Атипичные пестивирусы крупного рогатого скота

Автор: Глотов А.Г., Глотова Т.И.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 4 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

Тревожной особенностью последних десятилетий, характеризовавшихся практически неограниченным расширением международных торговых контактов, стали участившиеся вспышки атипичных вирусных инфекций, обнаружение новых вирусов, измененных изолятов и квазитипов с подтвержденной или потенциальной эмерджетностью. Для индустрии скотоводства они представляют реальную и серьезную угрозу в связи с тенденцией к широкому и быстрому распространению в условиях глобализации и применения унифицированных зоотехнических и ветеринарных протоколов. Семейство Flaviviridae объединяет несколько родов, из которых для сельскохозяйственных животных значение имеет род Pestivirus, включающий четыре вируса: вирусной диареи - болезни слизистых оболочек (ВД-БС) крупного рогатого скота (КРС) 1-го и 2-го типов, чумы свиней и пограничной болезни овец (http://ictvonline.org/virusTaxonomy.asp). В обзоре представлена характеристика новой группы вирусов рода Pestivirus семейства Flaviviridae, выделенных в период с 2000 по 2014 годы от буйволов и крупного рогатого скота, а также из эмбриональной сыворотки, используемой для культивирования культур клеток и производства вакцин, которая была заготовлена в Австралии, Канаде, Мексике, Бразилии и Соединенных Штатах Америки и расфасована в Европе (H. Schirrmeier с соавт., 2004; A. Cortez с соавт., 2006; E. Bianchi с соавт., 2011; B. Rodrigues с соавт., 2011; H. Xia с соавт., 2011; H. Xia с соавт., 2012; S. Peletto с соавт., 2012). Вирус также обнаружен в Таиланде, Бангладеш и Китае (L. Liu с соавт., 2009; L. Mao с соавт., 2012; N. Haider с соавт., 2014). Сообщения о выделении агента в других странах Европы, Северной Америки, России, Индии и Австралии отсутствуют (F.V. Bauermann с соавт., 2013). Широкое использование контаминированных биологических препаратов может приводить к проникновению этих вирусов в различные регионы континента, обусловливая их потенциальную эмерджентность для крупного рогатого скота. Штаммы вирусов, представленные цитопатогенным и нецитопатогенным биотипами, официально не классифицированы и имеют в литературе различные названия: третий тип вируса вирусной диареи - болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота (ВД-БС КРС), атипичный пестивирус (HoBi-like), пятый тип рода Pestivirus (N. Decaro с соавт., 2012). На основании филогенетического анализа выделяют две генетических подгруппы: бразильскую и таиландскую, отличающиеся от прототипного члена рода - вируса ВД-БС КРС, но имеющие большое сходство в проявлении клинических признаков, а также в способности инфицировать плод у КРС и буйволов (F.V. Bauermann с соавт., 2013). Спонтанная и экспериментальная инфекция КРС, вызванная HoBi-подобными вирусами, имеет большое сходство с ВД-БС КРС и проявляется в виде диареи, абортов, респираторного синдрома, персистентной инфекции (F.V. Bauermann с соавт., 2013). Подобно возбудителю ВД-БС КРС, эти вирусы способны формировать стационарно неблагополучные очаги (M.N. Weber c соавт., 2014). Открытие указанной группы вирусов требует критической оценки имеющихся диагностических средств и вакцин против ВД-БС КРС. На сегодняшний день тестов для выявления всех пестивирусов жвачных животных или антител к ним не существует. Затруднения их разработки обусловлены высокой вариабельностью вирусов этой группы. При лабораторной диагностике не следует полагаться на использование одного теста. Лучшим диагностическим подходом будет серологическое обследование стада, выявление персистентно инфицированных животных с выделением вируса и последующей молекулярной диагностикой (F.V. Bauermann с соавт., 2013). HoBi-подобные вирусы могут оставаться незамеченными и, как предполагают, компрометировать эффективность программ контроля или эрадикации вирусной диареи, реализующиеся в некоторых странах Европы и США (K. Ståhl с соавт., 2004; J.F. Ridpath, 2010).

Еще

Пестивирусы, вирусная диарея-болезнь слизистых оболочек, атипичные вирусы, сиквенс, генетические подгруппы, фетальная сыворотка, буйволы, крупный рогатый скот, диагностика, программы контроля

Короткий адрес: https://sciup.org/142133602

IDR: 142133602   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.4.399rus

Список литературы Атипичные пестивирусы крупного рогатого скота

  • Harasawa R., Giangaspero M., Ibata G., Paton D.J. Giraffe strain of pestivirus: its taxonomic status based on the 50-untranslated region. Microbiol. Immunol., 2000, 44: 915-921 ( ) DOI: 10.1111/j.1348-0421.2000.tb02583.x
  • Vilcek S., Ridpath J.F., Van Campen H., Cavender J.L., Warg J. Characterization of a novel pestivirus originating from a pronghorn antelope. Virus Res., 2005, 108: 187-193 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2004.09.010
  • Kirkland P.D., Frost M.J., Finlaison D.S., King K.R., Ridpath J.F., Gu X. Identification of a novel virus in pigs -Bungowannah virus: a possible new species of pestivirus. Virus Res., 2007, 129: 26-34 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2007.05.002
  • Giangaspero M., Apicellab С., Harasawa R. Numerical taxonomy of the genus Pestivirus: New software for genotyping based on the palindromic nucleotide substitutions method. J. Virol. Methods, 2013, 192: 59-67 ( ) DOI: 10.1016/j.jviromet.2013.04.023
  • MacLachlan N.J., Dubovi E.J. Flaviviridae. In: Fenner’s veterinary virology. 4th edition/N.J. Mac-Lachlan, E.J. Dubovi (eds.). Academic Press, UK, 2011: 467-481.
  • Rodrigues W.B., Otonel R.A., Fritzen J.T. Natural infection of calf with an atypical bovine pestivirus (BVDV-3). In: Proc. XXII National Meeting of Virology & VI Mercosur Meeting of Virology (Atibaia, Brazil). Virus Rev. Res., 2011, 16 (Suppl. 1): 74.
  • Schirrmeier H., Strebelow G., Depner K., Hoffmann B., Beer M. Genetic and antigenic characterization of an atypical pestivirus isolate, a putative member of a novel pestivirus species. J. Gen. Virol., 2004, 85: 3647-3652 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.80238-0
  • Avalos-Ramirez R., Orlich M., Thiel H.-J., Becher P. Evidence for the presence of two novel Pestivirus species. Virology, 2001, 286: 456-465 ( ) DOI: 10.1006/viro.2001.1001
  • Bauermann F.V., Ridpath J.F., Weiblen R., Flores E.F. HoBi-like viruses: an emerging group of pestiviruses. J. Vet. Diagn. Invest., 2013, 25(1): 6-15 ( ) DOI: 10.1177/1040638712473103
  • Baker J.C. The clinical manifestations of bovine viral diarrhea virus infection. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract., 1995, 11: 425-445.
  • Kahn C.M. Bovine viral diarrhea and mucosal disease complex in intestinal diseases in ruminants. The Merck Vet., 2005, 9: 220.
  • Ridpath J.F. Bovine viral diarrhea virus: global status. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract., 2010, 26: 105-121 ( ) DOI: 10.1016/j.cvfa.2009.10.007
  • Глотов А.Г., Петрова О.Г., Глотова Т.И., Нефедченко А.В., Татарчук А.Т., Котенева С.В., Ветров Г.В., Сергеев А.Н. Распространение вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота. Ветеринария, 2002, 3: 17-21.
  • Глотов А.Г., Келлинг К.Л. Вирусная диарея -болезнь слизистых оболочек КРС и стратегия ее контроля. Российский ветеринарный журнал, 2007, 12: 19-22.
  • Гулюкин М.И., Юров К.П., Глотов А.Г., Донченко Н.А. Стратегия борьбы с вирусной диареей -болезнью слизистых крупного рогатого скота в животноводческих хозяйствах российской федерации. Вопросы вирусологии, 2013, 6: 13-18.
  • Houe H. Epidemiological features and economical importance of bovine virus diarrhoea virus (BVDV) infections. Vet. Microbiol., 1999, 64: 89-107 ( ) DOI: 10.1016/S0378-1135(98)00262-4
  • Giangaspero M., Harasawa R. Characterization of genotypes among bovine viral diarrhea virus type1 strains according to palindromic nucleotide substitutions in the genomic 5¢-untranslated region. J. Virol. Methods, 2014, 195: 34-53 ( ) DOI: 10.1016/j.jviromet.2013.10.003
  • Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M., Kumar S. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol. Biol. Evol., 2011, 28: 2731-2739 ( ) DOI: 10.1093/molbev/msr121
  • Thiel H.-J., Collett M.S., Gould E.A. Flaviviridae. In: Virus taxonomy -eighth report of the International Committee on the Taxonomy of Viruses/C.M. Fauquet, M.A. Mayo, J. Maniloff (eds.). San Diego, CA, 2005: 981-998.
  • Liu L., Xia H., Wahlberg N., Belak S., Baule C. Phylogeny, classification and evolutionary insights into pestiviruses. Virology, 2009, 385: 351-357 ( ) DOI: 10.1016/j.virol.2008.12.004
  • Neill J.D., Bayles D.O., Ridpath J.F. Simultaneous rapid sequencing of multiple RNA virus genomes. J. Virol. Methods, 2014, 201: 68-72 ( ) DOI: 10.1016/j.jviromet.2014.02.016
  • Cortez A., Heinemann M.B., Castro A.M., Soares R.M., Pinto A.M., Alfieri A.A., Flores E.F., Leite R.C., Richtzenhain L.J. Genetic characterization of Brazilian bovine viral diarrhea virus isolates by partial nucleotide sequencing of the 5¢-UTR region. Pesq. Vet. Bras., 2006, 26: 211-216.
  • Mao L., Li W., Zhang W., Yang L., Jiang J. Genome sequence of a novel Hobi-like pestivirus in China. J. Virol., 2012, 86(22): 12444 ( ) DOI: 10.1128/JVI.02159-12
  • Ridpath J.F., Neill J.D., Vilcek S., Dubovi E.F., Carman S. Multiple outbreaks of severe acute BVDV in North America occurring between 1993 and 1995 linked to the same BVDV2 strain. Vet. Microbiol., 2006, 114: 196-204 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2005.11.059
  • Южаков А.Г., Устинова Г.И., Глотов А.Г., Глотова Т.И., Нефедченко А.В., Кунгурцева О.В., Забережный А.Д., Алипер Т.И. Выделение на территории Российской Федерации нецитопатогенного изолята 2-го генотипа вируса диареи -болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота. Вопросы вирусологии, 2009, 6: 43-47.
  • Юров Г.К., Алексеенкова С.В., Диас Хименес К.А. Антигенные свойства нецитопатогенных штаммов вируса диареи-болезни слизистых крупного рогатого скота. Российский ветеринарный журнал, 2013, 2: 24-28.
  • Vilček Š., Ďurkovi B., Kolesàrovà M., Greiser-Wilke I. Paton D. Genetic diversity of international bovine viral diarrhea virus (BVDV) isolates: Identification of a new BVDV-1 genetic group. Vet. Res., 2004, 35: 609-615 ( ) DOI: 10.1051/vetres:2004036
  • Liu L., Kampa J., Belák S., Baule C. Virus recovery and full-length sequence analysis of atypical bovine pestivirus Th/04_KhonKaen. Vet. Microbiol., 2009, 138: 62-68 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2009.03.006
  • Decaro N., Lucente M.S., Mari V. Atypical pestivirus and severe respiratory disease in calves. Europe. Emerg. Infect. Dis., 2011, 17: 1549-1552 ( ) DOI: 10.3201/eid1708.101447
  • Decaro N., Mari V., Pinto P. «Hobi»-like pestivirus: Both biotypes isolated from diseased animal. J. Gen. Virol., 2012, 93: 1976-1983 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.044552-0
  • Weber M.N., Mosena A.C., Simoes S.V., Almeida L.L., Pessoa C.R., Budaszewski R.F., Silva T.R., Ridpath J.F., Riet-Correa F., Driemeier D., Cana C.W. Clinical presentation resembling mucosal disease associated with «HoBi»-like pestivirus in a field outbreak. Transbound. Emerg. Dis., 2014 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12223
  • Xia H., Vijayaraghavan B., Belák S., Liu L. Detection and identification of the atypical bovine pestiviruses in commercial foetal bovine serum batches. PLoS ONE, 2011, 6(12): e28553 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0028553
  • Haider N., Rahman M.S., Khan S.U., Mikolon A., Gurley E.S., Osmani M.G., Shanta I.S., Paul S.K., Macfarlane-Berry L., Islam A., Desmond J., Epstein J.H., Daszak P., Azim T., Luby S.P., Zeidner N., Rahman M.Z. Identification and epidemiology of a rare HoBi-like pestivirus strain in Bangladesh. Transbound. Emerg. Dis., 2014 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12218
  • Bianchi E., Martins M., Weiblen R. Perfil genotípico e antigênico de amostras do vírus da diarréia viral bovina isoladas no Rio Grande do Sul (2000-2010) . Pesq. Vet. Bras., 2011, 31: 649-655.
  • Peletto S., Zuccon F., Pitti M., Gobbi E., Marco L.D., Caramelli M., Masoero L., Acutis P.L. Detection and phylogenetic analysis of an atypical pestivirus, strain IZSPLV_To. Res. Vet. Sci., 2012, 92(1): 147-150 ( ) DOI: 10.1016/j.rvsc.2010.10.015
  • Jones K.E., Patel N.G., Levy M.A., Storeygard A., Balk D., Gittleman J.L., Daszak P. Global trends in emerging infectious diseases. Nature, 1999, 451: 990-993 ( ) DOI: 10.1038/nature06536
  • Decaro N., Lucente M.S., Mari V. Hobi-like pestivirus in aborted bovine fetuses. J. Clin. Microbiol., 2012, 50: 509-512 ( ) DOI: 10.1128/JCM.05887-11
  • Decaro N., Sciarretta R., Lucente M.S. A nested PCR approach for unambiguous typing of pestiviruses infecting cattle. Mol. Cell. Probes, 2012, 26: 42-46 ( ) DOI: 10.1016/j.mcp.2011.11.003
  • Ståhl K., Kampa J., Alenius S., Persson W.A., Baule C., Aiumlamai S., Belák S. Natural infection of cattle with an atypical «HoBi»-like estivirus -implications for BVD control and for the safety of biological products. Vet. Res., 2004, 38: 517-523 ( ) DOI: 10.1051/vetres:2007012
  • Decaro N., Mari V., Lucente M.S. Experimental infection of cattle, sheep and pigs with «Hobi»-like pestivirus. Vet. Microbiol., 2012, 155: 165-171 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2011.08.030
  • Larska M., Polak M.P., Riitho V. Kinetics of single and dual infection of calves with an Asian atypical bovine pestivirus and a highly virulent strain of bovine viral diarrhoea virus 1. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis., 2012, 35: 381-390 ( ) DOI: 10.1016/j.cimid.2012.03.003
  • Kozas T., Aoki H., Nakajima N. Methods to select suitable fetal bovine serum for use in quality control assays for the detection of adventitious viruses from biological products. Biologicals, 2011, 39: 242-248 ( ) DOI: 10.1016/j.biologicals.2011.06.001
  • Liu L., Xia H., Belák S., Baule C. A TaqMan real-time RT-PCR assay for selective detection of atypical bovine pestiviruses in clinical samples and biological products. J. Virol. Methods, 2008, 154: 82-85 ( ) DOI: 10.1016/j.jviromet.2008.09.001
  • Xia H., Larska M., Giammarioli M., De Mia G.M., Cardeti G., Zhou W., Alenius S., Belák S., Liu L. Genetic detection and characterization of atypical bovine pestiviruses in foetal bovine sera claimed to be of Australian origin. Transbound. Emerg. Dis., 2013, 60(3): 284-288 ( ) DOI: 10.1111/j.1865-1682.2012.01341.x
  • Sullivan D.G., Akkina R.K. A nested polymerase chain reaction assay to differentiate pestiviruses. Virus Res., 1995, 38: 231-239 ( ) DOI: 10.1016/0168-1702(95)00065-X
  • Kim S.G., Dubovi E.J. A novel simple one-step single-tube RT-duplex PCR method with an internal control for detection of bovine viral diarrhoea virus in bulk milk, blood, and follicular fluid samples. Biologicals, 2003, 31: 103-106 ( ) DOI: 10.1016/S1045-1056(03)00023-x
  • Harasawa R., Giangaspero M. A novel method for pestivirus genotyping based on palindromic nucleotide substitutions in the 5¢-untranslated region. J. Virol. Methods, 1998, 70: 225-230.
  • Lindberg A., Brownlie J., Gunn G.J. The control of bovine viral diarrhoea virus in Europe: today and in the future. Rev. Sci. Tech., 2006, 25: 961-979.
  • Walz P.H., Grooms D.L., Passler T., Ridpath J.F., Tremblay R., Step D.L., Callan R.J., Givens M.D. Control of bovine viral diarrhea virus in ruminants. J. Vet. Intern. Med., 2010, 24: 476-486 ( ) DOI: 10.1111/j.1939-1676.2010.0502.x
  • Helal M.A., Okamatsu H., Tajima M. Bovine viral diarrhea virus infection in a dairy herd with high prevalence of persistently infected calves. Jpn. J. Vet. Res., 2012, 60: 111-117.
Еще
Статья обзорная