Анализ засухоустойчивости различающихся по стратегии адаптации к засухе растений пшеницы Triticum aestivum L. на начальном этапе онтогенеза
Автор: Авальбаев А.М., Юлдашев Р.А., Аллагулова Ч.Р., Плотников А.А., Ласточкина О.В.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Проблемы адаптации
Статья в выпуске: 1 т.59, 2024 года.
Бесплатный доступ
Ранний этап онтогенеза, во время которого растения наиболее чувствительны к дефициту влаги, - одна из самых критичных фаз в их развитии. Мягкая пшеница ( Triticum aestivum L.) относится к наиболее распространенным в мире и в Российской Федерации ценным культурам. В процессе естественного и искусственного отбора на территории России сформировались две существенно различающиеся по стратегии адаптации к засухе экологические группы пшеницы - лесостепной западносибирский и степной волжский экотипы. Для регионов Западной Сибири характерна весенняя засуха, в связи с чем растения пшеницы лесостепного западносибирского экотипа отличаются замедленным ростом на начальном этапе онтогенеза. В юго-восточных районах европейской части России, в частности в Поволжье, засуха наблюдается позднее, и сорта степного волжского экотипа, наоборот, интенсивно растут в начале вегетации, чтобы максимально развить разветвленную сеть корней к наступлению летней засухи. В настоящей работе впервые выявлены индуцированные засухой изменения в гормональном балансе и содержании аминокислоты пролина у лесостепного западносибирского и степного волжского экотипов пшеницы на начальном этапе онтогенеза. Цель работы состояла в оценке физиолого-биохимических показателей растений пшеницы сортов Зауральская Жемчужина (лесостепной западносибирский экотип) и Экада 70 (степной волжский экотип) в начальную фазу их онтогенеза в норме и в условиях засухи. В первой серии экспериментов семена раскладывали по 15 шт. в чашки Петри на фильтровальную бумагу, смоченную 5 мл растворов концентрированной сахарозы (4 %, 8 % и 12 %), моделирующих засуху. Чашки Петри помещали в термостат и проращивали семена в темноте при 22 °С в течение 3 сут. В качестве контроля использовали семена, пророщенные на дистиллированной воде. На 3-и сут рассчитывали энергию прорастания семян, которую определяли по соотношению (%) числа проросших семян к общему числу взятых для проращивания. У проросших семян измеряли длину главного корня. Во второй серии провели вегетационные опыты в контролируемых условиях. Семена высевали в емкости объемом 15 л (по 30 растений в каждой, глубина посева 4-5 см, расстояние между рядками 2,5 см, расстояние между растениями в ряду 2,5 см). Часть растений подвергалась ранней почвенной засухе. При ее моделировании полив не проводили до достижения значения 30 % влажности от полной влагоемкости почвы (ПВП). В контроле поддерживали влажность 70 % от ПВП. На 7-е, 8-е и 9-е сут измеряли сырую и сухую массу контрольных и подверженных действию почвенной засухи проростков. Содержание цитокининов (ЦК), индолилуксусной (ИУК) и абсцизовой (АБК) кислот в 10 проростках пшеницы (сырая масса 0,9-1,0 г) на 7-е, 8-е и 9-е сут определяли методом иммуноферментного анализа (ИФА) с использованием специфичных кроличьих антител и меченных пероксидазой антикроличьих антител. Также осуществляли экстракцию и определяли содержание свободного пролина. Установлено, что имитирующие засуху концентрированные растворы сахарозы снижали энергию прорастания семян и ингибировали длину главного корня у 3-суточных проростков пшеницы обоих экотипов. Необходимо отметить, что ингибирование прорастания семян и торможение роста главного корня было выражено гораздо сильнее у сорта Зауральская Жемчужина. Почвенная засуха также подавляла рост 7-9-суточных проростков, причем опять же этот процесс был более выражен у растений сорта Зауральская Жемчужина. Выявлен дисбаланс фитогормонов у 7-9-суточных проростков обоих сортов, связанный с индуцированным засухой накоплением АБК, падением содержания ЦК и особенно ауксинов. Однако в проростках сорта Экада 70 амплитуда сдвигов в гормональном балансе, вызываемых засухой, оказалась заметно меньше в сравнении с растениями сорта Зауральская Жемчужина. Также обнаружено, что почвенная засуха приводила к повышению содержания аминокислоты пролина - важного осмопротектора, при этом более высокая концентрация пролина была характерна для 7-9-суточных проростков сорта Экада 70 как в норме, так и при стрессе. Совокупность полученных результатов свидетельствует о более высокой засухоустойчивости растений степного волжского экотипа в сравнении с представителями лесостепного западносибирского экотипа на начальном этапе онтогенеза, что может быть обусловлено меньшей амплитудой стресс-индуцированных сдвигов в содержании фитогормонов и повышенным содержанием осмопротектора пролина у растений степного волжского экотипа.
Triticum aestivum, пшеница, экотипы, засуха, гормональная система, пролин
Короткий адрес: https://sciup.org/142241610
IDR: 142241610 | DOI: 10.15389/agrobiology.2024.1.131rus
Список литературы Анализ засухоустойчивости различающихся по стратегии адаптации к засухе растений пшеницы Triticum aestivum L. на начальном этапе онтогенеза
- Razi K., Muneer S. Drought stress-induced physiological mechanisms, signaling pathways and molecular response of chloroplasts in common vegetable crops. Critical Reviews in Biotechnology, 2021, 41(5): 669-691 (doi: 10.1080/07388551.2021.1874280).
- Allagulova C.R., Lubyanova A.R., Avalbaev A.M. Multiple ways of nitric oxide production in plants and its functional activity under abiotic stress conditions. International Journal of Molecular Sciences, 2023, 24(14): 11637 (doi: 10.3390/ijms241411637).
- Riedesel L., Möller M., Horney P., Golla B., Piepho H.P., Kautz T., Feike T. Timing and intensity of heat and drought stress determine wheat yield losses in Germany. PLoS One, 2023, 18(7): e0288202 (doi: 10.1371/journal.pone.0288202).
- Stallmann J., Schweiger R., Müller C. Effects of continuous versus pulsed drought stress on phys-iology and growth of wheat. Plant Biology, 2018, 20(6): 1005-1013 (doi: 10.1111/plb.12883).
- Dietz K.J., Zörb C., Geilfus C.M. Drought and crop yield. Plant Biology, 2021, 23(6): 881-893 (doi: 10.1111/plb.13304).
- Fang Y., Xiong L. General mechanisms of drought response and their application in drought resistance improvement in plants. Cellular and Molecular Life Sciences, 2015, 72(4): 673-689 (doi: 10.1007/s00018-014-1767-0).
- González E.M. Drought stress tolerance in plants. International Journal of Molecular Sciences, 2023, 24(7): 6562 (doi: 10.3390/ijms24076562).
- Пшеница в СССР /Под ред. П.М. Жуковского. М., 1957.
- Цыганков В.И. Создание адаптивных сортов яровой пшеницы для условий сухостепных зон Казахстана. Известия Оренбургского государственного аграрного университета, 2011, 2(30): 46-50.
- Мухитов Л.А., Самуилов Ф.Д. Величина подколосового междоузлия и продуктивность сортов яровой мягкой пшеницы разных экологических групп в лесостепи Оренбургского Предуралья. Вестник Казанского государственного аграрного университета, 2014, 9(3): 135-138.
- Лиховидова В.А., Казакова А.С., Самофалова Н.Е. Влияние водного и температурного стрес-сов на всхожесть семян сортов твердой озимой пшеницы, полученных в контрастные по погодным условиям годы. Зерновое хозяйство России, 2019, 5(65): 34-39 (doi: 10.31367/2079-8725-2019-65-5-34-39).
- Шарафутдинов М.Х., Решетняк В.В., Валидов Ш.З., Сафин Р.И. Оценка влияния различ-ных факторов на разнокачественность семян яровой пшеницы. Вестник Казанского ГАУ, 2017, 2(44): 64-70 (doi: 10.12737/article_59ad0f0dcd2023.63206986).
- Lastochkina O., Yakupova A., Avtushenko I., Lastochkin A., Yuldashev R. Effect of seed priming with endophytic Bacillus subtilis on some physio-biochemical parameters of two wheat varieties exposed to drought after selective herbicide application. Plants, 2023, 12: 1724 (doi: 10.3390/plants12081724).
- Батыгина Т.Б. Хлебное зерно: атлас. Л., 1987.
- Shakirova F.M., Sakhabutdinova A.R., Bezrukova M.V., Fatkhutdinova R.A., Fatkhutdi-nova D.R. Changes in the hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salin-ity. Plant Science, 2003, 164(3): 317-322 (doi: 10.1016/S0168-9452(02)00415-6).
- Bates L.S., Waldran R.P., Teare I.D. Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil, 1973, 39: 205-207 (doi: 10.1007/BF00018060).
- Peleg Z., Reguera M., Tumimbang E., Walia H., Blumwald E. Cytokinin-mediated source/sink modifications improve drought tolerance and increase grain yield in rice under water-stress. Plant Biotechnology Journal, 2011, 9(7): 747-758 (doi: 10.1111/j.1467-7652.2010.00584.x).
- Hura T., Hura K., Ostrowska A. Drought-stress induced physiological and molecular changes in plants. International Journal of Molecular Sciences, 2022, 23(9): 4698 (doi: 10.3390/ijms23094698).
- Liu X., Quan W., Bartels D. Stress memory responses and seed priming correlate with drought tolerance in plants: an overview. Planta, 2022, 255(2): 45 (doi: 10.1007/s00425-022-03828-z).
- Guo Q., Wang Y., Zhang H., Qu G., Wang T., Sun Q., Liang D. Alleviation of adverse effects of drought stress on wheat seed germination using atmospheric dielectric barrier discharge plasma treatment. Scientific Reports, 2017, 7(1): 16680 (doi: 10.1038/s41598-017-16944-8).
- Kong H., Meng X., Akram N.A., Zhu F., Hu J., Zhang Z. Seed priming with fullerol improves seed germination, seedling growth and antioxidant enzyme system of two winter wheat cultivars under drought stress. Plants, 2023, 12(6): 1417 (doi: 10.3390/plants12061417).
- Мухитов Л.А., Самуилов Ф.Д. Засухоустойчивость разных экотипов яровой мягкой пше-ницы в лесостепи Оренбургского Предуралья. Вестник Казанского государственного аграр-ного университета, 2007, 2(1): 57-59.
- Shakirova F., Allagulova Ch., Maslennikova D., Fedorova K., Yuldashev R., Lubyanova A., Bezrukova M., Avalbaev A. Involvement of dehydrins in 24-epibrassinolide-induced protection of wheat plants against drought stress. Plant Physiology and Biochemistry, 2016, 108: 539-548 (doi: 10.1016/j.plaphy.2016.07.013).
- Andrade A., Boero A., Escalante M., Llanes A., Arbona V., Gómez-Cádenas A., Alemano S. Comparative hormonal and metabolic profile analysis based on mass spectrometry provides infor-mation on the regulation of water-deficit stress response of sunflower (Helianthus annuus L.) inbred lines with different water-deficit stress sensitivity. Plant Physiology and Biochemistry, 2021, 168: 432-446 (doi: 10.1016/j.plaphy.2021.10.015).
- Waadt R., Seller C.A., Hsu P.-K., Takahashi Y., Munemasa S., Schroeder J.I. Plant hormone regulation of abiotic stress responses. Nature Reviews Molecular Cell Biology, 2022, 23: 680-694 (doi: 10.1038/s41580-022-00479-6).
- Llanes A., Andrade A., Alemano S., Luna V. Alterations of endogenous hormonal levels in plants under drought and salinity. American Journal of Plant Sciences, 2016, 7(9): 1357-1371 (doi: 10.4236/ajps.2016.79129).
- Ozturk M., Turkyilmaz Unal B., García-Caparrós P., Khursheed A., Gul A., Hasanuzzaman M. Osmoregulation and its actions during the drought stress in plants. Physiologia Plantarum, 2021, 172(2): 1321-1335 (doi: 10.1111/ppl.13297).
- Du L., Huang X., Ding L., Wang Z., Tang D., Chen B., Ao L., Liu Y., Kang Z., Mao H. TaERF87 and TaAKS1 synergistically regulate TaP5CS1/TaP5CR1-mediated proline biosynthesis to enhance drought tolerance in wheat. New Phytologyst, 2023, 237(1): 232-250 (doi: 10.1111/nph.18549).
- Bhagyawant S.S., Narvekar D.T., Gupta N., Bhadkaria A., Koul K.K., Srivastava N. Variations in the antioxidant and free radical scavenging under induced heavy metal stress expressed as proline content in chickpea. Physiology and Molecular Biology of Plants, 2019, 25: 683-696 (doi: 10.1007/s12298-019-00667-3).
- Avalbaev A., Allagulova Ch., Maslennikova D., Fedorova K., Shakirova F. Methyl jasmonate and cytokinin mitigate the salinity-induced oxidative injury in wheat seedlings. Journal of Plant Growth Regulation, 2021, 40: 1741-1752 (doi: 10.1007/s00344-020-10221-1).
- Wani A.S., Ahmad A., Hayat S., Tahir I. Epibrassinolide and proline alleviate the photosynthetic and yield inhibition under salt stress by acting on antioxidant system in mustard. Plant Physiology and Biochemistry, 2019, 135: 385-394 (doi: 10.1016/j.plaphy.2019.01.002).