Биологизированный контроль основных болезней алычи во влажных субтропиках Краснодарского края

Бесплатный доступ

Для борьбы с фитопатогенами в посадках косточковых культур, в частности алычи ( Prunuscerasifera Ehrh.), обычно используют химические фунгициды. Альтернативой им служат биофунгициды - препараты на основе сапротрофных бактерий и грибов. Большинство этих препаратов одновременно подавляют размножение фитопатогенных грибов, снижая инфекционную нагрузку, и индуцируют иммунные реакции растений, повышая их устойчивость к фитопатогенным организмам и другим неблагоприятным факторам внешней среды. В настоящей работе впервые в условиях влажных субтропиков Российской Федерации дана сравнительная оценка эффективности биофунгицидов Бактофит, Витаплан, Гамаир, Фитоспорин-М, использованных совместно с химическими фунгицидами Скор и Хорус в половинной норме расхода, на посадках алычи сорта Обильная. Нашей целью стала разработка систем биологизированной защиты алычи от основных заболеваний (кластероспориоза, монилиоза и серой гнили плодов) на основе применения биопрепаратов совместно со сниженными дозами химических фунгицидов, а также оценка эффективности таких систем и их влияния на урожайность и ежегодный прирост осевых побегов алычи в условиях влажных субтропиков Краснодарского края. Исследования проводили в 2015-2017 годах в посадках алычи сорта Обильная на производственных участках Государственного унитарного предприятия Краснодарского края «Октябрьский» (г. Сочи). Изучена эффективность бактериальных биофунгицидов Бактофит, СП (ООО ПО «Сиббиофарм», Россия), Витаплан, СП (ООО «АгроБиоТехнология», Россия), Гамаир, СП (ООО «АгроБиоТехнология», Россия), Фитоспорин-М, Ж (ООО «НВП «БашИнком», Россия), созданных на основе разных штаммов бактерии Bacillus subtilis , в смеси с половинными нормами препаратов Хорус (Horus®, «Syngenta AG», Швейцария) и Скор (Skor®, «Syngenta AG», Швейцария), а также биологического препарата Глиокладин, Ж (ООО «Агробиотехнология», Россия) на основе гриба Trichoderma harzianum без смешивания с Хорусом и Скором. Обработку деревьев проводили посредством опрыскивания растворами фунгицидов два раза за весенний сезон: в фазу набухания почек и в фазу активного роста побегов после цветения. В контроле при обработке использовали воду, в качестве эталона проводили обработку химическими фунгицидами Хорус (1-я обработка) и Скор (2-я обработка). Регулярно оценивали интенсивность развития кластероспориоза, монилиоза и серой гнили плодов и биологическую эффективность использованных препаратов, урожайность и величину годового прироста осевых побегов. По итогам трехлетнего эксперимента максимальную статистически значимую биологическую эффективность в защите алычи от кластероспориоза, серой гнили и бурой монилиальной гнилей показали бактериальный биофунгицид Фитоспорин-М (в сочетании с половинными нормами расхода Хоруса и Скора) и грибной биофунгицид Глиокладин, который применяли без химических фунгицидов. Немного ниже оказалась эффективность Гамаира, но она все же превышала аналогичные показатели эталонной обработки химическими фунгицидами. Эффективность Бактофита в большинстве случаев была ниже, чем в эталоне. Во всех вариантах наименьшую эффективность показал Витаплан. Биологическая эффективность всех испытанных препаратов в отношении монилиальной бурой гнили оказалась ниже, чем в случае серой гнили и кластероспориоза. Урожайность алычи при обработке Фитоспорином-М, Глиокладином и Гамаиром была практически одинаковой во всех опытных вариантах (9,8-11,5 т/га), примерно в 1,8-1,9 раза превышая контрольные значения (5,4-5,7 т/га) и в 1,1-1,2 раза - эталонные (8,9-9,1 т/га). При использовании Бактофита урожайность алычи была почти равна эталонной (8,7-9,4 т/га), при обработке Витапланом - регулярно ниже эталонной (6-7 т/га). Показатели сохраненного урожая в вариантах применения биологических препаратов достигали 9,7-11,5 т/га. Увеличение прироста осевых побегов алычи по сравнению с контролем оказалось максимальным (в 1,7 раза) при применении Глиокладина и немного меньшим - при использовании Фитоспорина-М и Гамаира, тогда как при применении Бактофита и Витаплана оно было ниже эталонных значений на 15-25 %, только в 1,1-1,2 раза превышая контроль. Таким образом, биологические средства защиты растений на основе Bacillus subtilis и Trichoderma harzianum могут успешно применяться против основных болезней алычи в субтропиках Краснодарского края. Допустимо применение бактериальных препаратов в смеси с уменьшенными нормами расходов химических фунгицидов, что позволило бы сокращать объемы используемых химических пестицидов и экономить средства на проведение защитных мероприятий.

Еще

Биологическая защита растений, биофунгициды, фитопатогенные грибы, косточковые культуры, биологическая эффективность, bacillus subtilis, trichoderma harzianum

Короткий адрес: https://sciup.org/142231396

IDR: 142231396   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.5.990rus

Список литературы Биологизированный контроль основных болезней алычи во влажных субтропиках Краснодарского края

  • Leonov N., Bulgakov T. Biological protection of plum from shot hole disease in the humid subtropics of the Krasnodar region (Russia). BIO Web Conferences, 2020, 21: 00035 (doi: 10.1051/bioconf/20202100035).
  • Михайлова Е.В., Карпун Н.Н., Пантия Г.Г. Идентификация видов рода Monilinia с помощью ПЦР-анализа. ПлодоводствоиягодоводствоРоссии, 2020, 60(1): 186-191 (doi: 10.31676/2073-4948-2020-60-186-191).
  • Ahmadpour A. Review of shot-hole disease of stone-fruit trees. Plant Pathology Science, 2017, 7(2): 1-13 (doi: 10.29252/pps.7.2.1).
  • Карпун Н.Н., Игнатова Е.А., Янушевская Э.Б., Леонов Н.Н. Эволюция химического метода защиты растений от вредных организмов в условиях влажных субтропиков России и экобезопасность. Сельскохозяйственная биология, 2014, 3: 32-39.
  • Pesticides in the modern world — pesticides use and management /M. Stoytcheva (ed.). In Tech, Croatia, 2011: 520.
  • Миронова М.К., Ижевский С.С., Ахатов А.К.Защита овощных тепличных культур от вредителей. Защитаикарантинрастений, 2006, 5: 80.
  • Falardeau J., Wise C., Novitsky L., Avis T.J. Ecologiсal and mechanistic insights into the direct and indirect antimicrobial properties of Bacillus subtilis lipopeptides on plant pathogens. J. Chem. Ecol., 2013, 39(7): 869-878 (doi: 10.1007/s10886-013-0319-7).
  • Adnan M., Islam W., Shabbir A., Khan K.A., Ghramh H.A., Huang Z., Chen H.Y.H., Lu G.D. Plant defense against fungal pathogens by antagonistic fungi with Trichoderma in focus. Microbial Pathogenesis, 2019, 129: 7-18 (doi: 10.1016/j.micpath.2019.01.042).
  • Olson S. An analysis of the biopesticide market now and where it is going. Outlooks on Pest Management, 2015, 26(5): 203-206 (doi: 10.1564/v26_oct_04).
  • Lord J.C. From Metchnikoff to Monsanto and beyond: The path of microbial control. Journal of Invertebrate Pathology, 2005, 89(1): 19-29 (doi: 10.1016/j.jip.2005.04.006).
  • Induced resistance for plant defence: a sustainable approach to crop protection /D. Waltrs, A. Newton, G. Lyon (eds.). Blackwell Publishing, Oxford, 2007: 258.
  • Gouda S., Kerry R.C., Das G., Paramithiotis S., Shin H.-S., Patra J.K. Revitalization of plant growth promoting rhizobacteria for sustainable development in agriculture. Microbiological Research, 2018, 206: 131-140 (doi: 10.1016/j.micres.2017.08.016).
  • Peréz-García A., Romero D., Vicente de A. Plant protection and growth stimulation by microorganisms: biotechnological applications of Bacilli in agriculture. Current Opinion in Biotechnology, 2011, 22(2): 187-193 (doi: 10.1016/j.copbio.2010.12.003).
  • Mastouri F., Bjorkman T., Harman G. Seed treatments with Trichoderma harzianum alleviate biotic, abiotic and physiological stresses in germinating seeds and seedlings. Journal of Phytopathology, 2010, 100(11): 1213-1221 (doi: 10.1094/PHYTO-03-10-0091).
  • Caulier S., Nannan C., Gillis A., Licciardi F., Bragard C., Mahillon J. Overview of the antimicrobial compounds produced by members of the Bacillus subtilis group. Front. Microbial, 2019, 10: 302 (doi: 10.3389/fmicb.2019.00302).
  • Strasser H., Kirchmair M. Potential health problems due to exposure in handling and using biological control agents. In: An ecological and societal approach to biological control. Progress in Biological Control, vol. 2. /J. Eilenberg, H.M.T. Hokkanen (eds.). Springer, Dordrecht, 2006: 275-293 (doi: 10.1007/978-1-4020-4401-4_14).
  • Kumar D., Singh M.K., Singh H.K., Singh K.N. Fungal biopesticides and their uses for control of insect pest and diseases. In: Biofertilizers and biopesticides in sustainable agriculture. Apple Academic Press, 2019: 43-70.
  • Hashem A., Tabassum B., Abd_Allah E.F. Bacillus subtilis: a plant-growth promoting rhizobacterium that also impact biotic stress. Saudi Journal of Biological Sciences, 2019, 26(6): 1291-1297 (doi: 10.1016/j.sjbs.2019.05.004).
  • Wang T., Liang Y., Wu M.B., Chen Z.J., Lin J., Yang L.R. Natural products from Bacillus subtilis with antimicrobial properties. Chinese Journal of Chemical Engineering, 2015, 23(4): 744-754 (doi: 10.1016/j.cjche.2014.05.020).
  • Петровский А.С., Каракотов С.Д. Микробиологические препараты в растениеводстве. Альтернатива или партнерство? Защита и карантин растений, 2017, 2: 14-18.
  • Леонов Н.Н., Сокирко В.П. Применение биопрепаратов на косточковых культурах от болезней в условиях влажных субтропиков России. Труды Куб ГАУ, 2015, 56: 125-131.
  • Мищенко И.Г. Оценка эффективности биофунгицидов в технологии защиты сливы от клястероспориоза. Плодоводство и ягодоводство России, 2019, 59: 239-243 (doi: 10.31676/2073-4948-2019-59-239-243).
  • Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований. М., 2012.
  • Amin N. Teaching of biopesticide development as a technoprenuership opportunity in plant protection. Journal of Biology, Agriculture and Healthcare, 2013, 3(6): 2224-3208.
  • Abbott W.S. A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economical Entomology, 1925, 18: 265-267.
  • De Sa J.P.M. Applied statistics using SPSS, Statistica, MatLab and R. Springer Science & Business Media, 2007.
  • Анисимов В.И., Битюков Н.А. Физическая география города-курорта Сочи. Монография. Сочи, 2008.
  • Pal K.K., McSpadden Gardener B. Biological control of plant pathogens. The Plant Health Instructor, 2006(2): 1117-1142 (doi: 10.1094/PHI-A-2006-1117-02).
  • Harman G.E. Multifunctional fungal plant symbionts: new tools to enhance plant growth and productivity. New Phytologist, 2011, 189(3): 647-649 (doi: 10.1111/j.1469-8137.2010.03614.x).
Еще
Статья научная