Бактериальные микроорганизмы, ассоциированные с тканями растений в культуре in vitro: идентификация и возможная роль

Автор: Дунаева С.Е., Оследкин Ю.С.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы, итоги

Статья в выпуске: 1 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

Эффективная стерилизация растительных эксплантов и соблюдение правил антисептики не исключают присутствия в in vitro культурах так называемых скрытых (эндофитных) бактерий. Роль этих бактерий в культурах тканей мало изучена, однако ее, например, связывают с регенерационной способностью эксплантов и возможностью трансформировать культивируемые in vitro клетки животных и человека. Бактериальные штаммы, патогенные для человека, могут устойчиво сохраняться в пассируемых культурах и в растениях ex vitro. Расширение среды обитания бактерий создает экологические и генетические риски, которые определяют необходимость тщательного мониторинга эндофитных сообществ в растениях, употребляемых в пищу в сыром виде, а также при применении in vitro технологий в практическом растениеводстве и для получения продуктов питания. Идентификация бактериальных микроорганизмов, колонизирующих in vitro культуры растений, дает возможность изучать влияние бактерий на хозяина, проводить направленную химиотерапию, создавать банк данных микроорганизмов, ассоциированных с культурой растительных тканей. Наиболее распространены два метода идентификации - традиционный, более доступный, но не позволяющий выявлять некультивируемые формы (он основан на использовании культуральных и морфологических характеристик, а также химических и биохимических реакций), и молекулярно-генетический. В последнем случае с использованием метагеномной ДНК и соответствующих специфических праймеров определяют различные последовательности 16S-рРНК, имеющие как консервативные сайты, одинаковые у всех прокариотов, так и пригодные для идентификации видоспецифичные участки. Внутренние транскрибируемые спейсеры (internal transcribed spacers - ITS) преимущественно применяют для различения микроорганизмов на уровне видов и даже штаммов. Таксономический состав бактериальных эндофитов свидетельствует об их разнообразии и отсутствии специфического набора в in vitro культурах растений разной систематической принадлежности и в эксплантах, относящихся к разным органам растения. Среди идентифицированных эндофитных бактерий выявлены потенциально полезные для интактных растений, в частности Streptomycete, Pantoea agglomerans и др., а также патогенные для человека, например Ralstonia mannitolytica, Staphylococcus epidermidis, Corynebacterium amycolatum, Bacillus neonatiensis, Salmonella и Nocaridia spp. При in vitro культивировании растительных объектов длительное бессимптомное присутствие бактерий обусловлено, с одной стороны, подавлением их роста факторами, сопровождающими культивирование растительных эксплантов (pH, температура ниже оптимума для роста бактерий, активирование защитных механизмов), с другой - одновременным поддержанием жизнедеятельности бактерий за счет экссудатов, выделяемых растительным эксплантом. Быстрая пролиферация бактериальных клеток может наступить даже при небольших изменениях первоначальных условий, при увеличении концентрации растительных экссудатов и вследствие собственно in vitro культивирования как стресса в отсутствие регулирующей роли целого организма. По мере увеличения числа пассажей доля растительных культур со скрытой бактериальной контаминацией возрастает. Имеются данные, что при этом некультивируемые эндофиты могут приобретать статус культивируемых. Скрытые бактериальные контаминации способны угнетать регенерацию, микроклональное размножение, вызывать гибель культивируемых in vitro растительных объектов, служить препятствием для воспроизводимости протоколов и иметь отношение к появлению эпигенетических сомаклональных вариантов. Так, фильтраты изолятов Acinetobacter и Lactobacillus plantarum, выделенных из деградирующих каллусов, при инокуляции в экспланты или добавлении в питательную среду резко снижали регенерацию побегов, а бактерии Mycobacterium obuense и M. aichiense угнетали развитие семян в культуре in vitro. Акцентируется проблема получения гнотобиотических растительных культур (в частности, в in vitro коллекциях генетических банков растений), обусловленная сложностью выявления и элиминации бактериальных микроорганизмов.

Еще

Культура тканей растений, бактериальные микроорганизмы, антибактериальная терапия

Короткий адрес: https://sciup.org/142133565

IDR: 142133565   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.1.3rus

Список литературы Бактериальные микроорганизмы, ассоциированные с тканями растений в культуре in vitro: идентификация и возможная роль

  • Leifert C., Woodward S. Laboratory contamination management: the requirement for microbiological quality assurance. Plant Cell Tiss. Cult., 1998, 52: 85-88 ( ) DOI: 1023/A:1005905604043
  • Leifert C., Cassells A.C. Microbial hazards in plant tissue and cell cultures. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant., 2001, 37(2): 133-138 ( ) DOI: 10.1079/IVP2000129
  • Cassells A.C. Contamination and its impact in tissue culture. Acta Hort., 2001, 560: 353-359.
  • Leifert C., Waites W.M., Nicolas J.R. Bacterial contamination of micropropagated plant tissue cultures. J. Appl. Bact., 1989, 67: 353-361.
  • Cassells A.C. Problems in tissue culture: culture contamination. In: Micropropagation technology and application/P.C. Debergh, R.H. Zimmerman (eds.). Kluwer Acad. Publishers, 1991: 31-44.
  • Reed B.M., Mentzer J., Tanprasert P., Yu X. Internal bacterial contamination of micropropagated hazelnut: identification and antibiotic treatment. Plant Cell Tiss. Cult., 1998, 52: 67-70.
  • Thomas P. A three-step screening procedure for the detection of covert and endophytic bacteria in plant tissue cultures. Current Sci., 2004, 87: 67-72.
  • Panicker B., Thomas P., Janakiram T., Venugopalan R., Narayanappa S.B. Influence of cytokinin levels on in vitro propagation of shy suckering chrysanthemum «Arka Swarna» and activation of endophytic bacteria. In vitro Cell Dev. Biol. Plant, 2007, 43(6): 614-622 ( ) DOI: 10.1007/s11627-007-9061-6
  • Reed B.M., Tanprasert P. Detection and control of bacterial contaminants of plant tissue cultures. A review of recent literature. Plant Tissue Culture &. Biotechnology, 1995, 1(3): 137-142.
  • Tanprasert P., Reed B.M. Detection and identification of bacterial contaminants from strawberry runner explants. In vitro Cell Dev. Biol. Plant, 1997, 33: 221-226.
  • Бургутин А.Б., Феоктистова Н.В., Пунина Н.В., Игнатов А.Н. Определение видовой принадлежности бактерий, контаминирующих культуру древесных растений in vitro. Тез. докл. IX Межд. конф. «Биология клеток растений in vitro и биотехнология». Звенигород, 2008: 60-61.
  • Leifert C., Morris C., Waites W.M. Ecology of microbial saprophytes and pathogens in tissue cultured and field grown plants. CRC Crit. Rev. Plant Sci., 1994, 13: 139-183 ( ) DOI: 10.1080/713608058
  • Thomas P., Swarna G.K., Roy P.K., Prakash P. Identification of culturable and originally non-culturable endophytic bacteria isolated from shoot tip cultures of banana cv. Grand Naine. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2008, 93: 55-63 ( ) DOI: 10.1007/s11240-008-9341-9
  • Rafferty S.M., Williams S., Falkiner F.R., Cassels A.C. Persistence in in vitro cultures of cabbage (Brassica oleracea var. capitata L.) of human food poisoning pathogens: Esherichia coli and Serratia marcescens. Proc. Int. Symp. on Meth. and Marks. for Qual. Assur. in Micropropagation/A.C. Cassels, B.M. Doyle, R.F. Curry (eds.). Acta Hort., 2000, 530(ISHS): 145-151.
  • Pirttilä A.M., Laukkanen H., Pospiech H., Myllyla R., Hohtola A. Detection of intracellular bacteria in the buds of Scots pine (Pinus sylvestris L.) by in situ hybridization. Appl. Environ. Microbiol., 2000, 66: 3073-3077 ( ) DOI: 10.1128/AEM.66.7.3073-3077.2000
  • Pirttilä A.M. Endophytes in the buds of Scots pine (Pinus sylvestris L.). Doc. Thesis. Acta Univ. Ouluensis, Ser. A Sci. Rerum Nat., 2001, 36: 1-55.
  • Pirttilä A.M., Joensuu P., Pospiech H., Jalonen J., Hohtola A. Bud endophytes of Scots pine produce adenine derivatives and other compounds that affect morphology and mitigate browning of callus cultures. Physiologia Plantarum, 2004, 121: 305-312 ( ) DOI: 10.1111/j.0031-9317.2004.00330.x
  • Pirttilä A.M., Podolich O., Koskimäki J.J., Hohtola E., Hohtola A. Role of origin and endophyte infection in browning of bud-derived tissue cultures of Scots pine (Pinus sylvestris L.). Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2008, 95: 47-55 ( ) DOI: 10.1007/s11240-008-9413-x
  • Kamoun R., Lepoivre P., Boxus P. Evidence for the occurrence of endophytic prokaryotic contaminants in micropropagated plantlets of Prunus cerasus cv. Montmorency. In: Pathogen and microbial management in micropropagation/A.C. Cassells (ed.). Kluwer Acad. Publishers, Dordrecht, 1997: 145-148.
  • De Almeida C.V., Andreote F.D., Yara R., Tanaka F.A.O., Azevedo J.L., De Almeida M. Bacteriosomes in axenic plants: endophytes as stable endosymbionts. Microbiol Biotech., 2009, 25: 1757-1764 ( ) DOI: 10.1007/s11274-009-0073
  • Thomas P., Swarna G.K., Patil P., Rawal R.D. Ubiquitous presence of normally non-culturable endophytic bacteria in field shoot-tips of banana and their gradual activation to quiescent cultivable form in tissue cultures. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2008, 93: 39-54 ( ) DOI: 10.1007/s112-40-008-9340-x
  • Habiba U., Reza S., Saha M.L., Khan M.R., Hadiuzzaman S. Endogenous bacterial contamination during in vitro culture of Banana: identification and prevention. Plant Tiss. Cult., 2002, 12: 117-124.
  • Ryan R.P., Germaine K., Franks A., Ryan D., Dowling D.N. Bacterial endophytes: recent developments and applications. FEMS Microbiol. Lett., 2008, 278(1): 1-9.
  • Saens E., Borda C., Renata L., Da Silva M.G., Padilla G. Searching for new antibiotics in endophytic microorganisms. Proc. 2nd Int. Symp. on Biological Control of Bacterial Plant Diseases. Orlando, FL, USA, 2008: 71 (doi: 10.11 11/j.1574-6982.2007.00918.x).
  • Маркова Ю.А., Романенко А.С., Духанина А.В. Выделение бактерий семейства Enterobacteriaceae из растительных тканей. Микробиология, 2005, 74(5): 663-666.
  • Lacroix B., Tzfira T., Vainstein A., Citovsky V. A сase of promiscuity: Agrobacterium’s endless hunt for new partners. Trends Genet., 2006, 22: 29-37 ( ) DOI: 10.1016/j.tig.2005.10.004
  • Bulgakov V.P., Kiselev K.V., Yakovlev K.V., Zhuravlev Y.N., Gontcharov A.A., Odintsova N.A. Agrobacterium-mediated transformation of sea urchin embryos. Biotechnol. J., 2006, 1: 454-461 ( ) DOI: 10.1002/biot.200500045
  • Тихонович И.А., Проворов Н.А. Сельскохозяйственная микробиология как основа экологически устойчивого агропроизводства: фундаментальные и прикладные аспекты. Сельскохозяйственная биология, 2011, 3: 3-9.
  • Thomas P. In vitro decline in plant cultures: detection of a legion of covert bacteria as the cause for degeneration of long-term micropropagated triploid watermelon cultures. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2004, 77: 173-179 ( ) DOI: 10.1023/B:TICU.0000016824.09108.c8.23
  • Holland M.A., Polacco J.C. PPFMs and other covert contaminants: is there more to plant physiology than just plant? Annu. Rev. Plant Physiol., 1994, 45: 197-209 ( ) DOI: 10.1146/annurev.pp.45.060194.001213
  • Horsch R.B., King J. A covert contaminant of cultured plant cells: elimination of a Hyphomicrobium sp. from cultures of Datura innoxia (Mill.). Plant Cell Tiss. Org. Cult., 1983, 2: 21-28.
  • Hallmann J., Quadt-Hallmann A., Mahaftee W.F. Endophytic bacteria in agricultural crops. Can. J. Microbiol., 1997, 43: 895-914.
  • Baldani J.I., Caruso L., Baldani V.L.D., Goi S.R., Dobereiner J. Recent advances in BNF with non-legume plants. Soil Biol. Biochem., 1997, 29: 911-922.
  • Ulrich K., Ulrich F., Ewald D. Diversity of endophytic bacterial communities in poplar grown under field conditions. FEMS Microbiol. Ecol., 2008, 63: 169-180 ( ) DOI: 1111/1574-6941.2007.00419.x
  • Van Doorn W.G., De Stigter H.C.M., De Witte Y., Boekestein A. Micro-organisms at the cut surface and in xylem vessels of rose stems: a scanning electron microscope study. J. Appl. Bact., 1991, 70: 34-39.
  • Thomas P. Reemergence of covert bacteria Bacillus pumilus and Brevibacillus sp. in microbe-freed grape and watermelon stocks attributable to occasional autoclaving defying residual spores from previous cycles. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2006, 87: 155-165 ( ) DOI: 10.1007/s11240-006-9150-y
  • Thomas P. Isolation of an ethanol-tolerant endospore-forming Gram-negative Brevibacillus sp. as a covert contaminant in grape tissue cultures. J. Appl. Microbiol., 2006, 101: 764-774 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2672.2006.02993.x
  • Laukkanen H., Soini H., Kontunen-Soppela S., Hohtola A., Viljanen M. A mycobacterium isolated from tissue cultures of mature Pinus sylvestris interferes with growth of Scots pine seedlings. Tree Physiol., 2000, 20(13): 915-920.
  • Pence V.C., Sandoval J.A. Controlling contamination during in vitro collection. In: In vitro collection techniques for germplasm conservation/V.C. Penke, J.A. Sandoval, V.M. Villalobos, F. Engelmann (eds.). IPGRI Technical Bulletin (Rome, Italy), 2002, 7: 30-40.
  • Roy A., Saha P.K. Factors involved during in vitro culture of Calamus rotang. J. Trop. For. Sci., 1997, 10: 225-232.
  • Smith R.H., Burrows J., Kurten K. Challenges associated with micropropagation of Zephyranthes and Hippeastrum sp. (Amaryllidaceae). In vitro Cell Dev. Biol. Plant., 1999, 35: 281-282.
  • Buckley P.M., De Wilde Е.N., Reed B.M. Characterization and identification of bacteria isolated from micropropagated mint plants. In vitro Cell Dev. Biol. Plant, 1995, 31: 58-64.
  • Reed B.M., Buckley P.M. Tissue Culture Contaminants Handbook. USDA-ARS, Corvallis, OR. 1999 (Lab manual).
  • Singha S., Bissonnette G.K., Double M.L. Methods for sterilizing instruments contaminated with Bacillus sp. from plant tissue cultures. Hort. Sci., 1987, 22: 659.
  • Stead D.E., Elphinstone J.G., Weller S., Smith N., Hennessy J. Modern methods for characterizing, identification and detecting bacteria associated with plants. Acta Hort., 2000, 530: 45-57.
  • Определитель бактерий Берджи (пер. с англ.)/Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита, Дж. Стейли, С. Уильямса. Т. 1. М., 1997.
  • http://www.arb-silva.de
  • Greizen K., Loeffelholz M., Purohit A., Leong D. PCR primers and probes for the 16S rRNA gene of most species of pathogenic bacteria, including bacteria found in cerebrospinal fluid. J. Clin. Microbiol., 1994, 32: 335-351.
  • Wilson K.H. Detection of culture-resistant bacterial pathogens by amplification and sequencing of ribosomal DNA. Clin. Infect. Dis., 1994, 18: 958-962 ( ) DOI: 10.1093/clinids/18.6.958
  • Garcia-Martinez J., Acinas S.G., Rodrigues-Valere F. Use of the 16S-23S ribosomal genes spacer region in studies of prokaryotic diversity. J. Microbiol. Meth., 1999, 36: 55-64.
  • Thomas P., Soly T.A. Endophytic bacteria associated with growing shoot tips of banana (Musa sp.) cv. Grand Naine and the affinity of endophytes to the host. Microb. Ecol., 2009, 58(4): 952-964 ( ) DOI: 10.1007/s00248-009-9559-z
  • Сафронова В.И., Чижевская Е.П., Белимов А.А., Павлова Е.А. Определение таксономического положения микросимбионтов копеечника (Hedysarum) и астрагала (Astragalus) на основе анализа генов рибосомальных РНК. Сельскохозяйственная биология, 2011, 3: 61-64.
  • http://www.ncbi.nlm.nih.gov/
  • Пиневич А.В. Микробиология. Биология прокариотов. Т. 1. СПб, 2007.
  • Leifert C. Quality assurance systems for plant cell and tissue culture: The problem of latent persistence of bacterial pathogens and Agrobacterium-based transformation vector systems. Acta Hort., 2000, 530: 87-91.
  • Ewald D., Zaspel I., Naujoks G., Behrendt U. Endogenous bacteria in tissue cultures of conifers -appearance and action. Acta Hort., 2000, 530: 137-143.
  • Thomas P., Panicker B., Janakiram T., Sathyanarayana B.N. In vitro propagation of «Arka Ravi» chrysanthemum on growth regulator-free medium harboring endophytic bacteria. J. Hortic. Sci. Biotech., 2009, 84(6): 653-659.
  • Оследкин Ю.С., Левчук С.С., Огородникова В.Ф., Дунаева С.Е., Лупышева Ю.В., Орлова С.Ю., Пазова З.Х., Трускинов Э.В., Гавриленко Т.А. Бактериальные инфекции в культуре in vitro растений. Межд. науч. конф. «Молекулярная генетика, геномика и биотехнология». Минск, 2004: 173-174.
  • Дунаева С.Е., Пендинен Г.И., Антонова О.Ю., Швачко Н.А., Волкова Н.Н., Гавриленко Т.А. Сохранение вегетативно размножаемых культур в in vitro и криоколлекциях. Метод. указ./Под ред. Т.А. Гавриленко. СПб, 2011.
  • Cooke D.L., Waites W.M., Leifert C. Effects of Agrobacterium tumefaciens, Erwinia carotovora, Pseudomonas syringae and Xanthomonas campestris on plant tissue culture of Aster, Cheiranthus, Delphinium, Iris and Rosa: disease development in vivo as results of latent infection in vitro. J. Plant Dis. Protect., 1992, 99: 469-481.
  • Thomas P., Prabhakara B.S., Pitchaimuthu M. Cleansing the long-term micropropagated triploid watermelon cultures from covert bacteria and field testing the plants for clonal fidelity and fertility during the 7-10 year period in vitro. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2006, 85: 317-329 ( ) DOI: 10.1007/s11240-006-9083-5
  • Misra P., Gupta N., Toppo D.D., Pandey V., Mishra M.K., Tuli R. Establishment of long-term proliferating shoot cultures of elite Jatropha curcas L. by controlling endophytic bacterial contamination. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2010, 100: 189-197 ( ) DOI: 10.1007/s11240-009-9636-5
  • Leifert C., Waites W.M., Camotta H. Lactobacillus plantarum: a deleterious contaminant of plant tissue cultures. J. Appl. Bact., 1989, 67: 363-370.
  • Dias A.C.F., Costa F.E.C., Andreote F.D., Lacava P.T., Teixeira M.A., Assump ção L.C., Araújo W.L., Azevedo J.L., Melo I.S. Isolation of micro propagated strawberry endophytic bacteria and assessment of their potential for plant growth promotion. World J. Microbiol. Biotechnol., 2009, 25: 189-195 ( ) DOI: 10.1007/s11274-008-9878-0
  • Поляков А.В., Чикризова А.Ф., Каляева М.А., Захарченко Н.С., Балохина Н.В., Бурьянов Я.И. Трансформация растений льна-долгунца. Физиология растений, 1998, 45(4): 882-887.
  • Каляева М.А., Захарченко Н.С., Доронина Н.Б., Рукавцова Е.Б., Иванова Е.Г., Алексеева Е.Е., Троценко Ю.А., Бурьянов Я.И. Стимуляция роста и морфогенеза растений in vitro ассоциативными метилотрофными бактериями. Физиология растений, 2001, 48(4): 596-599 ( ) DOI: 10.1023/A:1016715800238
  • Каляева М.А., Доронина Н.Б., Иванова Е.Г., Троценко Ю.А., Бурьянов Я.И. Применение аэробных метилобактерий и метанотрофов для индукции морфогенеза пшеницы мягкой (Triticum aestivum L.) in vitro. Биотехнология, 2003, 2: 38-44.
  • Широких И.Г., Шуплецова О.Н., Широких А.А. Оценка влияния метилотрофных бактерий на растения in vitro. Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук, 2007, 5: 23-25.
  • McFall-Ngai M. Unseen forces: the influence of bacteria on animal development. Devel. Biol., 2002, 242: 1-14 ( ) DOI: 10.1006/dbio.2001.0522
  • Murthy B.N.S., Vettakkorumakankav N.N., KrishnaRaj S., Odumeru J., Saxena P. Characterization of somatic embryogenesis in Pelargonium ½ hortorum mediated by a bacterium. Plant Cell Rep., 1999, 18: 607-613.
  • Luna C., Collavino M., Mroginski L., Sansberro P. Identification and control of bacterial contaminants from Ilex dumosa nodal segments culture in a temporal immersion bioreactor system using 16S rDNA analysis. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2008, 95(1): 13-19.
  • Lata A.H., Li X.C., Silva B., Moraes R.M., Halda-Alija L. Identification of IAA-producing endophytic bacteria from micropropagated Echinacea plants using 16S rRNA sequencing. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2006, 85(3): 353-359 ( ) DOI: 10.1007/s11240-006-9087-1
  • Thomas P., Kumari S., Swarna G.K., Gowda T.K.S. Papaya shoot tip associated endophytic bacteria isolated from in vitro cultures and host-endophyte interaction in vitro and in vivo. Can. J. Microbiol., 2007, 3(3): 380-390 ( ) DOI: 10.1139/WO6-141
  • Iseneger D.A., Taylor P.W.J., Mullins K., McGregor G.R., Barlus M., Holchinsoo J.F. Molecular detection of a bacterial contaminant Bacillus pumilus in symptomless potato plant tissue cultures. Plant Cell Rep., 2003, 21(8): 814-820 ( ) DOI: 10.1007/s00299-003-0583-z
  • Thomas P., Kumari S. Inconspicuous endophytic bacteria mimicking latex exudates in shoot-tip cultures of papaya. Sci. Hort., 2010, 124(4-1): 469-474 ( ) DOI: 10.1016/j.scienta.2010.02.013
  • Liu T.-H., Hsu N.-W., Wu R.-Y. Control of leaf-tip necrosis of micropropagated ornamental statice by elimination of endophytic bacteria. In vitro Cell. Devel. Biol. Plant, 2005, 41(4): 546-549 ( ) DOI: 10.1079/IVP2005673
  • Abreu-Tarazi M.F., Navarrete A.A., Andreote F.D., Almeida C.V., Tsai S.M., Almeida M. Endophytic bacteria in long-term in vitro cultivated «axenic» pineapple microplants revealed by PCR-DGGE. J. Microbiol. Biotechnol., 2010, 26(3): 555-560 ( ) DOI: 10.1007/s11274-009-0191-3
  • Kulkarni A.A., Kelkar S.M., Watve M.G., Krishnamurthy K.V. Characterization and control of endophytic bacterial contaminants in in vitro cultures of Piper spp., Taxus baccata subsp. wallichiana and Withania somnifera. Can. J. Microbiol., 2007, 53: 63-74 ( ) DOI: 10.1139/WO6-106
  • Falkiner F.R. Antibiotics and antibiotic resistance associated witch plants, fruits and vegetables. Acta Hort., 2000, 530: 83-86.
  • Seckinger G.R., Torres K.C. Physical and chemical means of controlling contamination in plant tissue culture. Proc. World Congress on in vitro Biol. S. Francisco, California, USA, 2004 (http://www.phytotechlab.com/pdf/SIVBMay2004.pdf).
Еще
Статья обзорная