Активность антиоксидантных ферментов у разных видов моллюсков в условии гипоксии / аноксии
Автор: Истомина А.А., Довженко Н.В., Бельчева Н.Н., Челомин В.П.
Журнал: Известия Самарского научного центра Российской академии наук @izvestiya-ssc
Рубрика: Биологические ресурсы: фауна
Статья в выпуске: 1-5 т.13, 2011 года.
Бесплатный доступ
В экспериментальных условиях было исследовано действие гипоксии/аноксии на активность антиоксидантных ферментов в тканях пищеварительной железы Spisula sachalinensis, Crenomytilus grayanus, Patinopecten yessoensis, Littorina mandschurica, Tegula rustica. Обнаружены видовые различия в реагировании антиоксидантных ферментов на условия недостатка кислорода, что, вероятно, определяется особенностями условий существования видов.
Гипоксия/аноксия, супероксиддисмутаза, каталаза, глутатионредуктаза
Короткий адрес: https://sciup.org/148199807
IDR: 148199807
Текст научной статьи Активность антиоксидантных ферментов у разных видов моллюсков в условии гипоксии / аноксии
биомаркеров стресса, вызванного гипокси-ей/аноксией [10].
В данной работе на 5 видах моллюсков, характеризующихся различной устойчивостью к недостатку кислорода, исследовалась активность 3 антиоксидантных ферментов (супероксиддис-мутазы (СОД), каталазы (КАТ), глутатионредук-тазы (ГР)) в условии гипоксии/аноксии. Цель данного исследования состояла в выявлении особенностей изменения активности антиоксидантных ферментов у моллюсков при недостатке кислорода.
Материалы и методы. В работе были использованы двустворчатые моллюски – мактра сахалинская ( Spisula sachalinensis ) , мидия Грея ( Crenomytilus grayanus ) , приморский гребешок ( Patinopecten yessoensis) и брюхоногие моллюски – литторина маньчжурская ( Littorina mand-schurica ) , тегула простая ( Tegula rustica ) . Экспериментальную аноксию создавали при выдерживании моллюсков S. sachalinensis и C. grayanus на воздухе с принудительно сомкнутыми створками раковин [4] в течение 24 часов, P. yessoensis выдерживали на воздухе в течение 20 часов, L. mandschurica и T. rustica выдерживали на воздухе в течение 30 часов. Моллюсков выдерживали на воздухе при температуре равной температуре морской воды на момент отбора. Ткань пищеварительной железы гомогенизировали в 0.05 М Трис-НСl буфере, рН 8.0, содержащем 0,1 мМ фенилметансульфонилфторид, и центрифугировали в течение 40 мин при 10 000 об/мин. при + 4°С. Активность СОД определяли по ингибированию реакции окисления НАДН, вызванного супероксидным радикалом [7]. Активность КАТ определяли по реакции разложения перекиси водорода [8]. Активность ГР определяли по реакции восстановления окисленной формы глутатиона. В качестве восстановителя использовали НАДФН [8].
Все цифровые данные представляют собой среднее значение для четырех проб ± стандартное отклонение (M±m). Для двустворчатых моллюсков каждая проба – отдельная особь, для брюхоногих – объединение ткани от 10 особей. Статистическая обработка материалов выполнена с использованием статистических средств приложения MS Office Excel. О достоверности изменений исследуемых параметров судили по различиям средних значений, используя критерий Стьюдента. В расчетах принят 5% уровень значимости.
Результаты и обсуждение. Результаты экспериментов показали, что при гипок-сии/аноксии не наблюдалось однотипного изменения активности антиоксидантных ферментов для всех видов моллюсков (табл. 1). Можно выделить 3 способа изменения активности (реагирования) антиоксидантных ферментов при ги-поксии/аноксии: 1) увеличение, 2) снижение, 3) поддержание активности на прежнем уровне (табл. 2).
Первый способ реагирования (увеличение активности АО ферментов) наблюдался у S. sa-chalinensis и L. mandschurica. Данные виды отличались от остальных повышением активности СОД (в 3 и 2 раза, соответственно) и ГР (в 2 и 1.5 раза, соответственно). Известно, что супероксид-дисмутаза является одним из главных ферментов антиоксидантной защиты, обезвреживающий супероксидный анион радикал (О2.-), который образуются при восстановлении молекулярного кислорода в процессе аэробного метаболизма. А глутатионредуктаза является ферментом, восстанавливающим дисульфидную связь окисленного глутатиона (важного внутриклеточного антиоксиданта). По-видимому, особые условия существования этих видов являются причиной периодичного усиления продукции АФК в тканях пищеварительной железы. Так, мактра сахалинская временно закапывается в грунт и, таким образом, оказывается в условиях гипоксии/аноксии. А литторина маньчжурская подвержена постоянному ежедневному изменению условий обитания на литорали, что связано с фазами прилива и отлива. Вероятно, процесс повышения активности данных антиоксидантных ферментов при гипок-сии/аноксии в экспериментальных условиях у данных видов протекает на основе их способности быстро реагировать на повышенную индукцию АФК. Эти моллюски адаптированы к постоянной смене условий существования и адаптация, возможно, заключается в изменении активности антиоксидантных ферментов.
Таблица 1. Изменения в активности АО ферментов при гипоксии/аноксии в тканях пищеварительной железы моллюсков (M±m)
Вид |
Время, час |
СОД, ед.ак/мг белка |
КАТ, мкмоль/мин/мг белка |
ГР, нмоль/мин/мг белка |
|||
К |
Г/А |
К |
Г/А |
К |
Г/А |
||
Spisula sa-chalinensis |
24 |
308±93 |
925±196 * |
492±10 |
345±39* |
58±4 |
112±5* |
Crenomytilus grayanus |
24 |
270±115 |
362±109 |
61±19 |
66±11 |
78±10 |
58±12 |
Patinopecten yessoensis |
20 |
88±13 |
64±29* |
57±9 |
54±10 |
21±1 |
15±2* |
Littorina mand-schurica |
30 |
93±3 |
196±22* |
260±60 |
219±82 |
3±0.4 |
5±0.3* |
Tegula rustica |
30 |
56±4 |
49±4 |
44±3 |
53±7 |
8±0.4 |
9±1* |
Примечание: СОД – супероксиддисмутаза, КАТ – каталаза, ГР – глутатионредуктаза; К – контроль, Г/А – гипоксия/аноксия; * – достоверные различия относительно контроля (n=4, р<0.05).
Второй способ реагирования (снижение активности АО ферментов) наблюдался у P. yes-soensis – активность ферментов СОД и ГР была подавлена на 25% и 30%, соответственно. Приморский гребешок является стенооксифильным, чувствительным к недостатку кислорода видом, обитающим в относительно стабильных условиях сублиторали, и благодаря активному передвижению может уходить в более благоприятные места при гипоксии/аноксии. Вероятно, поэтому гребешок не был способен ни к усилению, ни к поддержанию активности АО ферментов на обычном уровне в стрессовых условиях гипок-сии/аноксии. Возможно также, что у приморского гребешка по сравнению с другими исследованными нами видами антиоксидантные ферменты оказались менее устойчивыми к изменению внутриклеточной среды при недостатке кислорода.
Таблица 2. Направленность реагирования АО ферментов пищеварительной железы моллюсков на условия гипоксии/аноксии
Вид |
Время, часы |
СОД |
КАТ |
ГР |
Spisula sa-chalinensis |
24 |
↑ |
↓ |
↑ |
Littorina mand-schurica |
30 |
↑ |
↔ |
↑ |
Crenomytilus grayanus |
24 |
↔ |
↔ |
↔ |
Tegula rustica |
30 |
↔ |
↔ |
↑ |
Patinopecten yessoensis |
20 |
↓ |
↔ |
↓ |
Примечание: ↑ - достоверное увеличение активности фермента, ↓ - достоверное снижение активности фермента, ↔ - поддержание активности фермента на прежнем уровне
Третий способ реагирования (поддержание активности АО ферментов на прежнем уровне) наблюдался у C. grayanus и T. rustica , у которых активность ферментов оставалась неизменной при гипоксии/аноксии. Как мидия Грея, так и тегула простая являются эволюционноадаптированными к более постоянным условиям существования (оба вида обитают на сублиторали, ведут прикрепленный и малоподвижный образ жизни соответственно) и не испытывают резкой смены кислородного режима, как это наблюдается у литоральных и закапывающихся моллюсков. Вследствие этого, вероятно, они не способны к быстрому изменению активности антиоксидантных ферментов. Однако они способны поддерживать активность АО ферментов на нормальном (прежнем) уровне. Возможно также, что в тканях этих моллюсков при временном усилении образования АФК в условиях недостатка кислорода задействованы, главным образом, низкомолекулярные компоненты антиоксидантной защиты [6].
Выводы: наш эксперимент показал, что видовые различия в реагировании антиоксидантных ферментов моллюсков на условия гипок-сии/аноксии, вероятно, связаны с особенностями условий их существования. Данные эксперимента также подтверждают возможность использования антиоксидантных ферментов в качестве биохимических маркеров стрессового воздействия, в частности гипоксии/аноксии. Понимание всех возможных механизмов реагирования компонентов АО системы – важный шаг для дальнейших исследований в области прогноза выживаемости организмов при гипоксии/аноксии.
Список литературы Активность антиоксидантных ферментов у разных видов моллюсков в условии гипоксии / аноксии
- Almeida, E.A. Oxidative stress in digestive gland and gill of the brown mussel (Perna perna) exposed to air and resubmersed/E.A. Almeida, A.C.D. Bainy, A.L. Dafre et al.//J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2005. V. 318. P. 21-30.
- Chen, M. Immune responses of the scallop Chlamys farreri after air exposure to different temperatures/M. Chen, H. Yang, M. Delaporte et al.//J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 2007. V. 345. P. 52-60.
- Diaz, R.J. Spreading dead zones and consequences for marine ecosystems//Science. 2008. V. 321. P. 926-929.
- Eertman, R.H.M. "Survival in air" of the blue mussel Mytilus edulis L. as a sensitive response to pollution-induced environmental stress/R.H.M. Eertman, A.J. Wagenvoort, H. Hummel, A.C. Smaal//J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1993. V. 170. P. 179-195.
- Irato, P. Antioxidant responses to variations in dissolved oxygen of Scapharca inaequivalvis and Tapes philippinarum, two bivalve species from the lagoon of Venice/P. Irato, E. Piccinni, A. Cassini, G. Santovito//Mar. Pollut. Bull. 2007. V. 54. P. 1020-1030.
- Pannunzio, T.M. Antioxidant defenses and lipid peroxidation during anoxia stress and aerobic recovery in the marine gastropod Littorina littorae/T.M. Pannunzio, K.B. Storey//J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1998. V. 221. P. 277-292.
- Paoletti, F. A sensitive spectrophotometric method for the determination of superoxide dismutase in tissue extracts/F. Paoletti, D. Aldinuccio, A. Mocali, A. Carpar-rini//Anal. Biochem. 1986. V. 154. P. 526-541.
- Regoli, F. Glutathione, glutathione-dependent and antioxidant enzymes in mussel, Mytilis galloprovincialis, exposed to metals under field and laboratory conditions: implications for the use of biochemical biomarkers/F. Regoli, G. Principato//Aquat. Toxicol. 1995. Vol. 31. P. 143-164.
- Ross, S.W. Physiological (antioxidant) responses of estuarine fishes to variability in dissolved oxygen/S.W. Ross, D.A. Dalton, S. Kramer, B.L. Christensen//Com-parative Biochemistry and Physiology. 2001. V. 130. P. 289-303.
- Santovito, G. Antioxidant responses of the Mediterranean mussel, Mytilus galloprovincialis, to environ-mental variability of dissolved oxygen/G. Santovito, E. Piccinni, A. Cassini et al.//Comparative Biochemistry and Physiology. 2005. V. 140. P. 321-329.
- Wu, R.S.S. Hypoxia: from molecular responses to ecosystem responses//Marine Pollution Bulletin. 2002. V. 45. P. 35-45.