Антиоксиданты растительного происхождения и их нетрадиционные источники (обзор)

Автор: Гончарова Ю.К., Гончаров С.В., Харитонов Е.М., Фотев Ю.В., Симонова В.В., Очкас Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 1 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

Жизнеспособность эукариот во многом зависит от функционального состояния системы биохимической защиты, которая предохраняет организм от повреждений. В состав биохимической системы защиты от свободных радикалов входят вещества, нейтрализующие их воздействие, - антиоксиданты (М.Г. Узбеков, 2014). Окислительный стресс лежит в основе множества болезней (онкологических, ревматоидных, бронхолегочных, сердечно-сосудистых) и преждевременного старения (S. Miwa с соавт., 2016; J.G. Geisler, 2019). Известно более 5000 антиоксидантов, которые различаются по химическому составу, антирадикальной и антипролиферативной активности. Во многих работах показан синергизм или аддитивный эффект действия антиоксидантов (В. Полонский c соавт., 2018). То есть для эффективной защиты организма состав употребляемых антиоксидантов должен быть достаточно широким. В связи с этим актуальным становится поиск новых источников биологически активных веществ и повышение их содержания в уже культивируемых видах. В настоящей работе приведена классификация антиоксидантов. Среди экзогенных более подробно рассмотрены каротиноиды, полифенолы (флавоноиды), микроэлементы. Обсуждаются особенности проявления антиокислительнаой активности этих веществ. Флавоноиды считаются одними из наиболее значимых антиоксидантов. Антирадикальная активность флавоноидов может в 50 раз превышать таковую у многих веществ растительного происхождения (в значительной мере уступают им витамин E и витамин С) (Y. Yao с соавт., 2010). Чернозерные сорта риса служат богатыми источниками флавоноидов (U.K.S. Kushwaha, 2016). Эффективными антиоксидантами также считаются каротиноиды, отличительная особенность которых - взаимодействие с другими веществами этой природы, что повышает биологическую активность соединений (W. Stahl с соавт., 2004; C. Hu с соавт., 2020). Источниками с высоким антиоксидантным потенциалом и значительным накоплением каротиноидов могут служить краснозерные сорта риса, момордика, амарант (Ю. Фотев с соавт., 2018; Д. Шафигуллин c соавт., 2018). Наблюдаемое на фенотипическом уровне внутривидовое разнообразие по признакам окраски связано как с регуляторными, так и со структурными генами (Е.К. Хлесткина с соавт., 2014). Повышенное содержание проантоцианидинов в семенной оболочке определяет устойчивость к прорастанию на корню, а наличие антоцианов способствует лучшей сохранности семян после длительного хранения и повышенной устойчивости растений к стрессам (Т.Л. Коротенко, 2018). Антиоксиданты повышают устойчивость растений к биотическим и абиотическим стрессам, однако у сортов риса с окрашенным перикарпом этот аспект исследован недостаточно. Изучение генетических механизмов, контролирующих признаки окраски растения, актуально в связи с антиоксидантными и антимикробными свойствами пигментов и их бесцветных предшественников (Y. Qin с соавт., 2018). Эти соединения обеспечивают профилактику онкологических заболеваний, снижают риск сердечно-сосудистых заболеваний, атеросклероза, диабета второго типа, повышают иммунитет, улучшают синтез зрительных пигментов, активируют процессы метаболизма, замедляют старение (C. Xu c соавт, 2020). Вариации цвета и признаки качества зерна у образцов риса контролирует 41 локус. Гены Ra ( Prp-b для сортов с фиолетовым перикарпом) и Rc (коричневый перикарп и алейроновый слой) вносят основной вклад в фенотипический эффект по окраске рисового зерна и питательным качествам (Y. Shao с соавт., 2011). Эти гены локализованы на 9-й, 10-й и 8-й хромосомах в районах расположения маркеров RM228 (размер продукта амплификации 90-154 п.н.), RM339 (166-148 п.н.), RM316 (160-210 п.н.) (T. Furukawa с соавт., 2007). Характеристика на молекулярном уровне ключевых генов, участвующих в биосинтезе вышеперечисленных соединений, позволит контролировать и ускорять процесс отбора по признакам окраски, важным для повышения питательной ценности продуктов, производимых из сортов функционального назначения.

Еще

Рис, момордика, окрашенный перикарп, флавоноиды, каротиноиды, антиоксиданты, антоцианы, регуляторные гены, структурные гены, маркер-ориентированная селекция, ssr-маркеры

Короткий адрес: https://sciup.org/142241614

IDR: 142241614   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.1.39rus

Список литературы Антиоксиданты растительного происхождения и их нетрадиционные источники (обзор)

  • Узбеков М.Г. Перекисное окисление липидов и антиоксидантные системы при психических заболеваниях. Социальная и клиническая психиатрия, 2014, 24(4): 97-103.
  • Griffiths K., Aggarwal B.B., Singh R.B., Buttar H.S., Wilson D., De Meester F. Food antioxidants and their anti-inflammatory properties: a potential role in cardiovascular diseases and cancer Diseases, 2016, 4(3): 28 (doi: 10.3390/diseases4030028).
  • Liu Z., Ren Z., Zhang J., Chuang C.-C., Kandaswamy E., Zhou T., Zuo L. Role of ROS and nutritional antioxidants in human diseases. Frontiers in Physiology, 2018, 9: 477 (doi: 10.3389/fphys.2018.00477).
  • Yeung A.W.K., Tzvetkov N.T., El-Tawil O.S., Bungǎu S.G., Abdel-Daim M.M., Atanasov A.G. Antioxidants: scientific literature landscape analysis. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2019, 2019: 8278454 (doi: 10.1155/2019/8278454).
  • Herranz N., Gil J. Mechanisms and functions of cellular senescence. J. Clin. Invest., 2018, 128: 1238-1246 (doi: 10.1172/JCI95148).
  • Liao N., Shi Y., Zhang C., Zheng Y., Wang Y., Zhao B., Zeng Y., Liu X., Liu J. Antioxidants inhibit cell senescence and preserve stemness of adipose tissue derived stem cells by reducing ROS generation during long-term in vitro expansion. Stem Cell Research & Therapy, 2019, 10: 306 (doi: 10.1186/s13287-019-1404-9).
  • Rhinn M., Ritschka B., Keyes W.M. Cellular senescence in development, regeneration and dis-ease. Development, 2019, 146(20): dev151837 (doi: 10.1242/dev.151837).
  • Доровских В.А., Целуйко С.С., Симонова Н.В., Анохина Р.А. В мире антиоксидантов. Благовещенск, 2012.
  • Meo S.D., Reed T.T., Venditti P., Victor V.M. Role of ROS and RNS sources in physiological and pathological conditions. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2016, 2016: 1245049 (doi: 10.1155/2016/1245049).
  • Roy J., Galano J.-M., Durand T., Le Guennec J.-Y., Lee J.C. Physiological role of reactive oxygen species as promoters of natural defenses. FASEB J., 2017, 31(9): 3729-3745 (doi: 10.1096/fj.201700170R).
  • Ansurudeen I., Sunkari V.G., Grünler J., Peters V., Schmitt C.P., Catrina S.B., Brismar K., Forsberg E.A. Carnosine enhances diabetic wound healing in the db/db mouse model of type 2 diabetes. Amino Acids, 2012, 43: 127-134 (doi: 10.1007/s00726-012-1269-z).
  • Miwa S., Czapiewski R., Wan T., Bell A., Hill K.N., Zglinicki T., Saretzki G. Decreased mTOR signalling reduces mitochondrial ROS in brain via accumulation of the telomerase protein TERT within mitochondria. Aging, 2016, 8: 2551-2567 (doi: 10.18632/aging.101089).
  • Geisler J.G. 2,4 Dinitrophenol as medicine. Cells, 2019, 8(3): 280 (doi: 10.3390/cells8030280).
  • Trnka J., Elkalaf M., Andel M. Lipophilic triphenylphosphonium cations inhibit mitochondrial electron transport chain and induce mitochondrial proton leak. PLoS One, 2015, 10(4): e0121837 (doi: 10.1371/journal.pone.0121837).
  • Munoz-Lorente M.A., Cano-Martin A.C., Blasco M.A. Mice with hyper-long telomeres show less metabolic aging and longer lifespans. Nature Communications, 2019, 10: 4723 (doi: 10.1038/s41467-019-12664-x).
  • Green P.D., Sharma N.K., Santos J.H. Telomerase impinges on the cellular response to oxidative stress through mitochondrial ROS-mediated regulation of autophagy. Int. J. Mol. Sci., 2019, 20(6): 1509 (doi: 10.3390/ijms20061509).
  • Monaghan P., Costantini D. Free radicals — an evolutionary perspective. In: Systems biology of free radicals and antioxidants. Springer Verlag, Berlin, Heidelberg, 2014: 39-64 (doi: 10.1007/978-3-642-30018-9_25).
  • Perry R.J., Zhang D., Zhang X.M., Boyer J.L., Shulman G.I. Controlled-release mitochondrial protonophore reverses diabetes and steatohepatitis in rats. Science, 2015, 347(6227), 1253-1256 (doi: 10.1126/science.aaa0672).
  • Chouchani E.T., Kazak L., Jedrychowski M.P., Lu G.Z., Erickson B.K., Szpyt J., Pierce K.A., Laznik-Bogoslavski D., Vetrivelan R., Clish C.B., Robinson A.J., Gygi S.P., Spiegelman B.M. Mitochondrial ROS regulate thermogenic energy expenditure and sulfenylation of UCP1. Nature, 2016, 532(7597), 112-116 (doi: 10.1038/nature17399).
  • Free radicals, aging, and degenerative diseases /J.E. Johnson Jr., R. Walford, D. Harman, J. Miquel (eds.). Liss Cop., New York, 1986.
  • Andreyev A.Y., Tsui H.S., Milne G.L., Shmanai V.V., Bekish A.V., Fomich M.A., Pham M.N., Nong Y., Murphy A.N., Clarke C.F., Shchepinov M.S. Isotope-reinforced polyunsaturated fatty acids protect mitochondria from oxidative stress. Free Radical Biology and Medicine, 2015, 82: 63-72 (doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2014.12.023).
  • Beaudoin-Chabot C., Wang L., Smarun A.V., Vidović D., Shchepinov M.S., Thibault G. Deu-terated polyunsaturated fatty acids reduce oxidative stress and extend the lifespan of C. elegans. Front. Physiol., 2019, 10: 641 (doi: 10.3389/fphys.2019.00641).
  • Li D., Wang P., Luo Y., Zhao M., Chen F. Health benefits of anthocyanins and molecular mechanisms: update from recent decade. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2017, 57(8): 1729-1741 (doi: 10.1080/10408398.2015.1030064).
  • Strygina K.V., Börner A., Khlestkina E.K. Identification and characterization of regulatory net-work components for anthocyanin synthesis in barley aleurone. BMC Plant Biol., 2017, 17(Suppl 1): 184 (doi: 10.1186/s12870-017-1122-3).
  • Jiang W., Liu T., Nan W., Jeewani D.C., Niu Y., Li C., Wang Y., Shi X., Wang C., Wang J., Li Y., Gao X., Wang Z. Two transcription factors TaPpm1 and TaPpb1 co-regulate anthocyanin biosynthesis in purple pericarps of wheat. Journal of Experimental Botany, 2018, 69(10): 2555-2567 (doi: 10.1093/jxb/ery101).
  • Полонский В.И., Лоскутов И.Г., Сумина А.В. Селекция на содержание антиоксидантов в зерне как перспективное направление для получения продуктов здорового питания. Вави-ловский журнал генетики и селекции, 2018, 22(3): 343-352 (doi: 10.18699/VJ18.370).
  • Stahl W., Sies S. Antioxidant activity of carotenoids. Molecular Aspects of Medicine, 2004, 24(6): 345-351 (doi: 10.1016/s0098-2997(03)00030-x).
  • Maoka T. Carotenoids as natural functional pigments. J. Nat. Med., 2020, 74: 1-16 (doi: 10.1007/s11418-019-01364-x).
  • Шахмарданова С.А. Гулевская О.Н., Селецкая В.В., Зеленская А.В., Хананашвили Я.А., Нефедов Д.А., Галенко-Ярошевский П.А. Антиоксиданты: классификация, фармакотера-певтические свойства, использование в практической медицине. Краснодар, 2016, 3: 4-15.
  • Sui X., Zhang Y., Zhou W. In vitro and in silico studies of the inhibition activity of anthocyanins against porcine pancreatic -amylase. Journal of Functional Foods, 2016, 21: 50-57 (doi: 10.1016/j.jff.2015.11.042).
  • Oliveira H., Roma-Rodrigues C., Santos A., Veigas B., Brás N., Faria A., Calhau C., de Freitas V., Baptista P.V., Mateus N., Fernandes A.R., Fernandes I. GLUT1 and GLUT3 involvement in anthocyanin gastric transport-Nanobased targeted approach. Sci. Rep., 2019, 9(1): 1-14 (doi: 10.1038/s41598-018-37283-2).
  • Ильина И.Г., Рудакова И.П., Самылина И.А. Антиоксиданты: фармацевтические и биохимические аспекты применения. Фармация, 2013, 8: 3-6.
  • Rehman S.U., Shah S.A., Ali T., Chung J.I., Kim M.O. Anthocyanins reversed D-galactose-induced oxidative stress and neuroinflammation mediated cognitive impairment in adult rats. Molecular Neurobiology, 2017, 54(1): 255-271 (doi: 10.1007/s12035-015-9604-5).
  • Sandoval-Ramírez B.A., Catalán Ú., Fernández-Castillejo S., Rubió L., Macià A., Solà R. Antho-cyanin tissue bioavailability in animals: possible implications for human health. A systematic re-view. J. Agric. Food Chem., 2018, 66(44): 11531-11543 (doi: 10.1021/acs.jafc.8b04014).
  • Zhang B., Schrader A. Transparent testa glabra 1-dependent regulation of flavonoid biosynthesis. Plants, 2017, 6(4): 65 (doi: 10.3390/plants6040065).
  • Sun X.-H., Zhou T.-T., Wei C.-H., Lan W.-Q., Zhao Y., Pan Y.-J., Wu V.C.H. Antibacterial effect and mechanism of anthocyanin rich Chinese wild blueberry extract on various foodborne pathogens. Food Control, 2018, 94: 155-161 (doi: 10.1016/j.foodcont.2018.07.012).
  • Sangsefidi Z.S., Hosseinzadeh M., Ranjbar A.M., Akhondi-Meybodi M., Fallahzadeh H., Mozaf-fari-Khosravi H. The effect of total anthocyanin-base standardized (Cornus mas L.) fruit extract on liver function, tumor necrosis factor α, malondealdehyde, and adiponectin in patients with non-alcoholic fatty liver: a study protocol for a double-blind randomized clinical trial. Nutr. J., 2019, 18(1): 39 (doi: 10.1186/s12937-019-0465-z).
  • Масленников П.В., Чупахина Г.Н., Скрыпник Л.Н., Федураев П.В., Селедцов В.И. Экологический анализ активности накопления биофлавоноидов в лекарственных растениях. Вестник Балтийского федерального университета им. И. Канта, 2014, 7: 110-120.
  • Tsuda T. Recent progress in anti-obesity and anti-diabetes effect of berries. Antioxidants, 2016, 5(2): 13 (doi: 10.3390/antiox5020013).
  • Wallace T.C., Slavin M., Frankenfeld C.L. Systematic review of anthocyanins and markers of cardiovascular disease. Nutrients, 2016, 8(1): 32-45 (doi: 10.3390/nu8010032).
  • Чупахина Г.Н., Масленников П.В., Скрыпник Л.Н. Природные антиоксиданты (экологический аспект). Калининград, 2011 (doi: 10.13140/2.1.3703.6486).
  • Bulgakov V.P., Avramenko T.V., Tsitsiashvili G.S. Critical analysis of protein signaling networks involved in the regulation of plant secondary metabolism: focus on anthocyanins. Critical Reviews in Biotechnology, 2017, 37(6): 685-700 (doi: 10.3109/07388551.2016.1141391).
  • Celli G.B., Ghanem A., Brooks M.S. A theoretical physiologically based pharmacokinetic approach for modeling the fate of anthocyanins in vivo. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2017, 57(15): 3197-3207 (doi: 10.1080/10408398.2015.1104290).
  • Гинс М.С., Гинс В.К., Пивоваров В.Ф., Кононков П.Ф. Биологически активные вещества с антиоксидантной активностью экстрактов красноокрашенных листьев амаранта. Российская сельскохозяйственная наука, 2016, 5: 17-20.
  • Kent K., Charlton K., Roodenrys S., Batterham M., Potter J., Traynor V., Gilbert H., Morgan O., Richards R. Consumption of anthocyaninrich cherry juice for 12 weeks improves memory and cognition in older adults with mild-to-moderate dementia. European Journal of Nutrition, 2017, 56: 333-341 (doi: 10.1007/s00394-015-1083-y).
  • Фотев Ю.В., Пивоваров В.Ф., Артемьева А.М., Куликов И.М., Гончарова Ю.К., Сысо А.И., Гончаров Н.П. Концепция создания Российской национальной системы функциональных продуктов питания. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2018, 22(7): 776-783 (doi: 10.18699/VJ18.421).
  • Xu D.-P. Li Y., Meng X., Zhou T., Zhou Y., Zheng J., Zhang J.J., Li H.-B. Natural antioxidants in foods and medicinal plants: extraction, assessment and resources. International Journal of Molecular Sciences, 2017, 18(1): 96 (doi: 10.3390/ijms18010096).
  • Olszowy M. What is responsible for antioxidant properties of polyphenolic compounds from plants? Plant Physiology and Biochemistry, 2019, 144: 135-143 (doi: 10.1016/j.plaphy.2019.09.039).
  • Ganesan K., Xu B. A critical review on polyphenols and health benefits of black soybeans. Nutrients, 2017, 9(5): 455 (doi: 10.3390/nu9050455).
  • Guzmán-Ortiz F.A., San Martín-Martínez E., Valverde M.E., Rodriguez-Aza Y., De J Berrios J., Mora-Escobedo R. Profile analysis and correlation across phenolic compounds, isoflavones and antioxidant capacity during germination of soybeans (Glycine max L.). CyTA-Journal of Food, 2017, 15(4): 1-9 (doi: 10.1080/19476337.2017.1302995).
  • Hu C., Wong W.T., Wu R., Lai W.F. Biochemistry and use of soybean isoflavones in functional food development. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2020, 60(12): 2098-2112 (doi: 10.1080/10408398.2019.1630598).
  • Юдина Р.С., Гордеева Е.И., Шоева О.Ю., Тихонова М.А., Хлесткина Е.К. Антоцианы как компоненты функционального питания. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2021, 25(2): 178-189 (doi: 10.18699/VJ21.022).
  • Зыкова Т.Е., Егорова А.А., Стрыгина К.В., Шоева О.Ю., Генаев М.А., Комышев Е.Г., Бусов И.Д., Хертиг К., Герасимова С.В., Коэппель И., Хикель Ш., Короткова А.М., Ви-хорев А.В., Кумлен Й., Хлесткина Е.К. Направленная модификация гена hvmyc2, связан-ного с голубой окраской зерна ячменя. Мат. XIX Всероссийской молодежной школы-конфе-ренции по актуальным проблемам химии и биологии. Владивосток, 2022: 20.
  • Bartl P., Albreht A., Skrt M., Tremlová B., Ošťádalová M., Šmejkal K., Vovk I., Poklar U.N. Anthocyanins in purple and blue wheat grains and in resulting bread: quantity, composition, and thermal stability. International Journal of Food Sciences and Nutrition, 2015, 66(5): 514-519 (doi: 10.3109/09637486.2015.1056108).
  • Pasqualone A., Bianco A.M., Paradiso V.M., Summo C., Gabarcorta G., Caponio F., Blanco A. Production and characterization of functional biscuits obtained from purple wheat. Food Chem., 2015, 180: 64-70 (doi: 10.1016/j.foodchem.2015.02.025).
  • Шоева О.Ю., Гордеева Е.И., Хлесткина Е.К. Внутригенный ДНК-маркер для отбора пшеницы с повышенным содержанием антоцианов в перикарпе зерновки. Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Федеральный исследовательский центр "Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук" (ИЦиГ СО РАН) (RU). Патент на изобретение RU 2774444 C1, 21.06.2022. Заявка № 2021135311 от 29.11.2021.
  • Ma D., Zhang J., Li Y., Wang C. Quality of noodles made from colourgrained wheat. Czech J. Food Sci., 2018, 36: 314-320 (doi: 10.17221/130/2017-CJFS).
  • Шафигуллин Д.Р., Пронина Е.П., Гинс М.С., Солдатенко А.В. Предрасположенность накопления фенольных соединений у сои (Glycine max (L.) Merr.) в зависимости от овощного направления использования. Российская сельскохозяйственная наука, 2020, 4: 22-24 (doi: 10.31857/S2500262720040055).
  • Шафигуллин Д.Р., Байков А.А., Гинс М.С., Пронина Е.П., Солдатенко А.В. Исследование суммарного содержания антиоксидантов в семенах овощных бобовых культур, выращенных в условиях Московской области. Зернобобовые и крупяные культуры, 2018, 4(28): 103-109.
  • Шафигуллин Д.Р., Гинс М.С., Пронина Е.П. Романова Е.В., Солдатенко А.В. Накопление сырого белка образцами сои овощного типа в условиях Центрального района Нечерноземной зоны России. Российская сельскохозяйственная наука, 2020, 2: 13-16 (doi: 10.31857/S2500-2627-2020-2-13-16).
  • Шафигуллин Д.Р., Гинс М.С., Пронина Е.П., Байков А.А. Oнтогенетические изменения содержания вторичных метаболитов (спирто- и водорастворимых антиоксидантов) в семенах сои овощной. Российская сельскохозяйственная наука, 2021, 2: 25-29 (doi: 10.31857/S2500262721020058).
  • Raju M., Sadineni V., Lakshminarayana R., Krishnakantha T.P., Baskaran V. Carotenoid com-position and vitamin A activity of medicinally important green vegetables. Food Chemistry, 2007, 101(4): 15981605 (doi: 10.1016/j.foodchem.2006.04.015).
  • Ames B.N. Micronutrients prevent cancer and delay aging. Toxicol. Lett., 1998, 102-103: 5-18 (doi: 10.1016/S0378-4274(98)00269-0).
  • Егоров Е.Е. Здоровое старение: антиоксиданты, разобщители и/или теломераза? Молекулярная биология, 2020, 54(3): 355-361 (doi: 10.31857/S0026898420030052).
  • Singh R.K., Chang H.W., Yan D., Lee K.M., Ucmak D., Wong K., Abrouk M., Farahnik B., Nakamura M., Zhu T.H., Bhutani T., Liao W. Influence of diet on the gut microbiome and implications for human health. Journal of Translational Medicine, 2017, 15(1): 73 (doi: 10.1186/s12967-017-1175-y).
  • Liu D., Zhang Y., Gharavi R., Park H.R., Lee J., Siddiqui S., Telljohann R., Nassar M.R., Cutler R.G., Becker K.G., Mattson M.P. The mitochondrial uncoupler DNP triggers brain cell mTOR signaling network reprogramming and CREB pathway up-regulation. J. Neurochem., 2015, 134: 677-692 (doi: 10.1111/jnc.13176).
  • Vishnyakova K.S., Vetkova L.G., Jasko M.V., Aliper A.M., Buzdin A.A., Popov K.V., Kudrya-vtseva A.V., Yegorov Y.E. Hair growth stimulation by a natural remedy: animal studies. Madridge J. Dermatol. Res., 2018, 3: 38-45 (doi: 10.18689/mjdr-1000109).
  • Dröge W. Free radicals in the physiological control of cell function. Physiol. Rev, 2002, 82(1): 47-95 (doi: 10.1152/physrev.00018.2001).
  • Trichopoulou A., Vasilopoulou E. Mediterranean diet and longevity. Brit. J. Nutr., 2000, 84 (2): 205-209 (doi: 10.1079/096582197388554).
  • Голубев А.Г. Биохимия продления жизни. Успехи геронтологии, 2003, 12: 57-76.
  • Phonsakhan W., Kong-Ngern K. A comparative proteomic study of white and black glutinous rice leaves. Electronic Journal of Biotechnology, 2015, 18(1): 29-34 (doi: 10.1016/j.ejbt.2014.11.005).
  • Guo Y.M., Duan Y.B., Li S. M., Huang P., Tu J., Li H.H. Xiao F.H., Tan X.L. Evaluation and correlation analysis on mineral concentrations and pigment content in pericarp of color rice. Journal of Plant Genetic Resources, 2012, 12(6): 971-974.
  • Hu C., Zawistowski J., Ling W., Kitts D. Black rice (Oryza sativa L. indica) pigmented fraction suppresses both reactive oxygen species and nitric oxide in chemical and biological model systems. J. Agric. Food Chem., 2003, 51(18): 5271-5277 (doi: 10.1021/jf034466n).
  • Zhu F. Anthocyanins in cereals: сomposition and health effects. Food Research International, 2018, 109: 232-249 (doi: 10.1016/j.foodres.2018.04.015).
  • Iqbal S., Bhanger M.I., Anwar F. Antioxidant properties and components of some commercially available varieties of rice bran in Pakistan. Food Chemistry, 2005, 93(2): 265-272 (doi: 10.1016/j.foodchem.2004.09.024).
  • Kushwaha U.K.S. Black rice. In: Black rice. Springer, Cham, 2016: 21-47 (doi: 10.1007/978-3-319-30153-2_2).
  • Zhang M.W., Zhang R.F., Zhang F.X., Liu R.H. Phenolic profiles and antioxidant activity of black rice bran of different commercially available varieties. J. Agric. Food Chem., 2010, 58: 7580-7587 (doi: 10.1021/jf1007665).
  • Kong S., Junsoo L. Antioxidants in milling fractions of black rice cultivars. Food Chemistry, 2010, 120(1): 278-281 (doi: 10.1016/j.foodchem.2009.09.089).
  • Tian S., Nakamura K., Kayahara H. Analysis of phenolic compounds in white rice, brown rice, and germinated brown rice. J. Agric. Food Chem., 2004, 52(15): 4808-4813 (doi: 10.1021/jf049446f).
  • Brooks S.A., Yan W., Jackson A.K., Deren C.W. A natural mutation in rc reverts white-rice-pericarp to red and results in a new, dominant, wild-type allele: Rc-g. Theoretical and Applied Genetics, 2008, 117: 575-580 (doi: 10.1007/s00122-008-0801-8).
  • Sutharut J., Sudarat J. Total anthocyanin content and antioxidant activity of germinated colored rice. International Food Research Journal, 2012, 19(1): 215-221.
  • Sompong R., Siebenhandi-Ehn S., Linsberger-Martin G., Berghofer E. Physicochemical and an-tioxidative properties of red and black rice varieties from Thailand. China and Sri lanka, Food Chemistry, 2011, 124(1): 132-140 (doi: 10.1016/j.foodchem.2010.05.115).
  • Shen Y., Jin L., Xiao P., Lu Y., Bao J. Total phenolics, flavonoids, antioxidant capacity in rice grain and their relations to grain color, size and weight. Journal of Cereal Science, 2009, 49(1): 106-111 (doi: 10.1016/j.jcs.2008.07.010).
  • Yao Y., Sang W., Zhou M., Ren G. Antioxidant and -glucosidase inhibitory activity of colored grains in China. J. Agric. Food Chem., 2010, 8(2): 770-774 (doi: 10.1021/jf903234c).
  • Yafang S., Gan Z., Jinsong B. Total phenolic content and antioxidant capacity of rice grains with extremely small size. African Journal of Agricultural Research, 2011, 6(10): 2289-2293.
  • Березов Т.Т., Коровкин Б.Ф. Биологическая химия. М., 2002.
  • Гончарова Ю.К., Харитонов Е.М., Малюченко Е.А., Бушман Н.Ю. Молекулярное маркирование признаков, определяющих качество зерна у российских сортов риса. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2018, 22(1): 79-87 (doi: 10.18699/VJ18.334).
  • Крюкова Е.В., Чугунова О.В., Тиунов В.М. Моделирование органолептических показателей качества мучных изделий из второстепенных видов муки. Технология и товароведение инновационных пищевых продуктов, 2016, 3(38): 80-87.
  • Мысаков Д.С., Крюкова Е.В., Чугунова О.В. Исследование реологических свойств альтернативных видов муки. Интернет-журнал Науковедение, 2015, 7(15): 1-6.
  • Чугунова О.В., Кокорева Л.А. Тиунов В.М. Обоснование рецептурного состава сухих кулинарных смесей. Индустрия питания, 2018, 3(2): 22-30.
  • Тиунов В.М., Чугунова О.В., Гращенков Д.В. Особенности разработки рационов питания для людей с глютеновой энтеропатией. Ползуновский вестник, 2019, 1: 64-70 (doi: 10.25712/astu.2072-8921.2019.01.012).
  • Улитин В.О., Харитонов Е.М., Гончарова Ю.К. О признаках качества и их генетическом контроле у риса Oriza L. (обзор). Сельскохозяйственная биология, 2012, 47(3): 12-18.
  • Дерканосова Н.М., Пономарева И.Н., Золотарева Н.И., Гинс М.С., Шуршикова Г.В. Перспективы овощного амаранта в технологии хлебопечения. Хлебопечение России, 2018, 1: 30-33.
  • Магомедов Г.О., Кучменко Т.А., Журавлев А.А., Шевякова Т.А., Чернышова Ю.А., Дроз-дова Е.В., Мазина Е.А., Мирошниченко Л.А. Разработка безглютенового бисквитного из-делия путем подбора оптимальных дозировок обогатителей. Хлебопродукты, 2016, 5: 48-50.
  • Егорова Е.Ю., Резниченко И.Ю. Разработка пищевого концентрата — полуфабриката без-глютеновых кексов с амарантовой мукой. Техника и технология пищевых производств, 2018, 48(2): 36-45 (doi: 10.21603/2074-9414-2018-2-36-45).
  • Скобельская З.Г., Балыхин М.Г., Хасанова С.Д., Гинс М.С. Применение амарантовой муки в производстве вафельных листов повышенной пищевой ценности. Достижения науки и техники АПК, 2020, 34(6): 92-96 (doi: 10.24411/0235-2451-2020-10618).
  • Gins M., Gins V., Momyleva S., Kulikov I., Medvedev S., Kononkov P., Pivovarov V. Mineral composition of amaranth (Amaranthus L.) seeds of vegetable and grain usage by ARHIVBSP selection. Potravinarstvo Slovak Journal of Food Sciences, 2018, 12(1): 330-336 (doi: 10.5219/863).
  • Хлесткина Е.К., Шоева О.Ю., Гордеева Е.И. Гены биосинтеза флавоноидов пшеницы. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2014, 18(4): 784-796.
  • Oikawa T., Maeda H., Oguchi T., Yamaguchi T., Tanabe N., Ebana K., Yano M., Ebitani T., Izawa T. The birth of a black rice gene and its local spread by introgression. Plant Cell, 2015, 27(9): 2401-2414 (doi: 10.1105/tpc.15.00310).
  • Коротенко Т.Л. Оценка хозяйственно ценных признаков репродукций риса после низкотемпературного хранения семян. Мат. II науч.-практ. конф. молодых ученых Всероссийского форума по селекции и семеноводству «Инновационные технологии отечественной селекции и семеноводства». Краснодар, 2018: 244-246.
  • Qin Y., Zhai Q., Li Y., Cao M., Xu Y., Zhao K., Wang T. Cyanidin-3-O-glucoside ameliorates diabetic nephropathy through regulation of glutathione pool. Biomedicine & Pharmacotherapy, 2018, 103: 1223-1230 (doi: 10.1016/j.biopha.2018.04.137).
  • Goncharova J.K., Kharitonov E.M. Genetic control of traits associated with phosphorus uptake in rice (Oryza sativa L.) varieties. Russian Journal of Genetics: Applied Research, 2016, 6(3): 270-278 (doi: 10.1134/S2079059716030035).
  • Kharitonov E.M., Goncharova Y.K., Maliuchenko E.A. The genetics of the traits determining adaptability to abiotic stress in rice (Oryza sativa L.). Russian Journal of Genetics: Applied Research, 2017, 7(6): 684-697 (doi: 10.1134/S2079059717060089).
  • Goufo P., Trindade H. Rice antioxidants: phenolic acids, flavonoids, anthocyanins, proanthocy-anidins, tocopherols, tocotrienols, -oryzanol, and phytic acid. Food Science & Nutrition, 2014, 2(2): 75-104 (doi: 10.1002/fsn3.86).
  • Furukawa T., Maekawa M., Oki T., Suda I., Iida S., Shimada H., Takamure I., Kadowaki K. The Rc and Rd genes are involved in proanthocyanidin synthesis in rice pericarp. The Plant Journal, 2007, 49(1): 91-102 (doi: 10.1111/j.1365-313X.2006.02958.x).
  • Shao Y., Jin L., Zhang G., Lu Y., Shen Y., Bao J. Association mapping of grain color, phenolic content, flavonoid content and antioxidant capacity in dehulled rice. Theoretical and Applied Genetics, 2011, 122: 1005-1016 (doi: 10.1007/s00122-010-1505-4).
  • Tan Y.F., Sun M., Xing Y.Z., Hua J.P., Sun X.L., Zhang Q.F., Corke H. Mapping quantitative trait loci for milling quality, protein content and color characteristics of rice using a recombinant inbred line population derived from an elite rice hybrid. Theoretical and Applied Genetics, 2001, 103: 1037-1045 (doi: 10.1007/s001220100665).
  • Sweeney M.T., Thomson M.J., Pfeil B.E., McCouch S.R. Caught red-handed: Rc encodes a basic helix-loop-helix protein conditioning red pericarp in rice. Plant Cell, 2006, 18: 283-294 (doi: 10.1105/tpc.105.038430).
  • Wang C.X., Shu Q.Y. Fine mapping and candidate gene analysis of purple pericarp gene Pb in rice (Oryza sativa L.). Chinese Science Bulletin, 2007, 52: 3097-3104 (doi: 10.1007/s11434-007-0472-x).
  • Goncharova Y.K. Method of fixing the heterotic effect—implementation on plants (on the hun-dredth anniversary of the birth of V.A. Strunnikov). Russian Journal of Developmental Biology, 2014, 45(6): 367-370 (doi: 10.1134/S1062360414060046).
  • Cuong M., Arasu M., Jeon J., Park Y., Kwon S., Al-Dhabi N., Park S. Medically important carotenoids from Momordica charantia and their gene expressions in different organs. Saudi Journal of Biological Sciences, 2017, 24: 1913-1919 (doi: 10.1016/j.sjbs.2017.11.039).
Еще
Статья обзорная