Биохимические показатели крови лосей (Alces alces linnaeus, 1758) из разных половозрастных групп

Биохимические показатели крови лосей (Alces alces linnaeus, 1758) из разных половозрастных групп

Автор: Кошурникова М.А., Домский И.А., Березина Ю.А., Экономов А.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: 100-летие всероссийского НИИ охотничьего хозяйства и звероводства им. Профессора Б.М. Житкова: Биоресурсы и природопользование

Статья в выпуске: 2 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

Лось - перспективный вид для фермерского охотничьего хозяйства, отличающийся высокой скоростью роста, а также широкими возможностями хозяйственного использования для получения мяса и молока. В России и мире существуют единичные исследования биохимических показателей крови лосей (S.A. Becker с соавт., 2010; A.W. Franzmann с соавт., 1978; M.A. Keech с соавт., 1998; V. Reshetnyak с соавт., 2021; M.K. Rostal с соавт., 2012). Составление их референсного диапазона необходимо для оценки физического состояния животных, качества питания, среды обитания, воздействия стрессоров, влияния инфекционных и инвазионных заболеваний (A.A. Cunningham с соавт., 1998; P. Daszak с соавт., 1999; W.F. Frick с соавт., 2010). В настоящей работе впервые установлены биохимические показатели крови лосей из разных половозрастных групп. Цель работы - определение биохимических показателей крови у лосей разного пола и возраста, обитающих на территории Кировской области. Цельную кровь брали у животных ( n = 90), добытых в сезоны охоты 2006-2020 годов. Отбор проб проводили с октября по декабрь в научно-опытном охотничьем хозяйстве ФГБНУ Всероссийского НИИ охотничьего хозяйства и звероводства им. профессора Б.М. Житкова (Кировская обл.). Все животные были дикими и свободно передвигались, питаясь местной растительностью . Исследовали цельную кровь от следующих половозрастных групп: 20 молодых самок в возрасте 6-7 мес; 20 взрослых самок в возрасте 2,5-7 лет; 20 молодых самцов в возрасте 6-7 мес; 30 взрослых самцов в возрасте 2,5-7 лет. Все животные считались клинически здоровыми. Образцы крови брали из яремной вены, которую перерезали сразу после отстрела животного. Исследования сыворотки крови проводили на полуавтоматическом биохимическом анализаторе Biochеm SA («High Technology, Inc.», США). Анализ включал определение активности аспартатаминотрансферазы (AСT), аланинаминотрансферазы (АЛТ), щелочной фосфатазы, лактатдегидрогеназы (ЛДГ), альфа-амилазы, содержания общего белка, альбумина, общего билирубина, прямого билирубина, креатинина, мочевины, холестерина, глюкозы. В сыворотке крови взрослых лосей отмечали высокую активность АСТ (у самок и самцов соответственно 253,8±52,38 и 250,9±47,52 Ед/л) и альфа-амилазы (29,2±7,20 и 32,0±8,77 Ед/л), высокое содержание креатинина (183,9±18,59 и 182,1±23,66 ммоль/л), мочевины (6,2±0,82 и 5,9±0,87 ммоль/л). У молодых особей показатели по АСТ (161,2±28,30 и 160,0±30,92 Ед/л), альфа-амилазе (24,6±4,91 и 23,2±5,46 Ед/л), содержанию креатинина (152,8±20,32 и 149,1±23,78 ммоль/л), мочевины (2,4±0,63 и 2,6±0,98 ммоль/л) были значительно ниже, но активность АЛТ (60,8±6,42 и 58,7±6,74 Ед/л), щелочной фосфатазы (230,4±40,79 и 222,2±31,14 Ед/л), ЛДГ (805,2±185,57 и 822,9±237,13 Ед/л) и содержание глюкозы (6,3±1,01 и 6,3±1,03 ммоль/л) были выше. Взрослые животные характеризовались меньшими показателями по АЛТ (43,6±7,35 и 41,9±6,33 Ед/л), щелочной фосфатазе (69,3±12,62 и 69,9±11,31 Ед/л), ЛДГ (614,1±98,11 и 598,2±129,37 Ед/л), глюкозе (5,3±1,02 и 5,3±1,14 ммоль/л). Установлены статистически значимые (р function show_abstract() { $('#abstract1').hide(); $('#abstract2').show(); $('#abstract_expand').hide(); }

Еще

Лось, самки, самцы, возрастные группы, биохимические показатели крови, сыворотка крови

Короткий адрес: https://sciup.org/142238881

IDR: 142238881   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.2.288rus

Список литературы Биохимические показатели крови лосей (Alces alces linnaeus, 1758) из разных половозрастных групп

  • Соколов Н.В. Лось европейский и его одомашнивание. Кострома, 2012.
  • Хочачка П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. М., 1977.
  • Кошурникова М.А., Березина Ю.А., Домский И.А. Результаты исследования крови лосей (Alces alces). Мат. VII Межд. симп. «Динамика популяций охотничьих животных Северной Европы». Петрозаводск, 2018: 66-68.
  • Cunningham A.A., Daszak P. Extinction of a species of land snail due to infection with a micro-sporidian parasite. Conservation Biology, 1998, 12(5): 1139-1141 (doi: 10.1046/j.1523-1739.1998.97485.x).
  • Daszak P., Berger L., Cunningham A.A., Hyatt A.D., Green D.E., Speare R. Emerging infectious diseases and amphibian population declines. Emerging Infectious Diseases, 1999, 5(6): 735-748 (doi: 10.3201/eid0506.990601).
  • Frick W.F., Pollock J.F., Hicks A.C., Langwig K.E., Reynolds D.S., Turner G.G., Butchko-ski C.M., Kunz T.H. An emerging disease causes regional population collapse of a common North American bat species. Science, 2010, 329(5992): 679-682 (doi: 10.1126/science.1188594).
  • Hudson P.J., Rizzoli A., Grenfell B.T., Heesterbeek H., Dobson A. The ecology of wildlife diseases. Oxford University Press, Oxford, UK, 2002: 1-5.
  • Кочан Т.И. Метаболическая адаптация диких жвачных к условиям Севера. Национальная ассоциация ученых, 2015, 8(13): 110-112.
  • James N.L., Bond M.L., Ozgul А., Lee D.E. Trophic processes constrain seasonal ungulate dis-tributions at two scales in an East African savanna. Journal of Mammalogy, 2022, 103(4): 956-969 (doi: 10.1093/jmammal/gyac050).
  • Jolles A.E., Beechler B.R., Dolan B.P. Beyond mice and men: environmental change, immunity and infections in wild ungulates. Parasite Immunology, 2015, 37(5): 255-266 (doi: 10.1111/pim.12153).
  • Ruprecht J.S., Hersey K.R., Hafen K., Monteith K.L., DeCesare N.J., Kauffman M.J., Mac-Nulty D.R. Reproduction in moose at their southern range limit. Journal of Mammalogy, 2016, 97(5): 1355-1365 (doi: 10.1093/jmammal/gyw099).
  • Ohlson M., Staaland H. Mineral diversity in wild plants: benefits and bane for moose. Oikos, 2001, 94(3): 442-454 (doi: 10.1034/j.1600-0706.2001.940307.x).
  • Dodge W.B., Winterstein S.R., Beyer D.E., Campa III H. Survival, reproduction, and movements of moose in the western Upper Peninsula of Michigan. Alces, 2004, 40: 71-85.
  • WallisDeVries M.F. Habitat quality and the performance of large herbivores. In: Grazing and conservation management /M.F. WallisDeVries, J.P. Bakker, S.E. Wieren (eds.). Dortdrecht, Kluwer Academic Publisher, 1998: 275-320 (doi: 10.1007/978-94-011-4391-2_9).
  • Arnemo J.M., Negard T., Søli N.E. Chemical capture of free-ranging red deer (Cervus elaphus) with medetomidine-ketamine. Rangifer, 1994, 14(3): 123-127 (doi: 10.7557/2.14.3.1144).
  • Fettman M.J., Rebar A., Lassen E.D., Greco D.S. Clinical chemistry of common domestic spe-cies. In: Veterinary hematology and clinical chemistry /M.A. Thrall, D.C. Baker, T.W. Campbell, D.B. DeNicola, M.J. Fettman, E.D. Lassen, A. Rebar, G. Weiser (eds.). Lippincott Williams and Wilkins, Maryland, 2004: 301-462.
  • Thrall M.A., Weiser G., Jain N.C., Baker D.C., Brown D., Vap L. Hematology of common domestic species. In: Veterinary hematology and clinical chemistry /M.A. Thrall, D.C. Baker, T.W. Campbell, D.B. DeNicola, M.J. Fettman, E.D. Lassen, A. Rebar, G. Weiser (eds.). Lippincott Williams and Wilkins, Baltimore, Maryland, 2004: 69-210.
  • Caldeira R.M., Belo A.T., Santos C.C., Vazques M.I., Portugal A.V. The effect of long-term feed restriction and over-nutrition on body condition score, blood metabolites and hormonal profiles in ewes. Small Ruminant Research, 2007, 68(3): 242-255 (doi: 10.1016/j.smallrumres.2005.08.027).
  • Johnson D., Harms N.J., Larter N.C., Elkin B.T., Tabel H., Wei G. Serum biochemistry, serol-ogy, and parasitology of boreal caribou (Rangifer tarandus caribou) in the Northwest Territories, Canada. Journal Wildlife Diseases, 2010, 46(4): 1096-1107 (doi: 10.7589/0090-3558-46.4.1096).
  • Березина Ю.А., Кошурникова М.А., Домский И.А., Беспятых О.Ю. Биохимические показатели крови лося с диагностически значимым титром антител к возбудителю боррелиоза. Международный вестник ветеринарии, 2017, 3: 30-33.
  • Becker S.A., Kauffman M.J., Anderson S.H. Nutritonal condition of adult female Shiras moose in northwest Wyoming. Alces: A Journal Devoted to the Biology and Management of Moose, 2010, 46: 151-166.
  • Franzmann A.W., Leresche R.E. Alaskan moose blood studies with emphasis on condition eval-uation. The Journal of Wildlife Management, 1978, 42(2): 334-351 (doi: 10.2307/3800270).
  • Keech M.A., Stephenson T.R., Bowyer R.T., Ballenberghe V.V., Hoef J.M.V. Relationships be-tween blood-serum variables and depth of rump fat in Alaskan moose. Alces: A Journal Devoted to the Biology and Management of Moose, 1998, 34(1): 173-179.
  • Reshetnyak V., Stekol'nikov A., Burdeynyy V., Yelokhin M., Malakhova L. Morphobiochemical Parameters of blood in traumatism in moose under domestication. International Transaction Jour-nal of Engineering, Management, & Applied Sciences & Technologies, 2021, 12(7): 1-8 (doi: 10.14456/itjemast.2021.143).
  • Rostal M.K., Evans A.L., Solberg E.J., Arnemo J.M. Hematology and serum chemistry reference ranges of free-ranging moose in Norway. Journal of Wildlife Diseases, 2012, 48(3): 548-559 (doi: 10.7589/0090-3558-48.3.548).
  • Ивантер Э.В., Коросов А.В. Элементарная биометрия. Петрозаводск, 2005.
  • Miller A.L., Alina L. E., Oystein O., Arnemo J.M. Biochemical and hematologic reference values for free-ranging, chemically immobilized wild Norwegian Reindeer (Rangifer tarandus tarandus) dur-ing early winter. Journal of Wildlife Diseases, 2013, 49(2): 221-228 (doi: 10.7589/2012-04-115).
  • Герасименко А.А., Соколов М.Ю., Беляева Н.Ю., Ашенбреннер А.И. Оценка влияния пробиотико-ферментных препаратов на биохимические показатели крови коров в раздое. Вестник Алтайского государственного аграрного университета, 2015, 3(125): 97-101.
  • Вебер А.Э., Симаков А.Ф., Чувьюрова Н.И., Чалышев А.В., Бадло Л.П. Кочан Т.И., Мочалов Н.Н. Физиология питания и обмен веществ лося. Сыктывкар, 1992.
  • Koseoglu M., Hur A., Atay A., Cuhadar S. Effects of hemolysis interferences on routine bio-chemistry parameters. Biochemia medica, 2011, 21(1): 79-85 (doi: 10.11613/bm.2011.015).
  • Thrall M.A., Baker D.C., Campbell T.W., DenicolaD., Fettman, M.J., Lassen, E.D., Rebar A., Weiser G. Hematology and veterinary clinical biochemistry /J.J. Fagliari (ed.). São Paulo, Roca, 2006.
  • Громыко Е.В. Оценка состояния организма коров методами биохимии. Экологический вестник Северного Кавказа, 2005, 2: 80-94.
  • Коржуев П.А. Гемоглобин. Сравнительная физиология и биохимия. М., 1964.
  • Коржуев П.А. Дыхательная функция крови и ее связь со скелетом позвоночных. Успехи современной биологии, 1955, 39(2): 163-195.
  • Моисеенко Н.А., Мочалов Н.И. Эколого-физиологическая характеристика красной крови и энергозатраты у лосей в раннем постнатальном онтогенезе. В сб.: Влияние экологических факторов на продуктивность диких животных в экосистемах Eвропейского Северо-Востока СССР. Сыктывкар, 1987: 82.
  • Чермных Н.А., Рощевский М.П., Новожилова Э.А. Копытные животные в условиях Севера: газоэнергетический обмен и сердечная деятельность. Л., 1980.
  • Кнорре Е.П. Итоги и перспективы одомашнения лося. В сб.: Труды Печоро-Илычского государственного заповедника. Сыктывкар, 1961: 5-113.
  • Галанцев В.П., Гуляева Е.Л. Эволюция лактации. Л., 1987.
  • Лихачев А.И. Лоси Западной Сибири. Новосибирск, 1959.
  • Heins M., Heil W., Withold W. Storage of serum or whole blood samples? Effects of time and temperature on 22 serum analytes. European Journal of Clinical Chemistry and Clinical Biochem-istry, 1995, 33(4): 231-238 (doi: 10.1515/cclm.1995.33.4.231).
  • Хиваринен Х. Пищевая адаптация северного оленя (Rangifer tarandus) к зимним условиям. В сб.: Адаптация животных к зимним условиям. М., 1980: 133-141.
  • Василисин В.В., Соколов В.В., Голубцов А.В., Мистюкова О.Н., Кузьмичёва В.Н., Минченко Л.П. Физиолого-биохимические показатели крови коров красно-пестрой породы и коров симментальской породы австрийской селекции. Вестник Воронежского государственного аграрного университета, 2009, 1(20): 58-63.
  • Schutte J.E., Longhurst J.C., Gaffney F.A., Bastian B.C., Blomquist G. Total plasma creatinine: an accurate measure of total striated muscle mass. Journal of Applied Physiology, 1981, 51(3): 762-766 (doi: 10.1152/jappl.1981.51.3.762).
  • Медведева М.А. Клиническая ветеринарная лабораторная диагностика. М., 2013.
  • Arnemo J.M., Caulkett N., West G., Heard D., Caulkett N. Stress. In: Zoo animal and wildlife immobilization and anesthesia. Blackwell Publishing, Ames. Iowa, 2007: 103-110.
  • Franzmann A.W., Schwartz C.C., Johnson D.C. Baseline body temperatures, heart rates and respiratory rates of moose in Alaska. Journal of Wildlife Diseases, 1984, 20(4): 333-337 (doi: 10.7589/0090-3558-20.4.333).
  • Spraker T. Stress and capture myopathy in artiodactyls. In: Zoo and wild animal medicine: current therapy /M.E. Fowler (ed.). Philadelphia, Pennsylvania, 1993: 481-488.
  • Nieminen M. Nutritional and seasonal effects on the haematology and blood chemistry in reindeer (Rangifer tarandus tarandus L.). Comparative Biochemistry and Physiology, 1980, 66(3): 399-413 (doi: 10.1016/0300-9629(80)90186-3).
  • Ковтуненко А.Ю. Биохимические параметры крови коров при адаптации к низким тем-пературам. Современные проблемы науки и образования, 2012, 6: 568-575.
  • Богомолов Д.В., Фетисов В.А., Богомолова И.Н., Баранова М.Я., Карапетян Н.Г. Определение длительности умирания при различных видах смерти. В сб.: Медицинские технологии, используемые при производстве судебно-медицинских экспертиз. М., 2012: 147-148.
  • Путинцев В.А., Богомолов Д.В., Богомолова И.Н., Денисова О.П. Определение длительности и темпа умирания по морфологическим признакам. М., 2017.
  • Путинцев В.А., Богомолов Д.В., Сундуков Д.В. Морфологические признаки различных темпов наступления смерти. Общая реаниматология, 2018, 14(4): 35-43 (doi: 10.15360/1813-9779-2018-4-35-43).
  • Эделев И.С. Совершенствование судебно-медицинской посмертной диагностики особенностей премортального периода. Канд. дис. Нижний Новгород, 2019.
  • Perry E.K., Perry R.H., Tomlinson B.E. The influence of agonal status on some neurochemical activities of postmortem human brain tissue. Neuroscience Letters, 1982, 29(3): 303-307 (doi: 10.1016/0304-3940(82)90334-2).
  • Асташкина О.Г., Власов Н.В. Значение и возможности судебно-биохимических исследований при дифференциальной диагностике различных видов патологических состояний. Проблемы экспертизы в медицине, 2006, 4(24): 17-19.
  • Асташкина О.Г., Шигеев В.Б., Шигеев С.В. Прикладная судебно-медицинская биохимия. М., 2020.
  • Горбунова А.А., Дабаева В.К. Биохимический метод в исследовании живой и трупной крови. Тверской медицинский журнал, 2019, 6: 28-34.
  • Marco I., Lavín S. Effect of the method of capture on the haematology and blood chemistry of red deer (Cervus elaphus). Research in Veterinary Science, 1999, 66(2): 81-84 (doi: 10.1053/rvsc.1998.0248).
  • Wesson III J.A., Scalon P.F., Kirkpatrick R.L., Mosby H.S., Butcher R.L. Influence of chemical immobilization and physical restraint on steroid hormone levels in blood of white-tailed deer. Canadian Journal of Zoology, 1979, 57(4): 768-776 (doi: 10.1139/z79-094).
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp