Активность трипсина в молоке коров повышается при маститах одновременно с экспрессией генов воспаления

Автор: Вертипрахов В.Г., Селионова М.И., Малородов В.В., Лаптев Г.Ю., Ильина Л.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Механизмы защиты и адаптации

Статья в выпуске: 4 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

Мастит - одна из самых серьезных проблем в молочном животноводстве. Маститом часто страдают высокоудойные коровы, при этом их продуктивность снижается на 10-15 %, а нарушения функции молочной железы могут оказаться необратимыми. При клиническом течении патология имеет явные диагностические признаки. Основные известные способы диагностики субклинических форм мастита (маститные тесты) базируются на определении соматических клеток в молоке, число которых коррелирует с воспалением, но разработка методов ранней диагностики мастита и предмаститного состояния коров остается актуальной. При маститах также анализируют биохимические показатели и морфологические профили крови животных, экспрессию генов, ассоциированных с воспалением. Однако вопросы присутствия в молоке животных ферментов до конца не изучены. Трипсин рассматривают в качестве гормоноподобного вещества, способного влиять на метаболизм и быть маркером воспалительных процессов у животных и человека. Ранее мы изучили роль трипсина при экспериментальном токсикозе кур и изменении рационов. В представленном исследовании нами впервые выявлен трипсин в молоке коров, увеличение его активности при мастите установлено и сопоставлено с изменением других показателей, используемых для оценки состояния животных при патологии. Цель настоящей работы - выявить активность трипсина в молоке здоровых и больных маститом коров и определить количество соматических клеток в молоке, относительную экспрессию генов, ассоциированных с воспалениями, а также морфо-биохимические показатели крови. Результаты, полученные на 25 коровах ( Bos taurus ) Айрширской породы (10 лактирующих коров без клинических признаков мастита и 15 коров с клиническими признаками мастита, СГЦ «Смена» - филиал ФНЦ ВНИТИП РАН, Московская обл., 2022 год) показали, что активность трипсина в молоке изменялась в зависимости от состояния здоровья молочной железы: при мастите этот показатель возрастал по сравнению с нормой на 106,6 % (р £ 0,05), тогда как активность трипсина в сыворотке крови здоровых и больных маститом коров не имела существенных различий. Из биохимических показателей крови коров наиболее информативными оказалась концентрация глюкозы, кальция и фосфора. Мы обнаружили, что в сыворотке крови больных маститом коров количество глюкозы возрастает на 67,4% (p function show_abstract() { $('#abstract1').hide(); $('#abstract2').show(); $('#abstract_expand').hide(); }

Еще

Коровы, мастит, трипсин в молоке, диагностика маститов

Короткий адрес: https://sciup.org/142239845

IDR: 142239845   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.4.685rus

Список литературы Активность трипсина в молоке коров повышается при маститах одновременно с экспрессией генов воспаления

  • Cheng W.N., Han S.G. Bovine mastitis: risk factors, therapeutic strategies, and alternative treat-ments — a review. Asian-Australas. J. Anim. Sci., 2020, 33(11): 1699-1713 (doi: 10.5713/ajas.20.0156).
  • Belay N., Mohammed N., Seyoum W. Bovine mastitis: prevalence, risk factors, and bacterial pathogens isolated in lactating cows in Gamo Zone, Southern Ethiopia. Vet. Med. (Auckl.), 2022, 13: 9-19 (doi: 10.2147/VMRR.S344024).
  • Mukhamadieva N., Julanov M., Zainettinova D., Stefanik V., Nurzhumanova Z., Mukataev A., Suychinov A. Prevalence, diagnosis and improving the effectiveness of therapy of mastitis in cows of dairy farms in East Kazakhstan. Vet. Sci., 2022, 9(8): 398 (doi: 10.3390/vetsci9080398).
  • Титов В.Ю., Фисинин В.И. Способ ранней диагностики маститов у коров. Патент RU 2 371 717 C1. ГНУ Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства (RU). Заявл. 2008.02.04. Опубл. 2009.10.27.
  • Saleem H.D., Razooqi M.A., Gharban H.A.J. Cumulative effect of sub-clinical mastitis on im-munological and biochemical parameters in cow milk. Arch. Razi. Inst., 2021, 76(6): 1629-1638 (doi: 10.22092/ari.2021.356311.1819).
  • Braun U., Gerspach C., Riond B., Oschlies C., Corti S., Bleul U. Haematological findings in 158 cows with acute toxic mastitis with a focus on the leukogram. Acta Vet. Scand., 2021, 63(1): 11 (doi: 10.1186/s13028-021-00576-0).
  • Watanabe A., Yagi Y., Shiono H., Yokomizo Y., Inumaru S. Effects of intramammary infusions of interleukin-8 on milk protein composition and induction of acute-phase protein in cows during mammary involution. Canadian Journal of Veterinary Research, 2008, 72(3): 291-296.
  • Vitenberga-Verza Z., Pilmane M., Šerstņova K., Melderis I., Gontar Ł., Kochański M., Dru-towska A., Maróti G, Prieto-Simón B. Identification of inflammatory and regulatory cytokines IL-1-, IL-4-, IL-6-, IL-12-, IL-13-, IL-17A-, TNF-α-, and IFN-γ-producing cells in the milk of dairy cows with subclinical and clinical mastitis. Pathogens, 2022, 11(3): 372 (doi: 10.3390/pathogens11030372).
  • Pilla R., Schwarz D., König S., Piccinini R. Microscopic differential cell counting to identify inflammatory reactions in dairy cow quarter milk samples. Journal of Dairy Science, 2012, 95(8): 4410-4420 (doi: 10.3168/jds.2012-5331).
  • Rothman S., Leibow C., Isenman L. Conservation of digestive enzymes. Phsyological Reviews, 2002, 82(1): 1-18 (doi: 10.1152/physrev.00022.2001).
  • Коротько Г.Ф. Формирование ферментного компонента секретов пищеварительных желез (обзор). Физическая культура, спорт — наука и практика, 2013, 1: 51-57.
  • Вертипрахов В.Г., Грозина А.А., Долгорукова А.М. Активность ферментов поджелудочной железы у цыплят-бройлеров на разных этапах пищеварения. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(4): 509-515 (doi: 10.15389/agrobiology.2016.4.509rus).
  • Пермяков Н.К., Подольский А.Е., Титова Г.П. Ультраструктурный анализ секреторного цикла поджелудочной железы. М., 1973.
  • Каримова Ш.Ф., Юлдашев Н.М., Исмаилова Г.О., Нишантаев М.К. Биохимия молока. Успехи современного естествознания, 2015, 9-3: 422-428.
  • Shahani K.M., Kwan A.J., Friend B.A. Role and significance of enzymes in human milk. The American Journal of Clinical Nutrition, 1980, 33(8): 1861-1868 (doi: 10.1093/ajcn/33.8.1861).
  • Freed L.M., Berkow S.E., Hamosh P., York C.M., Mehta N.R., Hamosh M. Lipases in human milk: effect of gestational age and length of lactation on enzyme activity. J. Am. Coll. Nutr., 1989, 8(2): 143-150 (doi: 10.1080/07315724.1989.10720289).
  • Ramachandran R., Hollenberg M.D. Proteinases and signalling: pathophysiological and therapeutic implications via PARs and more. Br. J. Pharmacol., 2008, 153: 263-282 (doi: 10.1038/sj.bjp.0707507).
  • Вертипрахов В.Г., Гогина Н.Н., Овчинникова Н.В. Новый подход к оценке здоровья кишечника у птиц. Ветеринария, 2020, 7: 56-59.
  • Вертипрахов В.Г., Грозина А.А., Гогина Н.Н., Кислова И.В., Овчинникова Н.В., Кощеева М.В. Содержание Т-2 и НТ-2 токсинов, активность ферментов в кишечнике и гематологический статус цыплят-бройлеров (Gallus gallus L.) при экспериментальном Т-2 токсикозе. Сельскохо-зяйственная биология, 2021, 56(4): 682-694 (doi: 10.15389/agrobiology.2021.4.682rus).
  • Вертипрахов В.Г., Грозина А.А., Фисинин В.И. Внешнесекреторная функция поджелудочной железы кур-несушек (Gallus gallus L.) при добавлении в корм различных растительных масел. Сельскохозяйственная биология, 2020, 5(4): 726-737 (doi: 10.15389/agrobiology.2020.4.726rus).
  • Сермягин А.А., Лашнева И.А., Косицин А.А., Игнатьева Л.П., Артемьева О.А., Sölkner J., Зиновьева Н.А. Морфологический состав соматических клеток в молоке коров как критерий оценки здоровья молочной железы в связи с продуктивностью и компонентами молока. Сельскохозяйственная биология, 2021, 56(6): 1183-1198 (doi: 10.15389/agrobiology.2021.6.1183rus).
  • Вертипрахов, В.Г., Грозина, А.А. Оценка состояния поджелудочной железы методом определения активности трипсина в крови птицы. Ветеринария, 2018, 6: 51-54 (doi: 10.30896/0042-4846.2018.21.12.51-54).
  • Zaros L.G., Bricarello P.A., Amarante A.F.T., Coutinho L.L. Quantification of bovine cytokine gene expression using real-time RT-PCR methodology. Genetics and Molecular Biology, 2007, 30(3): 575-579 (doi: 10.1590/s1415-47572007000400012).
  • Meza Cerda M.-I., Gray R., Higgins D.P. Cytokine RT-qPCR and ddPCR for immunological inves-tigations of the endangered Australian sea lion (Neophoca cinerea) and other mammals. PeerJ, 2020, 8: e10306 (doi: 10.7717/peerj.10306).
  • Laptev G.Y., Filippova V.A., Kochish I.I., Yildirim E.A., Ilina L.A., Dubrovin A. V, Brazhnik E.A., Novikova N.I., Novikova O.B., Dmitrieva M.E., Smolensky V.I., Surai P.F., Griffin D.K., Roma-nov M.N. Examination of the expression of immunity genes and bacterial profiles in the caecum of growing chickens infected with Salmonella enteritidis and fed a phytobiotic. Animals, 2019, 9(9): 615 (doi: 10.3390/ani9090615).
  • Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) method. Methods, 2001, 25(4): 402-408 (doi: 10.1006/meth.2001.1262).
  • Овчинникова Н.В., Кислова И.В., Толпыго С.М. Анализ иммунологических показателей крови у крыс при воздействии физиологических стрессорных факторов (голод, жажда). Сб. тезисов конференции с международным участием, посвящённой 100-летию МГМСУ им. А.И. Евдокимова «Медицинская физика, физиология и смежные дисциплины в академиче-ской и вузовской науке». М., 2022: 373-376.
  • Вертипрахов В.Г., Борисенко К.В., Овчинникова Н.В., Сирухи М.Н. Влияние кормовой добавки СИНКРА™ на биохимические и морфологические показатели крови цыплят-брой-леров. Птица и птицепродукты, 2020, 3: 42-45 (doi: 10.30975/2073-4999-2020-22-3-42-45).
  • Zhang R., Zhu W., Mao S. High-concentrate feeding upregulates the expression of inflammation-related genes in the ruminal epithelium of dairy cattle. Journal of Animal Science and Biotechnol-ogy, 2016, 7: 42 (https://doi.org/10.1186/s40104-016-0100-1).
  • Karthikeyan A., Radhika G., Aravindhakshan T.V., Anilkumar K. Expression profiling of innate immune genes in milk somatic cells during subclinical mastitis in crossbred dairy cows. Animal Biotechnology, 2016, 27(4): 303-309 (doi: 10.1080/10495398.2016.1184676).
  • Khan M.Z., Khan A., Xiao J., Ma J., Ma Y., Chen T., Shao D., Cao Z. Overview of research development on the role of NF-κB signaling in mastitis. Animals, 2020, 10(9): 1625 (doi: 10.3390/ani10091625).
  • Khan M.Z., Khan A., Xiao J., Ma Y., Ma J., Gao J., Cao Z. Role of the JAK-STAT pathway in bovine mastitis and milk production. Animals, 2020, 10(11): 2107 (doi: 10.3390/ani10112107).
  • Wiggans G.R., Sonstegard T.S., VanRaden P.M., Matukumalli L.K., Schnabel R.D., Taylor J.F., Schenkel F.S., Van Tassell C.P. Selection of single-nucleotide polymorphisms and quality of genotypes used in genomic evaluation of dairy cattle in the united states and Canada. Journal of Dairy Science, 2009, 92: 3431-3436 (doi: 10.3168/jds.2008-1758).
  • Alluwaimi A.M. The cytokines of bovine mammary gland: prospects for diagnosis and therapy. Research in Veterinary Science, 2004, 77: 211-222 (doi: 10.1016/j.rvsc.2004.04.006).
  • Shah K.N., Valand P., Nauriyal D.S., Joshi C.G. Immunomodulation of IL-1, IL-6 and IL-8 cytokines by Prosopis juliflora alkaloids during bovine sub-clinical mastitis. 3 Biotech., 2018, 8: 409 (doi: 10.1007/s13205-018-1438-1).
  • Murphy M.P., Niedziela D.A., Leonard F.C., Keane O.M. The in vitro host cell immune response to bovine-adapted Staphylococcus aureus varies according to bacterial lineage. Scientific Reports, 2019, 9: 6134 (doi: 10.1038/s41598-019-42424-2).
  • Krukowski H., Lassa H., Zastempowska E., Smulski S., Bis-Wencel H. Etiological agents of bovine mastitis in Poland. Medycyna Weterynaryjna, 2020, 76: 221-225 (doi: 10.21521/mw.6339).
  • Sztachańska M., Barański W., Janowski T., Pogorzelska J., Zduńczyk S. Prevalence and etiological agents of subclinical mastitis at the end of lactation in nine dairy herds in North-East Poland. Polish Journal of Veterinary Sciences, 2016, 19: 119-124 (doi: 10.1515/pjvs-2016-0015).
  • Jagielski T., Roeske K., Bakuła Z., Piech T., Wlazło Ł., Bochniarz M., Woch P., Krukowski H. A survey on the incidence of Prototheca mastitis in dairy herds in Lublin Province. Polish Journal of Veterinary Sciences, 2019, 102: 619-628 (doi: 10.3168/jds.2018-15495).
  • Watts J.L. Etiological agents of bovine mastitis. Veterinary Microbiology, 1988, 16: 41-66 (doi: 10.1016/0378-1135(88)90126-5).
  • Jagielski T., Krukowski H., Bochniarz M., Piech T., Roeske K., Bakuła Z., Wlazło Ł., Woch P. Prevalence of Prototheca spp. on dairy farms in Poland — a cross-country study. Microbial Bio-technology, 2019, 12: 556-566 (doi: 10.1111/1751-7915.13394).
  • Rainard P., Riollet C. Innate immunity of the bovine mammary gland. Veterinary Research, 2006, 37: 369-400 (doi: 10.1051/vetres:2006007).
  • Moyes K.M., Drackley J.K., Morin D.E., Loor J.J. Greater expression of TLR2, TLR4, and IL6 due to negative energy balance is associated with lower expression of HLA-DRA and HLA-a in bovine blood neutrophils after intramammary mastitis challenge with Streptococcus uberis. Func-tional and Integrative Genomics, 2010, 10: 53-61 (doi: 10.1007/s10142-009-0154-7).
  • Rainard P., Riollet C. Innate immunity of the bovine mammary gland. Veterinary Research, 2006, 37: 369–400 (doi: 10.1051/vetres:2006007).
  • Zhang Y., Lu Y., Ma L., Cao X., Xiao J., Chen J., Jiao S., Gao Y., Liu C., Duan Z., Li D., He Y., Wei B., Wang H. Activation of vascular endothelial growth factor receptor-3 in macro-phages restrains TLR4-NF-κB signaling and protects against endotoxin shock. Immunity, 2014, 40(4): 501-514 (doi: 10.1016/j.immuni.2014.01.013).
  • Schukken Y.H., Gunther J., Fitzpatrick J., Fontaine M.C., Goetze L., Holst O,. Leigh J., Petzl W., Schuberth H.J., Sipka A., Smith D.G., Quesnell R., Watts J., Yancey R., Zerbe H., Gurjar A., Zadoks R.N., Seyfert H.M.; members of the Pfizer mastitis research consortium. Host-response patterns of intramammary infections in dairy cows. Veterinary Immunology and Immuno-pathology, 2011, 144: 270-289 (doi: 10.1016/j.vetimm.2011.08.022).
  • Liu Y., Zhang J., Zhou Y.H., Zhang H.M., Wang K., Ren Y., Jiang Y.N., Han S.P., He J.J., Tang X.J. Activation of the IL-6/JAK2/STAT3 pathway induces plasma cell mastitis in mice. Cytokine, 2018, 110: 150-158 (doi: 10.1016/j.cyto.2018.05.002).
  • Khan M.Z., Dari G., Khan A., Yu Y. Genetic polymorphisms of TRAPPC9 and CD4 genes and their association with milk production and mastitis resistance phenotypic traits in Chinese Hol-stein. Frontiers in Veterinary Science, 2022, 23: 9 (doi: 10.3389/fvets.2022.1008497).
  • Bannerman D.D. Pathogen-dependent induction of cytokines and other soluble inflammatory mediators during intramammary infection of dairy cows. Journal of Animal Science, 2009, 87: 10-25 (doi: 10.2527/jas.2008-1187).
  • Kawabata A., Matsunami M., Sekiguchi F. Gastrointestinal roles for proteinase-activated recep-tors in health and disease. Review. British Journal of Pharmacology, 2008, 153: 230-240 (doi: 10.1038/sj.bjp.0707491).
  • Kirsanova E., Heringstad B., Lewandowska-Sabat A., Olsaker I. Identification of candidate genes affecting chronic subclinical mastitis in Norwegian Red cattle: combining genome-wide associa-tion study, topologically associated domains and pathway enrichment analysis. Animal Genetics, 2020, 51(1): 22-31 (doi: 10.1111/age.12886).
  • Mount J.A., Karrow N.A., Caswell J.L., Boermans H.J., Leslie K.E. Assessment of bovine mam-mary chemokine gene expression in response to lipopolysaccharide, lipotechoic acid + pepti-doglycan, and CpG oligodeoxynucleotide 2135. Canadian Journal of Veterinary Research, 2009, 73: 49-57.
  • Yu C., Shi Z.R., Chu C.Y., Lee K.H., Zhao X., Lee J.W. Expression of bovine granulocyte chemotactic protein-2 (GCP-2) in neutrophils and a mammary epithelial cell line (MAC-T) in response to various bacterial cell wall components. The Veterinary Journal, 2010, 186: 89-95 (doi: 10.1016/j.tvjl.2009.07.012).
  • Kalliolias G.D., Ivashkiv L.B. TNF biology, pathogenic mechanisms and emerging therapeutic strategies. Nature Reviews Rheumatology, 2016, 12: 49-62 (doi: 10.1038/nrrheum.2015.169).
  • Ahmad S., Azid N.A., Boer J.C., Lim J., Chen X., Plebanski M., Mohamud R. The key role of TNF-TNFR2 interactions in the modulation of allergic inflammation: a review. Frontiers in Im-munology, 2018, 9: 2572 (doi: 10.3389/fimmu.2018.02572).
  • Zhao C., Liu G., Li X., Guan Y., Wang Y., Yuan X., Sun G., Wang Z., Li X. Inflammatory mechanism of Rumenitis in dairy cows with subacute ruminal acidosis. BMC Veterinary Research, 2018, 14(1): 135 (doi: 10.1186/s12917-018-1463-7).
  • Cai Z., Guldbrandtsen B., Lund M.S., Sahana G. Prioritizing candidate genes post-GWAS using multiple sources of data for mastitis resistance in dairy cattle. BMC Genomics, 2018. 19: 656 (doi: 10.1186/s12864-018-5050-x).
  • Blum J.W., Dosogne H., Hoeben D., Vangroenweghe F., Hammon H.M., Bruckmaier R.M., Burvenich C. Tumor necrosis factor-alpha and nitrite/nitrate responses during acute mastitis induced by Escherichia coli infection and endotoxin in dairy cows. Domestic Animal Endocrinology, 2000, 19(4): 223-235 (doi: 10.1016/s0739-7240(00)00079-5).
  • Li X., Körner H., Liu X. Susceptibility to intracellular infections: contributions of TNF to im-mune defense. Frontiers in Microbiology, 2020, 11: 1643 (doi: 10.3389/fmicb.2020.01643).
  • Ezzat Alnakip M., Quintela-Baluja M., Böhme K., Fernández-No I., Caamaño-Antelo S., Calo-Mata P., Barros-Velázquez J. The Immunology of mammary gland of dairy ruminants between healthy and inflammatory conditions. Journal of Veterinary Medicine, 2014, 2014: 659801 (doi: 10.1155/2014/659801).
  • Karo-Atar D., Bitton A., Benhar I., Munitz A. Therapeutic targeting of the interleukin-4/interleu-kin-13 signaling pathway: in allergy and beyond. BioDrugs, 2018, 32: 201-220 (doi: 10.1007/s40259-018-0280-7).
  • Heeb L.E.M., Egholm C., Impellizzieri D., Ridder F., Boyman O. Regulation of neutrophils in type 2 immune responses. Current Opinion in Immunology, 2018, 54: 115-122 (doi: 10.1016/j.coi.2018.06.009).
  • Fonseca I., Silva P.V., Lange C.C., Guimarães M.F.M., Weller M.M.D.C.A., Sousa K.R.S., Lopes P.S., Guimarães J.D., Guimarães S.E.F. Expression profile of genes associated with mastitis in dairy cattle. Genetics and Molecular Biology, 2009, 32: 776-781 (doi: 10.1590/S1415-47572009005000074).
  • Ivashkiv L.B. IFNγ: signalling, epigenetics and roles in immunity, metabolism, disease and cancer immunotherapy. Nature Reviews Immunologyб 2018, 18: 545-558 (doi: 10.1038/s41577-018-0029-z).
  • Kak G., Raza M., Tiwari B.K. Interferon-gamma (IFN-γ): exploring its implications in infectious diseases. Biomolecular Concepts, 2018, 9: 64-79 (doi: 10.1515/bmc-2018-0007).
  • Bochniarz M., Zdzisińska B., Wawron W., Szczubiał M., Dąbrowski R. Milk and serum IL-4, IL-6, IL-10, and amyloid A concentrations in cows with subclinical mastitis caused by coagulase-negative Staphylococci. Journal of Dairy Science, 2017, 100: 9674-9680 (doi: 10.3168/jds.2017-13552).
  • Baggiolini M., Dewald B., Moser B. Interleukin-8 and related chemotactic cytokines-CXC and CC chemokines. Advances in Immunology, 1994, 55: 97-179 (doi: 10.1016/S0065-2776(08)60509-X).
  • Barber M.R., Pantschenko A.G., Hinckley L.S., Yang T.J. Inducible and constitutive in vitro neutrophil chemokine expression by mammary epithelial and myoepithelial cells. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology, 1999, 6: 791-798 (doi: 10.1128/CDLI.6.6.791-798.1999).
  • Boudjellab N., Chan-Tang H.S., Li X., Zhao X. Interleukin 8 response by bovine mammary epithelial cells to lipopolysaccharide stimulation. American Journal of Veterinary Research, 1998, 59: 1563-1567.
  • Caswell J.L., Middleton D.M., Gordon J.R. Production and functional characterization of re-combinant bovine interleukin-8 as a specific neutrophil activator and chemoattractant. Veterinary Immunology and Immunopathology, 1999, 67: 327-340 (doi: 10.1016/s0165-2427(99)00007-0).
  • Bannerman D.D., Paape M.J., Lee J.-W., Zhao X., Hope J.C., Rainard P. Escherichia coli and Staphylococcus aureus elicit differential innate immune responses following intramammary infection. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology, 2004, 11: 463-472 (doi: 10.1128/CDLI.11.3.463-472.2004).
  • Barber M.R., Yang T.J. Chemotactic activities in nonmastitic and mastitic mammary secretions: Presence of interleukin-8 in mastitic but not nonmastitic secretions. Clinical and Diagnostic La-boratory Immunology, 1998, 5: 82-86 (doi: 10.1128/CDLI.5.1.82-86.1998).
  • Stojkovic B., McLoughlin R.M., Meade K.G. In vivo relevance of polymorphic interleukin 8 promoter haplotype for the systemic immune response to LPS in Holstein-Friesian calves. Veter-inary Immunology and Immunopathology, 2016, 182: 1-10 (doi: 10.1016/j.vetimm.2016.09.006).
  • De Matteis G., Scatà M.C., Grandoni F., Crisà A., O’Brien M.B., Meade K.G., Catillo G. Effect of IL8 haplotype on immunological traits in periparturient dairy cows. Veterinary Immunology and Immunopathology, 2021, 238: 110288 (doi: 10.1016/j.vetimm.2021.110288).
  • De Matteis G., Scatà M.C., Catillo G., Grandoni F., Rossi E., Zilio D.M, Crisà A., Lopreiato V., Trevisi E., Barile V.L. Comparison of metabolic, oxidative and inflammatory status of Simmen-tal½Holstein crossbred with parental breeds during the peripartal and early lactation periods. Journal of Dairy Research, 2021, 88(3): 253-260 (doi: 10.1017/S0022029921000650).
  • Pawlik A., Sender G., Kapera M., Korwin-Kossakowska A. Association between interleukin 8 receptor α gene (CXCR1) and mastitis in dairy cattle. Central European Journal of Immunology, 2015, 40(2): 153-158 (doi: 10.5114/ceji.2015.52828).
  • Vertiprakhov V.G., Ovchinnikova N.V. The activity of trypsin in the pancreatic juice and blood of poultry increases simultaneously in the postprandial period. Frontiers in Physiology, 2022, 13: 874664 (doi: 10.3389/fphys.2022.874664).
  • Титов В.Ю., Петренко Ю.М., Ванин А.Ф. Механизм ингибирования каталазы нитро- и нитрозосоединениями. Биохимия, 2008, 73: 113-118.
  • Koshikawa N., Hasegawa S., Nagashima Y., Mitsuhashi K., Tsubota Y., Miyata S., Miyagi Y., Yasumitsu H., Miyazaki K. Expression of trypsin by epithelial cells of various tissues, leukocytes, and neurons in human and mouse. Am. J. Pathol., 1998, 153(3): 937-944 (doi: 10.1016/S0002-9440(10)65635-0).
  • Guenther F., Melzig M.F. Protease-activated receptors and their biological role — focused on skin inflammation. J. Pharm. Pharmacol., 2015, 67(12): 1623-1633 (doi: 10.1111/jphp.12447).
  • Mihara K., Ramachandran R., Saifeddine M., Hansen K., Renaux B., Polley D., Gibson S., Vanderboor C., Hollenberg M.D. Thrombin-mediated direct activation of proteinase-activated receptor-2: another target for thrombin signaling. Mol. Pharmacol., 2016, 89(5): 606-614 (doi: 10.1124/mol.115.102723).
  • Cenac N., Coelho A.-M., Nguyen C., Compton S., Andrade-Gordon P., MacNaughton W.K., Wallace J.L., Hollenberg M.D., Bunnett N.W., Garcia-Villar R., Bueno L., Vergnolle N. Induc-tion of intestinal inflammation in mouse by activation of proteinase-activated receptor-2. Am. J. Pathol., 2002, 161(5): 1903-1915 (doi: 10.1016/S0002-9440(10)64466-5).
  • Cuffe J.E., Bertog M., Velázquez-Rocha S., Dery O., Bunnett N., Korbmacher C. Basolateral PAR-2 receptors mediate KCl secretion and inhibition of Na+ absorption in the mouse distal colon. J. Physiol., 2002, 539(Pt 1): 209-222 (doi: 10.1113/jphysiol.2001.013159).
  • Holzhausen M., Spolidorio L.C., Ellen R.P., Jobin M.C., Steinhoff M., Andrade-Gordon P., Vergnolle N. Protease-activated receptor-2 activation: a major role in the pathogenesis of Por-phyromonas gingivalis infection. Am. J. Pathol., 2006, 168(4): 1189-1199 (doi: 10.2353/aj-path.2006.050658).
  • Vergnolle N. Proteinase-activated receptor-2-activating peptides induce leukocyte rolling, adhe-sion, and extravasation in vivo. J. Immunol., 1999, 163(9): 5064-5069.
Еще
Статья научная