Биоинформатический анализ генома штамма Bacillus velezensis КР-2 с целью выявления биотехнологически важных свойств

Автор: Лаптев Г.Ю., Йылдырым Е.А., Дуняшев Т.П., Ильина Л.А., Тюрина Д.Г., Филиппова В.А., Бражник Е.А., Тарлавин Н.В., Пономарева Е.С., Дубровин А.В., Калиткина К.А., Новикова Н.И., Платонов А.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Микробиология

Статья в выпуске: 4 т.57, 2022 года.

Бесплатный доступ

Представители рода Bacillus активно используются при создании биопрепаратов для сельского хозяйства в связи со способностью продуцировать широкий спектр биологически активных молекул, обладающих антимикробной активностью, стимулирующих рост растений и восстанавливающих баланс микроорганизмов в пищеварительной системе животных. В представленной работе у штамма Bacillus velezensis КР-2 впервые был выявлен уникальный путь внутриклеточного синтеза осмопротектора глицин-бетаина при участии генов BetA , BetВ , BetT , BetC , о котором у бактерий рода Bacillus ранее не сообщалось. Обнаруженная нами особенность генома B. velezensis КР-2, связанная с синтезом сидерофора миксохелина A, вероятно, также уникальна для этого штамма в отличие от других изученных штаммов, относящихся к виду B. velezensis , поскольку не описана в литературе. Целью исследования был молекулярно-биологический анализ и биоинформатическая аннотация генома штамма Bacillus velezensis КР-2 для выявления генетических детерминант, определяющих возможность биосинтеза разнообразных биологически активных веществ, важных для создания биопрепаратов для сельского хозяйства. Материалом служил штамм B. velezensis КР-2 из коллекции ООО «БИОТРОФ+», выделенный из рубца молочной коровы. Антимикробную активность штамма бактерии исследовали методом отсроченного антагонизма. ДНК выделяли по стандартным методикам с использованием набора Genomic DNA Purification Kit («Thermo Fisher Scientific, Inc.», США). Библиотеку ДНК для полногеномного секвенирования готовили с помощью набора Nextera XT («Illumina, Inc.», США). Нуклеотидные последовательности определяли с использованием прибора MiSeq («Illumina, Inc.», США). Отфильтрованные по длине не менее чем от 50 до 150 п.н. парноконцевые последовательности собирали de novo с использованием геномного сборщика SPAdes-3.11.1 с соответствующими ключами. Сравнительный анализ генома штамма B. ve-lezensis КР-2 с нуклеотидными последовательностями других микроорганизмов проводили при использовании баз данных NCBI (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/). Для филогенетического анализа последовательность гена 16S рРНК передавали на веб-сервис Nucleotide BLAST (https://blast.ncbi.nlm.nih.gov). Для перевода нуклеотидной последовательности контигов в аминокислотную использовали PROKKA 1.12 (https://bioweb.pasteur.fr/packages/pack@prokka@1.12). Функциональную аннотацию генома проводили с помощью веб-сервиса RAST 2.0 (https://rast.nmpdr.org). Для оценки пула генов, связанных с биотехнологически ценными свойствами, и построения метаболических карт использовали базу данных KEGG Pathway (http://www.genome.jp/kegg/). В результате полногеномного секвенирования получили 16 контигов с общей длиной 3936398 п.н., содержащих 46,6 % ГЦ-пар, с качеством N50 2109194 п.н. и N75 844068 п.н. В состав хромосомы входили 3854 кодирующие последовательности (CDS), связанные с синтезом полипептидов. Были выявлены 464 метаболические подсистемы, наиболее представленными из которых оказались подсистемы метаболизма аминокислот и их производных (431) и метаболизма углеводов (416). У штамма B. velezensis КР-2 обнаружен комплекс потенциальных свойств, включая синтез антимикробных пептидов, жирных кислот, витаминов, сидерофоров, ауксинов, способность к адгезии, устойчивость к токсическим соединениям, моторику и хемотаксис, возможность противостоять стрессовым факторам, стимулировать рост растений и участвовать в метаболизме фосфатов. В частности, в геноме B. velezensis КР-2 показано присутствие генов ( BacA , BacB , BacG , BacF , BacD ), вовлеченных в образование бацилизина - нерибосомно синтезируемого антимикробного бактериоцина. Данные о возможности синтеза этого дипептида согласуются с фенотипической характеристикой штамма - наблюдаемым in vitro антагонизмом в отношении Staphylococcus aureus , Escherichia coli , Fusarium oxysporum и Clostridium butyricum . У B. velezensis КР-2 нами выявлен уникальный путь внутриклеточного синтеза осмопротектора глицин-бетаина при участии генов BetA , BetВ , BetT , BetC , о наличии которого у бактерий рода Bacillus ранее не сообщалось. Выявлена способность синтезировать ауксины - индол-3-этанола, с продукцией которого ассоциированы гены IAR , TO , индол-3-ацетальдегида ( IAD , AAD , AO ) и индол-3-ацетонитрила ( N3 ). В геноме B. velezensis КР-2 мы также идентифицировали несколько кластеров генов, ассоциированных с синтезом сидерофоров ( DhbA , DhbB , DhbC , FeuA , FeuB , FeuC , FeuD ). Судя по данным лабораторных исследований и полногеномного секвенирования, штамм бактерии B. velezensis КР-2 - это один из бактериальных ресурсов, полезных для использования в сельском хозяйстве. Обнаруженные нами уникальные пути синтеза глицин-бетаина при участии генов BetA , BetВ , BetT , BetC важны для клеточной адаптации штамма B. velezensis КР-2 к высокоосмолярному стрессу, который создается в средах, подверженных частым колебаниям содержания воды, например в подвяленной растительной массе силоса и верхних слоях почвы.

Еще

Полногеномное секвенирование, bacillus velezensis, биологически активные вещества, антимикробная активность, бацилизин, глицинбетаин, пробиотики, pgpr, стартерные культуры

Короткий адрес: https://sciup.org/142236352

IDR: 142236352   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2022.4.762rus

Список литературы Биоинформатический анализ генома штамма Bacillus velezensis КР-2 с целью выявления биотехнологически важных свойств

  • Schallmey M., Singh A., Ward O.P. Developments in the use of Bacillus species for industrial production. Canadian Journal of Microbiology, 2004, 50(1): 1-17 (doi: 10.1139/w03-076).
  • Lara E., Carvalho Basso F., Assis F., Souza F., Berchielli T., Reis R. Changes in the nutritive value and aerobic stability of corn silages inoculated with Bacillus subtilis alone or combined with Lactobacillus plantarum. Animal Production Science, 2015, 56(11): 1867-1874 (doi: 10.1071/AN14686).
  • Guo Q., Li S., Lu X., Zhang X., Wang P., Ma P. Complete genome sequence of Bacillus subtilis BAB-1, a biocontrol agent for suppression of tomato gray mold. Genome Announcements, 2014, 2(4): e00744-14 (doi: 10.1128/genomeA.00744-14).
  • Piewngam P., Zheng Y., Nguyen T.H., Seth W. Dickey, Joo H.-S., Villaruz A.E., Glose K.A., Fisher E.L., Hunt R.L., Li B., Chiou J., Pharkjaksu S., Khongthong S., Cheung G.Y.C., Kira-tisin P., Otto M. Pathogen elimination by probiotic Bacillus via signalling interference. Nature, 2018, 562(7728): 532-537 (doi: 10.1038/s41586-018-0616-y).
  • Bartolini M., Cogliati S., Vileta D., Bauman C., Ramirez W., Grau R. The stress-responsive alternative sigma factor SigB plays a positive role in the antifungal proficiency of Bacillus subtilis. Applied and Environmental Microbiology, 2019, 85(9): e00178-19 (doi: 10.1128/AEM.00178-19).
  • Swartzendruber J.A., Incrocci R.W., Wolf S.A., Jung A., Knight K.L. Bacillus subtilis exopoly-saccharide prevents allergic eosinophilia. Allergy, 2019, 74(4): 819-821 (doi: 10.1111/all.13674).
  • Kariluoto S., Edelmann M., Herranen M., Lampi A.-M., Shmelev A., Salovaara H., Korhola M., Piironen V. Production of folate by bacteria isolated from oat bran. International Journal of Food Microbiology, 2010, 143(1-2): 41-47 (doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2010.07.026).
  • Duan Y.X., Chen T., Chen X., Zhao X.M. Overexpression of glucose-6-phosphate dehydrogenase enhances riboflavin production in Bacillus subtilis. Applied Microbiology and Biotechnology, 2010, 85(6): 1907-1914 (doi: 10.1007/s00253-009-2247-6).
  • Biedendieck R., Malten M., Barg H, Bunk B., Martens J.-H., Deery E., Leech H., Warren M.J., Jahn D. Metabolic engineering of cobalamin (vitamin B12) production in Bacillus megaterium. Microbial Biotechnology, 2010, 3(1): 24-37 (doi: 10.1111/j.1751-7915.2009.00125.x).
  • Lee T.-Y., Kim D.-J., Won J.-N., Lee I.-H., Sung M.-H., Poo H. Oral administration of poly-y-glutamate ameliorates atopic dermatitis in Nc/Nga mice by suppressing Th2-biased immune response and production of IL-17A. The Journal of Investigative Dermatology, 2014, 134(3): 704711 (doi: 10.1038/jid.2013.389).
  • Sánchez B., Arias S., Chaignepain S., Denayrolles M., Schmitter J.M., Bressollier P., Ur-daci M.C. Identification of surface proteins involved in the adhesion of a probiotic Bacillus cereus strain to mucin and fibronectin. Microbiology, 2009, 155(5): 1708-1716 (doi: 10.1099/mic.0.025288-0).
  • Aizawa T., Urai M., Iwabuchi N., Nakajima M., Sunairi M. Bacillus trypoxylicola sp. nov., xy-lanase-producing alkaliphilic bacteria isolated from the guts of Japanese horned beetle larvae (Trypoxylus dichotomus septentrionalis). International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2010, 60(1): 61-66 (doi: 10.1099/ijs.0.005843-0).
  • Rairakhwada D., Seo J.-W., Seo M., Kwon O., Rhee S.-K., Kim C.H. Gene cloning, characterization, and heterologous expression of levansucrase from Bacillus amyloliquefaciens. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 2010, 37(2): 195-204 (doi: 10.1007/s10295-009-0664-2).
  • Chandler D., Bailey A.S., Tatchell G.M., Davidson G., Greaves J., Grant W.P. The development, regulation and use of biopesticides for integrated pest management. Philosophical transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological sciences, 2011, 366(1573): 1987-1998 (doi: 10.1098/rstb.2010.0390).
  • Raddadi N., Belaouis A., Tamagnini I, Hansen B.M., Hendriksen N.B., Boudabous A., Che-rif A., Daffonchio D. Characterization of polyvalent and safe Bacillus thuringiensis strains with potential use for biocontrol. Journal of Basic Microbiology, 2009, 49(3): 293-303 (doi: 10.1002/jobm.200800182).
  • Raddadi N., Cherif A., Boudabous A., Daffonchio D. Screening of plant growth promoting traits of Bacillus thuringiensis. Annals of Microbiology, 2008, 58: 47-52 (doi: 10.1007/BF03179444).
  • Luo C., Liu X., Zhou H., Wang X., Chen Z. Nonribosomal peptide synthase gene clusters for lipopeptide biosynthesis in Bacillus subtilis 916 and their phenotypic functions. Applied and Environmental Microbiology, 2015, 81(1): 422-431 (doi: 10.1128/AEM.02921-14).
  • Cooper G.M. The cell: a molecular approach. Sinauer Associates, 2000.
  • Reid C.J., Blau K., Jechalke S., Smalla K., Djordjevic S.P. Whole genome sequencing of Escherichia coli from store-bought produce. Frontiers in Microbiology, 2019, 10: 3050 (doi: 10.3389/fmicb.2019.03050).
  • Xu P., Xie S., Liu W., Jin P., Wei D., Yaseen D.G., Wang Y., Miao W. Comparative genomics analysis provides new strategies for bacteriostatic ability of Bacillus velezensis HAB-2. Frontiers in Microbiology, 2020, 11: 594079 (doi: 10.3389/fmicb.2020.594079).
  • Heo S., Kim J.-H., Kwak M.-S., Sung M.-H., Jeong D.-W. Functional annotation genome unravels potential probiotic Bacillus velezensis strain KMU01 from traditional Korean fermented kimchi. Foods, 2021, 10(3): 563 (doi: 10.3390/foods10030563).
  • Li Y., Lei L., Zheng L. Xiao X., Tang H., Luo C. Genome sequencing of gut symbiotic Bacillus velezensis LC1 for bioethanol production from bamboo shoots. Biotechnol. Biofuels, 2020, 13: 34 (doi: 10.1186/s13068-020-1671-9).
  • Silva F.J., Ferreira L.C., Campos V.P., Cruz-Magalhaes V., Barros A.F., Andrade J.P., Roberts D.P., de Souza J.T. Complete genome sequence of the biocontrol agent Bacillus velezensis UFLA258 and its comparison with related species: diversity within the commons. Genome Biology and Evolution, 2019, 11(10): 2818-2823 (doi: 10.1093/gbe/evz208).
  • Нетрусов А.И., Егорова М.А., Захарчук Л.М., Колотилова Н.Н. Практикум по микробиологии: уч. пос. для студентов высших учебных заведений. М., 2005.
  • Ильина Л.А. Изучение микрофлоры рубца крупного рогатого скота на основе молекулярнобио-логического метода T-RFLP с целью разработки способов ее оптимизации. Канд. дис. Дубро-вицы, 2012.
  • Bolger A.M., Lohse M., Usadel B. Trimmomatic: a flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinformatics, 2014, 30(15): 2114-2120 (doi: 10.1093/bioinformatics/btu170).
  • Nurk S., Bankevich A., Antipov D., Gurevich A.A., Korobeynikov A., Lapidus A., Prjibel-ski A.D., Pyshkin A., Sirotkin A., Sirotkin Y., Stepanauskas R., Clingenpeel S.R., Woyke T., McLean J.S., Lasken R., Tesler G., Alekseyev M.A., Pevzner P.A. Assembling single-cell genomes and mini-metagenomes from chimeric MDA products. Journal of Computational Biology : a Journal of Computational Molecular Cell Biology, 2013, 20(10): 714-737 (doi: 10.1089/cmb.2013.0084).
  • Seemann T. Prokka: rapid prokaryotic genome annotation. Bioinformatics, 2014, 30(14): 20682069 (doi: 10.1093/bioinformatics/btu153).
  • Aziz R.K., Bartels D., Best A.A., DeJongh M., Disz T., R Edwards.A., Formsma K., Gerdes S., Glass E.M., Kubal M., Meyer F., Olsen G.J., Olson R., Osterman A.L., Overbeek R.A., McNeil L.K., Paarmann D., Paczian T., Parrello B., Pusch G.D., Reich C., Stevens R., Vass-ieva O., Vonstein V., Wilke A., Zagnitko O. The RAST Server: rapid annotations using subsystems technology. BMC Genomics, 2008, 9: 75 (doi: 10.1186/1471-2164-9-75).
  • Kanehisa M., Goto S. KEGG: kyoto encyclopedia of genes and genomes. Nucleic Acids Research, 2000, 28(1): 27-30 (doi: 10.1093/nar/28.1.27).
  • Kanehisa M., Goto S., Sato Y., Furumichi M., Tanabe M. KEGG for integration and interpretation of large-scale molecular data sets. Nucleic Acids Research, 2012, 40: 109-114 (doi: 10.1093/nar/gkr988).
  • Zaatout N., Ayachi A., Kecha M., Kadlec K. Identification of staphylococci causing mastitis in dairy cattle from Algeria and characterization of Staphylococcus aureus. Journal of Applied Microbiology, 2019, 127(5): 1305-1314 (doi: 10.1111/jam.14402).
  • Li R., Jiang D., Zheng M. Tian P., Zheng M., Xu C. Microbial community dynamics during alfalfa silage with or without clostridial fermentation. Scientific Reports, 2020, 10: 17782 (doi: 10.1038/s41598-020-74958-1).
  • Niazi A., Manzoor S., Bejai S., Meijer J., Bongcam-Rudloff E. Complete genome sequence of a plant associated bacterium Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum UCMB5033. Standards in Genomic Sciences, 2014, 9(3): 718-725 (doi: 10.4056/sigs.4758653).
  • Sella S.R.B.R., Vandenberghe L.P.S., Soccol C.R. Bacillus atrophaeus: main characteristics and biotechnological applications — a review. Critical Reviews in Biotechnology, 2015, 35(4): 533-545 (doi: 10.3109/07388551.2014.922915).
  • Abraham E.P., Callow D., Gilliver K. Adaptation of Staphylococcus aureus to growth in the presence of certain antibiotics. Nature, 1946, 158(4023): 818-821 (doi: 10.1038/158818a0).
  • Kenig M., Abraham E.P. Antimicrobial activities and antagonists of bacilysin and anticapsin. Journal of General Microbiology, 1976, 94(1): 37-45 (doi: 10.1099/00221287-94-1-37).
  • Özcengiz G., Ögülür 1. Biochemistry, genetics and regulation of bacilysin biosynthesis and its significance more than an antibiotic. New Biotechnology, 2015, 32(6): 612-619 (doi: 10.1016/j.nbt.2015.01.006).
  • Milner J.L., Silo-Suh L., Lee J.C., He H., Clardy J., Handelsman J. Production of kanosamine by Bacillus cereus UW85. Applied and Environmental Microbiology, 1996, 62(8): 3061-3065 (doi: 10.1128/aem.62.8.3061-3065.1996).
  • Rhodes D., Hanson A. Quaternary ammonium and tertiary sulfonium compounds in higher plants. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 2003, 44: 357-384 (doi: 10.1146/annurev.pp.44.060193.002041).
  • Kappes R.M., Kempf B., Bremer E. Three transport systems for the osmoprotectant glycine betaine operate in Bacillus subtilis: characterization of OpuD. Journal of Bacteriology, 1996, 178(17): 5071-5079 (doi: 10.1128/jb.178.17.5071-5079.1996).
  • von Blohn C., Kempf B., Kappes R.M., Bremer E. Osmostress response in Bacillus subtilis КР-2: characterization of a proline uptake system (OpuE) regulated by high osmolarity and the alternative transcription factor sigma B. Molecular Microbiology, 1997, 25(1): 175-187 (doi: 10.1046/j.1365-2958.1997.4441809.x).
  • Lamark T., Styrvold O.B., Stmm A.R. Efflux of choline and glycine betaine from osmoregulating cells of Escherichia coli. FEMS Microbiology Letters, 1992, 96(2-3): 149-154 (doi: 10.1016/0378-1097(92)90395-5).
  • Subhadra B., Surendran S., Lim B.R., Yim J.S., Kim D.H., Woo K., Kim H.-J., Oh M.H., Choi C.H. The osmotic stress response operon betIBA is under the functional regulation of BetI and the quorum-sensing regulator AnoR in Acinetobacter nosocomialis. Journal of Microbiology, 2020, 58(6): 519-529 (doi: 10.1007/s12275-020-0186-1).
  • Кашнер Д. Баросс Д., Морита Р. Жизнь микробов в экстремальных условиях. М., 1981.
  • Miller K.J., Wood J.M. Osmoadaptation by rhizosphere bacteria. Annual Review of Microbiology, 1996, 50: 101-136 (doi: 10.1146/annurev.micro.50.1.101).
  • Galinski E.A., Trüper H.G. Microbial behaviour in salt-stressed ecosystems. FEMS Microbiology Reviews, 1994, 15(2-3): 95-108 (doi: 10.1111/j.1574-6976.1994.tb00128.x).
  • Кравченко Л.В., Азарова Т.С., Макарова Н.М., Тихонович И.А. Роль триптофана корневых экзометаболитов при фитостимулирующей активности ризобактерий. Микробиология, 2004, 73(2), 195-168.
  • Дерфлинг К. Гормоны растений. Системный подход. М., 1985.
  • Кацы Е.И. Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями. М., 2005.
  • Swain M.R., Naskar S.K., Ray R.C. Indole-3-acetic acid production and effect on sprouting of yam (Dioscorea rotundata L.) minisetts by Bacillus subtilis OT-2isolated from culturable cowdung microflora. Polish Journal of Microbiology, 2007, 56(2): 103-110.
  • Franco-Sierra N.D., Posada L.F., Santa-María G., Romero-Tabarez M., Villegas-Escobar V., Álvarez J.C. Bacillus subtilis EA-CB0575 genome reveals clues for plant growth promotion and potential for sustainable agriculture. Functional & Integrative Genomics, 2020, 20: 575-589 (doi: 10.1007/s10142-020-00736-x).
  • Chebotar V.K., Voshol G.P., Malfanova N.V., Chizhevskaya E.P., Zaplatkin A.N., Koma-rova O.V., Baganova M.E., Lazarev A.M., Balakina S.V. Draft genome sequence of plant growth-promoting Bacillus velezensis BS89. Microbiol. Resour. Announc., 2021, 10(1): e01294-20 (doi: 10.1128/MRA.01294-20).
  • Sato T., Yamada Y., Ohtani Y., Mitsui N., Murasawa H., Araki S. Production of menaquinone (vitamin K2)-7 by Bacillus subtilis. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2001, 91(1): 16-20 (doi: 10.1016/S1389-1723(01)80104-3).
  • Sulthana A., Lakshmi S.G., Madempudi R.S. Genome sequencing and annotation of Bacillus subtilis OT-2UBBS-14 to ensure probiotic safety. Journal of Genomics, 2019, 7: 14-17 (doi: 10.7150/jgen.31170).
  • Frye T.M., Williams S.N., Graham T.W. Vitamin deficiencies in cattle. The Veterinary Clinics of North America. Food Animal Practice, 1991, 7(1): 217-275 (doi: 10.1016/s0749-0720(15)30817-3).
  • Chandrasekaran M., Paramasivan M., Chun S.-C. Bacillus subtilis CBR05 induces Vitamin B6 biosynthesis in tomato through the de novo pathway in contributing disease resistance against Xanthomonas campestris pv. vesicatoria. Scientific Reports, 2019, 9(1): 6495 (doi: 10.1038/s41598-019-41888-6).
  • Barona-Gómez F., Lautru S., Francou F.-X., Leblond P., Pernodet J.-L., Challis G.L. Multiple biosynthetic and uptake systems mediate siderophore-dependent iron acquisition in Streptomyces coelicolor A3(2) and Streptomyces ambofaciens ATCC 23877. Microbiology, 2006, 152(11): 33553366 (doi: 10.1099/mic.0.29161-0).
  • Baghaee-Ravari S., Heidarzadeh N. Isolation and characterization of rhizosphere auxin producing Bacilli and evaluation of their potency on wheat growth improvement. Archives of Agronomy and Soil Science, 2014, 60(7): 895-905 (doi: 10.1080/03650340.2013.856003).
  • Абатуров А.Е., Крючко Т.А. Медикаментозное ограничение доступности ионов железа для патогенных бактерий (часть 1). Здоровье ребенка, 2018, 13(4): 416-425 (doi: 10.22141/22240551.13.4.2018.137030).
  • Capdevila D.A., Edmonds K.A., Giedroc D.P. Metallochaperones and metalloregulation in bacteria. Essays in Biochemistry, 2017, 61(2): 177-200 (doi: 10.1042/EBC20160076).
  • Johnstone T.C., Nolan E.M. Beyond iron: non-classical biological functions of bacterial sidero-phores. Dalton Transactions, 2015, 44(14): 6320-6339 (doi: 10.1039/c4dt03559c).
  • Balakrishna A., Kumar N.A. Preliminary studies on siderophore production and probiotic effect of bacteria associated with the Guppy, Poecilia reticulata Peters, 1859. Asian Fisheries Science, 2012, 25: 193-205 (doi: 10.33997/j.afs.2012.25.2.008).
  • Rout M.E., Chrzanowski T.H., Westlie T.K., DeLuca T.H., Callaway R.M., Holben W.E. Bacterial endophytes enhance competition by invasive plants. American Journal of Botany, 2013, 100(9): 1726-1737 (doi: 10.3732/ajb.1200577).
Еще
Статья научная