Антикластогенная активность аминоселетона при воздействии циклофосфамида на костный мозг мышей

Автор: Шабунин С.В., Востроилова Г.А., Паршин П.А., Шабанов Д.И., Хохлова Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Тканевые биостимуляторы

Статья в выпуске: 4 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Тканевый препарат аминоселетон, разработанный во Всероссийском научно-исследовательском ветеринарном институте патологии, фармакологии и терапии, получен из селезенки крупного рогатого скота методом криогенного фракционирования. Ранее были показаны адаптогенные, мембраностабилизирующие, стресс-протекторные, антиоксидантные и иммуномодулирующие свойства аминоселетона. В настоящей работе впервые выявлено антикластогенное действие тканевого препарата аминоселетон по отношению к клеткам костного мозга мышей, подвергнутых воздействию экспериментального мутагена. Кроме того, было показано сохранение цитогенетической стабильности и митотической активности в клетках костного мозга здоровых животных при применении исследуемого препарата. Цель работы - оценка влияния аминоселетона на цитогенетическую стабильность клеток костного мозга здоровых и подвергнутых действию экспериментального мутагена мышей, а также выявление антимутагенного свойства препарата применительно к генотоксическому эффекту циклофосфамида с использованием микроядерного теста. Эксперименты проводили на беспородных белых мышах ( Mus albus officinarum ), которые были разделены на группы, подвергшиеся следующим воздействиям: введение внутримышечно стерильного изотонического раствора хлорида натрия в объеме 0,2 мл (негативный контроль, n = 12); инъекция внутрибрюшинно 0,2 мл циклофосфамида (ЦФ, «Baxter Oncology GmbH», Германия) в дозе 20,0 мг/кг массы тела (позитивный контроль, n = 12); внутримышечное однократное введение 0,2 мл аминоселетона в терапевтической дозе 0,5 мл/кг ( n = 12); внутримышечная однократная инъекция 0,2 мл аминоселетона в 10-кратной терапевтической дозе 5,0 мл/кг ( n = 12); внутримышечное однократное введение 0,2 мл аминоселетона в дозе 0,5 мл/кг, через 72 ч внутрибрюшинное введение 0,2 мл ЦФ в дозе 20,0 мг/кг ( n = 6); внутримышечное введение 0,2 мл аминоселетона в дозе 0,5 мл/кг 5-кратно с интервалом 24 ч, через 72 ч после пятой инъекции внутрибрюшинное введение ЦФ аналогично животным других групп ( n = 6). Для определения количества хромосомных аберраций в костном мозге за 2,5 ч до эвтаназии мышам делали внутрибрюшинную инъекцию 0,025 % колхицина («ПанЭко», Россия). Из бедренных костей с помощью буферного раствора Хенкса (рН 7,4) вымывали клетки костного мозга, инкубировали суспензию клеток в 0,075 молярном гипотоническом растворе KCl, затем фиксировали клетки с помощью охлажденного до 4 °C ацетоалкоголя и окрашивали по Романовскому-Гимзе. Оценивали митотический индекс (МИ) по числу делящихся клеток на 1000 клеток костного мозга. Подсчитывали число клеток с хромосомными аберрациями в 100 метафазных пластинках на каждое животное. Учитывали одиночные и парные фрагменты, обмены и ахроматические пробелы (гепы), а также клетки с множественными патологиями. Для изучения частоты микроядер (микроядерный тест) полихроматофильных эритроцитов (ПХЭ) полученные клетки костного мозга добавляли к 1 % раствору альбумина в буферном растворе Хенкса (рН 7,4) и наносили на предметные стекла, далее препараты высушивали, фиксировали метанолом и окрашивали по Романовскому-Гимзе. Определяли частоту микроядер на 1000 ПХЭ, всего изучали 2000 ПХЭ на животное. Также учитывали долю ПХЭ на 500 нормохромных эритроцитов (НЭ) и ПХЭ. Частота хромосомных аберраций и микроядер при введении препарата в исследуемых дозах статистически значимо не отличалась от таковой у животных из группы негативного контроля, которая составила соответственно 1,0±0,40 и 0,2±0,06 %. Введение аминоселетона также не оказывало влияния на митотический индекс клеток костного мозга экспериментальных животных. Курсовое введение аминоселетона снижало кластогенное действие циклофосфамида, оцениваемое по количеству микроядер в ПХЭ костного мозга, с 2,3±0,21 % у мышей из группы позитивного контроля до 1,0±0,40 % у животных после курса инъекций аминоселетона. То есть наблюдалось снижение кластогенной активности циклофосфамида на 51,3 %, что, вероятно, было связано с коррекцией исследуемым препаратом прооксидантно-а

Еще

Аминоселетон, циклофосфамид, мутагенность, антикластогенные свойства, микроядра, хромосомные аберрации, костный мозг, белые мыши, полихроматофильные эритроциты

Короткий адрес: https://sciup.org/142231382

IDR: 142231382   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.4.763rus

Список литературы Антикластогенная активность аминоселетона при воздействии циклофосфамида на костный мозг мышей

  • Учасов Д.С., Ярован Н.И., Сеин О.Б. Эффективность применения пробиотика «Проваген» при технологическом стрессе у свиней. Вестник Орловского государственного аграрного университета, 2013, 1(40): 129-131.
  • Пленина Л.В., Сорока Н.Ф., Чудаков О.П., Третьяк С.И., Быкадорова Л.Г., Митьковская Н.П., Голынский А.Б., Максимович А.В., Евсеенко В.М., Ивановский Г.Л., Аликевич И.Н., Дражина Л.С., Грак Н.Н., Скуратовская Л.И. Новый отечественный иммуномодулятор Диасплен®. Рецепт, 2008, 1(57): 104-106.
  • Федулова Л.В., Василевская Е.Р. Перспективные источники природных стимуляторов иммунитета. Мясные технологии, 2016, 12(168): 37-39.
  • Черненкова М.Л., Стяжкина С.Н., Валинуров А.А. Изучение специфической активности и иммуногенности препарата спленопид. Журнал научных статей здоровье и образование в XXI веке, 2017, 19(8): 161-163.
  • Востроилова Г.А., Хохлова Н.А., Паршин П.А., Ческидова Л.В., Брюхова И.В., Сашнина Л.Ю., Канторович Ю.А., Карташов С.С. Изучение эффективности аминоселетона при технологическом стрессе на свиноводческих комплексах. Ветеринарный фармакологический вестник, 2018, 2(3): 37-41 (doi: 10.17238/issn2541-8203.2018.2.37).
  • Шабунин С.В., Востроилова Г.А., Паршин П.А., Хохлова Н.А., Сашнина Л.Ю., Михайлов Е.В., Тюрина Е.В. Изучение иммуномодулирующего действия аминоселетона при антибактериальной терапии сальмонеллеза поросят. Ветеринарная патология, 2018, 3(65): 39-46 (doi: 10.25690/VETPAT.2018.65.20143).
  • Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств. Часть первая /Под ред. А.Н. Миронова. М., 2012.
  • Дурнев А.Д. Антимутагенез и антимутагены. Физиология человека, 2018, 44(3): 116-137 (doi: 10.7868/S013116461803013X).
  • Genetic toxicology: principles and methods /J.M. Parry, E.M. Parry (eds.). Springer, New York, 2012 (doi: 10.1007/978-1-61779-421-6).
  • Delarmelina J.M., Dutra J.C.V., Batitucci Mdo C. Antimutagenic activity of ipriflavone against the DNA-damage induced by cyclophosphamide in mice. Food and chemical toxicology: an international journal published for the British Industrial Biological Research Association, 2014, 65: 140-146 (doi: 10.1016/j.fct.2013.12.028).
  • Шабунин С.В., Шахов А.Г., Востроилова Г.А., Паршин П.А., Ермолова Т.Г., Хохлова Н.А., Близнецова Г.Н. Влияние аминоселетона на состояние прооксидантной и антиоксидантной систем крови у свиноматок. ДостижениянаукиитехникиАПК,2019, 33(7): 71-74 (doi: 10.24411/0235-2451-2019-10716).
  • Emadi A., Jones R.J., Brodsky R.A. Cyclophosphamide and cancer: golden anniversary. Nature reviews. Clinical Oncology, 2009, 6(11): 638-647 (doi: 10.1038/nrclinonc.2009.146).
  • Nau H., Spielmann H., Lo Turco Morter C.M., Winckler K., Riedel L., Obe G. Mutagenic, teratogenic and pharmacokinetic properties of cyclophosphamide and some of its deuterated derivatives. Mutation Research/Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis, 1982, 95(2-3): 105-118 (doi: 10.1016/0027-5107(82)90250-0).
  • Preston R.J., Dean B.J., Galloway S., Holden H., McFee A.F., Shelby M. Mammalian in vivo cytogenetic assays Analysis of chromosome aberrations in bone marrow cells. Mutation Research/Genetic Toxicology, 1987, 189(2): 157-165 (doi: 10.1016/0165-1218(87)90021-8).
  • Hayashi M. The micronucleus test—most widely used in vivo genotoxicity test. Genes and Environment, 2016, 38: 18 (doi: 10.1186/s41021-016-0044-x).
  • Agarwal D.K., Chauhan L.K. An improved chemical substitute for fetal calf serum for the micronucleus test. Biotechnic & Histochemistry, 1993, 68(4): 187-188 (doi: 10.3109/10520299309104695).
  • Lu W., Jia D., An S., Mu M., Qiao X., Liu Y., Li X., Wang D. Calf Spleen Extractive Injection protects mice against cyclophosphamide-induced hematopoietic injury through G-CSF-mediated JAK2/STAT3 signaling. Scientific Reports, 2017, 7(1): 8402 (doi: 10.1038/s41598-017-08970-3).
  • Hartleb M., Leuschner J. Toxicological profile of a low molecular weight spleen peptide formulation used in supportive cancer therapy. Arzneimittel-Forschung, 1997, 47(9): 1047-1051.
  • Дычко К.А., Рыжова Г.Л., Кравцова С.С., Кирьянова Н.Л., Кувшинов Н.Н., Гриднева В.И. Способ получения средства с адаптогенным и противолучевым действием. Патент RU 2142284 C1 (РФ) МПК6 A 61 K 35/28. Томский государственный университет (РФ). № 95110155/14. Заявл. 14.06.1995. Опубл. 10.12.1999.
  • Хохлова Н.А., Лободина Т.Е., Григорьева Н.А., Топольницкая А.В., Федорова Н.М., Панина Т.А. Изучение биологической активности аминоселетона в тесте на Рarameсium caudatum. Ветеринарный фармакологический вестник, 2018, 1(2): 25-30 (doi: 10.17238/issn2541-8203.2018.1.25).
  • Гончарова Р.И., Кужир Т.Д. Молекулярные основы применения антимутагенов в качестве антиканцерогенов. Экологическая генетика, 2005, 3(3): 19-32.
  • Hosseinimehr S.J., Karami M. Chemoprotective effects of captopril against cyclophosphamide-induced genotoxicity in mouse bone marrow cells. Archives of Toxicology, 2005, 79(8): 482-486 (doi: 10.1007/s00204-005-0655-7).
  • Vijayalaxmi K.K., Venu R. In vivo anticlastogenic effects of L ascorbic acid in mice. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis, 1999, 438(1): 47-51 (doi: 10.1016/s1383-5718(98)00161-2).
  • Manda K., Bhatia A.L. Prophylactic action of melatonin against cyclophosphamide-induced oxidative stress in mice. Cell Biology and Toxicology, 2003, 19(6): 367-372 (doi: 10.1023/b:cbto.0000013342.17370.16).
  • De Flora S., Ramel C. Mechanisms of inhibitors of mutagenesis and carcinogenesis. Classification and overview. Mutation Research, 1988, 202(2): 285-306 (doi: 10.1016/0027-5107(88)90193-5).
  • Bolzán A.D., Lacunza Е., Bianchi M.S. Effect of recombinant interferon-alpha on streptonigrin-induced chromosome aberrations and sister-chromatid exchanges in hamster cells. Mutation Research, 2003, 522(1-2): 127-134 (doi: 10.1016/s0027-5107(02)00304-4).
  • Новицкий В.В., Хлусова М.Ю., Терновая С.В., Саратиков А.С. Антимутагенное средство. Патент RU 2189232 C2 (РФ) МПК7 A 61 K 31/415, A 61 P 43/00. НИИ фармакологии Томского научного центра РАМН (РФ). Сибирский медицинский университет (РФ). № 2000118409/14. Заявл. 10.07.2000. Опубл. 20.09.2002.
  • Jia D., Lu W., Wang C., Sun S., Cai G., Li Y., Wang G., Liu Y., Zhang M., Wang D. Investigation on immunomodulatory activity of calf spleen extractive injection in cyclophosphamide-induced immunosuppressed mice and underlying mechanisms. Scandinavian Journal of Immunology, 2016, 84(1): 20-27 (doi: 10.1111/sji.12442).
Еще
Статья научная