonal propagated miniature rose cultivars. Acta Hortic, 1991, 289: 329-330 (doi: 10.17660/ActaHortic.1991.289.81).
  • Canli F.A., Kazaz S. Biotechnology of roses progress and future prospects. Suleyman Demirel Universitesi Orman Fakultesi Dergisi (Seri: A), 2009, 1: 167-183.
  • Shirdel M., Motallebi-Azar A., Matloobi M., Zaare-Nahandi F. Effects of nodal position and growth regulators on in vitro growth of dog rose (Rosa canina). Journal of Ornamental and Horticultural Plants, 2013, 3(1): 9-17.
  • Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, 1962, 15(3): 473-497 (doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x).
  • Ambros E.V., Vasilyeva O.Yr., Novikova T.Iv. Effects of in vitro propagation on ontogeny of Rosa canina L. micropropagated plants as a promising rootstock for ornamental roses. Plant Cell Biotechnology and Molecular Biology, 2016, 17(1-2): 72-78.
  • Методика фенологических наблюдений в ботанических садах СССР. М., 1975.
  • Мазуренко М.Т., Хохряков А.П. Структура и морфогенез кустарников. М., 1977.
  • Savinykh N.P., Cheryomushkina V.A. Biomorphology: current status and prospects. Contemporary Problems of Ecology, 8: 541-549 (doi: 10.1134/S1995425515050121).
  • Васильева О.Ю. Структура и морфогенез шиповников при адаптации к экстремальным условиям резко континентального климата. Бюллетень Московского общества испытателей природы. Отдел биологический, 2007, 112(3): 53-57.
  • Онтогенетический атлас растений /Л.А. Жукова (отв. ред.). Йошкар-Ола, 2013.
  • Васильева О.Ю. Оценка зимостойкости видов и сортов роз с использованием гистохимических методов. Садоводство и виноградарство, 2016, 3: 29-34 (doi: 10.18454/VSTISP.2016.3.1919).
  • Методические указания по семеноведению интродуцентов. М., 1980.
  • Козлова М.В., Васильева О.Ю., Юданова С.С. Семенная продуктивность видов семейства Rosaceae, используемых в качестве подвоев в условиях лесостепи Западной Сибири. Вестник КрасГАУ, 2020, 5: 24-30 (doi: 10.36718/1819-4036-2020-5-24-30).
  • Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). 5-е изд., доп. и перераб. М., 1985.
  • Козлова М.В. Эколого-биологические особенности Rosa glauca Pourr., Rosa canina L., Rosa majalis Herrm. при использовании в качестве подвоев садовых роз в лесостепи Западной Сибири. Самарский научный вестник, 2021, 10(4): 61-67.
  • Rosenunterlagen: Mutter Pflanzen sollten nicht stiefmbtterlich behandelt werden. Dt. Baumschule, 1979, 31(7): 254-255 (цит. по Коробов В.И. Розы в открытом грунте Западной Сибири). Новосибирск, 1981.
Еще
Статья научная