Биораспределение микросфер альбумина, меченных 188Re, при различных путях введения
Автор: Тищенко В.К., Петриев В.М., Власова О.П., Степченкова Е.Д.
Рубрика: Научные статьи
Статья в выпуске: 4 т.30, 2021 года.
Бесплатный доступ
На сегодняшний день микросферы с радиоактивной меткой являются признанным средством для радиоэмболизации первичного и метастатического рака печени. Микросферы сывороточного альбумина человека (MСA) представляют собой уникальные носители для избирательной и контролируемой доставки радионуклидов в злокачественные опухоли. Рений-188 (188Re), распадающийся с излучением бета-частиц: 2,12 МэВ (71,1%) и 1,965 МэВ (25,6%) и гамма-компоненты - 155 кэВ (15,1%), является одним из наиболее доступных и перспективных генераторных радионуклидов для терапии рака. Целью работы стало изучение биораспределения микросфер на основе сывороточного альбумина человека, меченных 188Re (188Re-МСА), в организме лабораторных животных при различных путях введения. Более 95% микросфер имели размер 10-20 мкм. Исследования проводились на беспородных белых мышах и на инбредных мышах С57Bl/6 с перевитой аденокарциномой Льюиса при внутривенном, внутримышечном и внутриопухолевом путях введения. Наиболее высоким было содержание 188Re-МСА во внутренних органах и тканях при внутривенном введении: до 311,3%/г в лёгких, до 74,30%/г в щитовидной железе, до 12,70%/г в печени, до 0,81%/г в крови. При внутримышечной инъекции препарата концентрация 188Re-МСА была статистически значимо ниже и не превышала 1%/г во всех внутренних органах, за исключением щитовидной железы (1,10-17,80%/г). Содержание 188Re-МСА в опухоли при внутриопухолевом введении составляло от 16,7 до 26,8%/г, что выше по сравнению с другими органами и тканями. Таким образом, способ введения 188Re-МСА существенно влияет на его поведение в организме. Полученные результаты могут быть использованы для оценки потенциала 188Re-МСА для радионуклидной терапии опухолей при внутрисосудистом или внутриопухолевом введении.
Микросферы, сывороточный альбумин человека, рений-188, радионуклидная терапия, онкологические заболевания, внутримышечное введение, внутриопухолевое введение
Короткий адрес: https://sciup.org/170191716
IDR: 170191716 | DOI: 10.21870/0131-3878-2021-30-4-85-93
Текст научной статьи Биораспределение микросфер альбумина, меченных 188Re, при различных путях введения
Радионуклидная терапия (РНТ) представляет собой высокоэффективный малоинвазивный метод лечения онкологических заболеваний. Основной задачей РНТ является доставка радиоактивного излучения непосредственно к опухолевым клеткам при минимальном радиационном повреждении окружающих здоровых органов и тканей. Оптимальными соединениями для этих целей могут служить микросферы, меченные β-излучающими радионуклидами: 90Y, 131I, 166Ho, 177Lu, 186Re, 188Re и др. [1, 2].
В настоящее время микросферы, меченные 90Y и 166Ho, успешно применяются для трансартериальной радиоэмболизации химиорезистентного и неоперабельного рака печени [3, 4]. Ведётся разработка радиофармацевтических лекарственных препаратов (РФЛП) на основе микросфер для радиосиновэтомии – местной терапии воспалительных заболеваний суставов, заключающейся в разрушении воспалённой синовиальной оболочки при внутрисуставном введении препарата [5, 6].
Материалами для получения микросфер могут служить стекло, ионообменные смолы, различные полимеры, альгинат, желатин, крахмал, гидроксиапатит и др. [1, 6, 7]. В отличие от вы-
Тищенко В.К. – вед. науч. сотр., к.б.н.; Петриев В.М.* – зав. лаб., д.б.н., проф. НИЯУ МИФИ; Власова О.П. – вед. науч. сотр., к.б.н.;
Степченкова Е.Д. – мл. науч. сотр. МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России.
шеперечисленных материалов, микросферы на основе сывороточного альбумина крови человека (МСА) обладают рядом преимуществ: простота получения, биосовместимость, способность метаболизироваться в организме без образования токсических продуктов, а также способность связывать радионуклиды с разными химическими свойствами за счёт пористой структуры МСА и высвобождать их одновременно с протеолизом денатурированного белка [8].
188Re – идеальный изотоп для РНТ с периодом полураспада Т 1/2 =16,9 ч и высокой энергией бета-излучения (E β max =2,12 МэВ). Кроме того, наличие низкоэнергетического гамма-излучения (E γ =155 кэВ (15%)) позволяет отслеживать распределение РФЛП с 188Re в организме. Важным преимуществом 188Re является также возможность его получения из генераторной системы 188W/188Re с высокой удельной активностью непосредственно в условиях клиники в течение 6-8 месяцев. Сообщается о возможности мечения 188Re микросфер из стекла [9], полимерных смол [10], природных и синтетических полимерных материалов [11, 12]. Однако, до сегодняшнего дня клинические исследования проводились только с меченными 188Re микросферами альбумина [13, 14]. Таким образом, МСА являются перспективными носителями радиоактивной метки и характеризуются высокой степенью избирательного накопления в органах и тканях, что определяется не только их физико-химическими параметрами, но и способами введения в организм.
Цель данной работы – изучить биораспределение микросфер сывороточного альбумина человека, меченных 188Re (188Re-МСА), в организме лабораторных животных при различных путях введения.
Материалы и методы
Получение и контроль качества 188Re-МСА. Методика получения МСА, основанная на термической денатурации белка в оливковом масле при постоянном перемешивании реакционной системы, описана в [15, 16]. После фракционирования МСА с использованием ультразвуковых микросит, 95% частиц находились в диапазоне 10-20 мкм.
МСА метили 188Re, как описано в [16], с использованием элюата Na188ReO 4 в изотоническом растворе. Раствор Na188ReO 4 получали путём элюирования 0,9% раствором NaCl с колонки генератора 188Re ГРЕН-1 (188W/188Re генератор) производства Акционерного общества «Государственный научный центр Российской Федерации – Физико-энергетический институт имени А.И. Лейпунского». Радионуклидная чистота элюата Na188ReO 4 была выше 99%, объёмная активность – 1,85 МБк (50 мкКи).
Инъекционная форма препарата «188Re-МСА» содержит: общий объём суспензии 188Re-МСА в физиологическом растворе составляет 5 мл; концентрация ингредиентов: МСА – 2 мг/мл; частиц – 715000 шт./мл; SnCl 2 . 2H 2 O – 1,4 мг/мл; аскорбиновая кислота – 2 мг/мл; объёмная активность – 1,85 МБк/мл (50 мкКи/мл).
Проведение биологических исследований. Изучение биораспределения 188Re-МСА при внутривенном и внутримышечном введении препарата проводили на беспородных белых мышах и при внутриопухолевом введении – на инбредных мышах С57Bl/6. Средняя масса животных составляла 22±3 г. Всего было использовано 100 животных.
Для получения солидного варианта аденокарциномы Льюиса брали мышь-донора С57Bl/6 с опухолью, декапитировали и выделяли опухолевую ткань. Затем опухолевую ткань измельчали, разводили в физиологическом растворе в соотношении 1:2, добавляли пенициллин и стрептомицин в дозе 100 ед. на 1 мл суспензии опухолевой массы. Полученную взвесь опухолевой ткани вводили подкожно по 0,2 мл в область бедра мышам С57Bl/6. В опыт брали животных на 10 сутки после перевивки опухоли.
Животным вводили внутривенно (в хвостовую вену), внутримышечно (в мышцу бедра) и внутриопухолево (в центр опухоли) по 0,185 МБк (5 мкКи) суспензии 188Re-МСА в 0,1% растворе Твина-80 в физиологическом растворе в объёме 0,1 мл.
В различные сроки (через 5 мин, 1, 3, 24, 48 и 72 ч) после введения 188Re-МСА по 4-5 животных на каждый срок подвергали эвтаназии путём декапитации (под наркозом), выделяли пробы органов и тканей, помещали их в пластиковые пробирки, взвешивали на электронных весах «Sartorius» (Германия) и проводили радиометрию с помощью автоматического гамма-счётчика «Wizard» версии 2480 фирмы PerkinElmer/Wallac (Финляндия). На момент введения в отдельную пробирку отбирали пробу 188Re-МСА в объёме 0,1 мл для использования в качестве стандарта введённой дозы. По данным радиометрии на каждый срок наблюдения рассчитывали количество радиоактивности на 1 г органа или ткани в % от введённой дозы (%/г), а также общее содержание активности в некоторых органах или тканях с использованием непосредственно полученных результатов взвешивания органов или таблиц среднего веса соответствующих органов или тканей крыс [17]. Также были рассчитаны коэффициенты дифференциального накопления (КДН) как частное от деления величин концентрации 188Re-МСА в опухоли и остальных органах и тканях.
Статистическая обработка результатов. При статистической обработке результатов радиометрии определяли показатели средних арифметических значений (М) и стандартных ошибок среднего (±m) в программе Microsoft Excel 2010. Сравнение уровней накопления радиоактивности в группах проводилось с помощью t-критерия Стьюдента в программе OriginPro 2019b. Различия считались статистически значимыми при p<0,05.
Результаты
Сравнительные данные биораспределения 188Re-МСА диаметром 10-20 мкм по органам и тканям интактных мышей при внутривенном и внутримышечном введении препаратов представлены в табл. 1. Данные таблицы наглядно демонстрируют, что способ введения существенно влияет на поведение 188Re-МСА в организме интактных мышей. Об этом свидетельствуют статистически значимые различия (p<0,001-0,05) практически во все сроки наблюдений для значений активности при внутривенном и внутримышечном введении.
Характерной особенностью поведения 188Re-МСА при внутримышечной инъекции являлось существенно более низкое накопление активности во всех органах и тканях (кроме мышцы бедра) по сравнению с внутривенным введением (табл. 1). Наиболее значительные различия отмечаются в интервале от 5 мин до 3 ч, в последующие сроки эти различия становятся менее заметными. Такая специфика кинетики активности объясняется более высокой скоростью метаболизма 188Re-МСА в лёгких по сравнению с мышечной тканью. При этом 188Re-МСА характеризовались высокой стабильностью in vivo , что подтверждается различиями в биораспределении 188Re-МСА и Na188ReO 4 [18]. Напротив, 188Re-МСА, депонированные в мышце бедра, практически не подвергаются протеолизу в течение первых трёх часов, чем и объясняется низкий уровень активности в органах и тканях в этот период. Через 24 ч 188Re-МСА начинали подвергаться протеолитическому процессу, и высвобождающийся 188Re из микросфер всасывался в кровь и поступал во все органы и ткани.
При внутривенном введении 188Re-МСА максимальное накопление активности отмечалось в лёгких (до 311,3±12,8%/г) уже через 5 мин после введения с постепенным снижением в последующие сроки. За 72 ч количество 188Re-МСА в лёгких снизилось более чем в 2 раза до 143,3±2,99%/г. При внутримышечном введении концентрация препарата в лёгких не превышала 0,100±0,001%/г (табл. 1).
Таблица 1
Биораспределение 188Re-МСА диаметром 10-20 мкм в организме интактных мышей после внутривенного и внутримышечного введения препарата
(в % от введённого количества на 1 г органа или ткани)
При инъекции 188Re-МСА в мышцу бедра большая часть препарата удерживается в месте введения. Первоначальная концентрация 188Re-МСА в мышечной ткани бедра была 191,6±14,3%/г, и лишь через 24 ч и позднее содержание 188Re-МСА снижалось до 0,60-5,90%/г. В противоположной (интактной) мышце бедра накопление активности было крайне мало: 0,012-0,055%/г.
Особенно высокие уровни накопления активности были отмечены в щитовидной железе. Образующийся в процессе протеолиза свободный 188Re накапливается в щитовидной железе за счёт высокого сродства к транспортному белку Na/I-симпортеру, осуществляющему активный транспорт 188Re в клетки щитовидной железы [19]. При внутривенном введении концентрация 188Re-МСА достигала 74,30±22,4%/г, в то время, как при внутримышечном введении содержание препарата не превышало 17,80±3,76%/г.
После внутримышечного введения содержание препарата во внутренних органах также не превышало 1%/г во все сроки исследования (табл. 1).
Анализ динамики распределения активности в организме мышей с перевитой аденокарциномой Льюиса после внутриопухолевого введения показал, что максимальный уровень активности на протяжении всего исследования отмечался в ткани опухоли. Удельная активность 188Re-МСА в опухоли составила 16,7-26,8%/г (табл. 2).
Таблица 2 Биораспределение 188Re-МСА диаметром 10-20 мкм в организме мышей с аденокарциномой Льюиса после внутриопухолевого введения препарата (в % от введённого количества на 1 г органов или ткани)
Наименование органа, ткани |
Время после введения препарата |
|||||
5 мин |
1 ч |
3 ч |
24 ч |
48 ч |
72 ч |
|
Кровь |
0,07±0,01 |
0,11±0,01 |
0,07±0,01 |
0,17±0,04 |
0,13±0,03 |
0,11±0,03 |
Щитовидная железа |
1,57±0,37 |
8,25±1,23 |
27,00±4,28 |
16,20±4,04 |
24,60±3,12 |
22,20±1,73 |
Лёгкие |
0,33±0,09 |
0,47±0,10 |
2,15±0,50 |
0,63±0,09 |
1,36±0,29 |
0,08±0,01 |
Печень |
0,60±0,11 |
0,48±0,08 |
1,89±0,28 |
0,73±0,13 |
0,81±0,12 |
0,33±0,05 |
Почки |
0,10±0,01 |
0,66±0,09 |
1,25±0,20 |
1,98±0,51 |
2,32±0,13 |
2,46±0,43 |
Селезёнка |
0,014±0,005 |
0,17±0,03 |
0,13±0,03 |
0,29±0,04 |
0,24±0,05 |
0,032±0,012 |
Желудок |
0,21±0,05 |
0,39±0,12 |
0,55±0,11 |
0,76±0,19 |
0,74±0,14 |
0,35±0,08 |
Опухоль |
22,90±2,42 |
22,20±3,42 |
16,70±3,52 |
26,70±1,87 |
25,20±5,13 |
26,80±3,98 |
Мышца бедра |
0,010±0,002 |
0,025±0,006 |
0,046±0,012 |
0,038±0,011 |
0,033±0,005 |
0,025±0,004 |
Необходимо подчеркнуть, что из опухоли 188Re-МСА выводились интенсивнее, чем из мышечной ткани при внутримышечном введении. За 3 ч концентрация 188Re-МСА в опухоли снизилась с 73,60±8,59% до 51,00±1,40% от введённой дозы, тогда как в бедренной мышце содержание препарата в этот период практически не изменялось и оставалось близким к 100% от введённой дозы (рис. 1). После 3 ч содержание 188Re-МСА в опухоли практически не менялось и сохранялось на уровне 50,80-52,30% от введённой дозы. В мышце, напротив, отмечалось снижение концентрации 188Re-МСА до 63,70±6,84% и 52,80±0,90% от введённой дозы в сроки 24 и 72 ч соответственно (рис. 1). Такие различия в кинетике 188Re-МСА можно объяснить тем, что метаболические процессы в опухоли протекают интенсивнее, чем в мышце, поэтому протеолиз 188Re-МСА в опухолевой ткани начинается сразу после инъекции препарата.

Рис. 1. Общее содержание 188Re-МСА в месте введения (опухоли и мышечной ткани) после внутриопухолевого и внутримышечного введения.
Высокое содержание 188Re-МСА было отмечено в щитовидной железе (табл. 2). Начальная концентрация препарата составила 1,57±0,37%/г, возрастая через 1 ч до 8,25±1,23%/г и достигая максимума (27,00±4,28%/г) через 3 ч после введения.
0,21-0,76%/г (табл. 2). В мышечной ткани содержание 188Re-МСА варьировало от
0,010±0,002%/г до 0,046±0,012%/г, что практически одинаково с концентрацией 188Re-МСА в ин- тактной мышце при внутримышечном способе введения.
При анализе коэффициентов дифференциального накопления (КДН) опухоль/внутренние органы было установлено, что практически для всех органов эти величины были значительно выше 1. Лишь значения КДН опухоль/щитовидная железа в некоторые сроки (3 ч и 48 ч) не пре- вышали 1 (рис. 2).

Опухоль/кровь

Опухоль/мышца бедра

Опухоль/щитовидная железа
Рис. 2. Величины КДН у мышей с аденокарциномой Льюиса при внутриопухолевом введении 188Re-МСА.
Наиболее высокими были значения КДН опухоль/мышца бедра, достигавшие 2290,0±202,0. Отношения опухоль/кровь варьировали от 179,1±39,6 до 371,8±62,5 (рис. 2).
Заключение
Таким образом, анализ биораспределения 188Re-МСА диаметром 10-20 мкм в организме лабораторных животных продемонстрировал, что способ введения препарата оказывает значительное влияние на его поведение в организме. Показано, что при внутривенном введении 188Re-МСА избирательно локализовались в лёгких, тогда как при внутримышечном и внутриопу-холевом введении препарата происходило его депонирование в месте введения (опухоли и мышце бедра соответственно). Постепенное выведение 188Re-МСА из места инъекции сопровождалось повышением их концентрации во внутренних органах и тканях. Однако при внутримышечном введении концентрация 188Re-МСА во внутренних органах и тканях статистически значимо ниже, чем при внутривенном введении. При этом выведение препарата из опухолевой ткани осуществлялось более интенсивно по сравнению с мышцей бедра. В целом следует отметить, что 188Re-МСА характеризуются высокой стабильностью in vivo , что позволяет рассматривать его в качестве потенциального препарата для радионуклидной терапии опухолей разной локализации.
Список литературы Биораспределение микросфер альбумина, меченных 188Re, при различных путях введения
- Bouvry C., Palard X., Edeline J., Ardisson V., Loyer P., Garin E., Lepareur N. Transarterial radioembolization (TARE) agents beyond 90Y-microspheres //BioMed. Res. Int. 2018. V. 2018. P. 1-14.
- Li R., Li D., Jia G., Li X., Sun G., Zuo C. Diagnostic performance of theranostic radionuclides used in transarterial radioembolization for liver cancer //Front. Oncol. 2021. V. 10. P. 551622.
- Bozkurt M.F., Salanci B.V., Ugur O. Intra-arterial radionuclide therapies for liver tumors //Semin. Nucl. Med. 2016. V. 46, N 4. P. 324-339.
- Reinders M.T.M., Smith M.J.L., van Roekel C., Braat A.J.A. Holmium-166 microsphere radioembolization of hepatic malignancies //Semin. Nucl. Med. 2019. V. 49, N 3. P. 237-243.
- Зверев А.В., Клементьева О.Е., Жукова М.В., Красноперова А.С. Доклиническая оценка терапевтического потенциала радиофармацевтического лекарственного препарата на основе микросфер альбумина 5-10 мкм с рением-188 //Русский медицинский журнал. 2018. № 4(1). С. 31-35.
- Vimalnath K.V., Chakraborty S., Rajesmari A., Sarma H.D., Nuwad J., Pandey U., Kamaleshwaran K., Shinto A., Dash A. Radiochemistry, pre-clinical studies and first clinical investigation of 90Y-labeled hydroxyapatite (HA) particles prepared utilizing 90Y produced by (n,Y) route //Nucl. Med. Biol. 2015. V. 42, N 5. P. 455-464.
- Dong Z., Meng X., Yang W., Zhang J., Sun P., Zhang H., Fang X., Wang D.A., Fan C. Progress of gelatin-based microspheres (GMSs) as delivery vehicles of drug and cell //Mater. Sci. Eng. C. Mater. Biol. Appl. 2021. V. 122. P. 111949.
- Петриев В.М., Ширяев В.К., Смахтин Л.А., Скворцов В.Г. Разработка метода получения 10:^-мик-росфер альбумина крови человека - потенциального радиофармпрепарата для лечения злокачественных опухолей //Радиохимия 2010. Т. 52, № 2. С. 177-180.
- Hafeli U.O., Casillas S., Dietz D.W., Pauer G.J., Rybicki L.A., Conzone S.D., Day D.E. Hepatic tumor radioembolization in a rat model using radioactive rhenium (186Re/188Re) glass microspheres //Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 1999. V. 44, N 1. P. 189-199.
- Lin Y.C., Tsai S.C., Hung G.U., Lee J.C., Huang Y.S., Lin W.Y. Direct injection of 188Re-microspheres in the treatment of hepatocellular carcinoma. Compared with traditional percutaneous ethanol injection: an animal study //Nuklearmedizin. 2005. V. 44, N 3. P. 76-80.
- Wunderlich G., Pinkert J., Stintz M., Kotzerke J. Labeling and biodistribution of different particle materials for radioembolization therapy with 188Re //Appl. Radiat. Isot. 2005. V. 62, N 5. P. 745-750.
- Verger E., Drion P., Meffre G., Bernard C., Duwez L., Lepareur N., Couturier O., Hindre F., Hustinx R., Lacoeuille F. 68Ga and 188Re starch-based microparticles as theranostic tool for the hepatocellular carcinoma radiolabeling and preliminary in vivo rat studies //PLoS One. 2016. V. 11, N 10. P. e0164626.
- Liepe K., Brogsitter C., Leonhard J., Wunderlich G., Hliscs R., Pinkrt J., Folprecht G., Kotzerke J. Feasibility of high activity rhenium-188-microsphere in hepatic radioembolization //Jpn. J. Clin. Oncol. 2007. V. 37, N 12. P. 942-950.
- Nowicki M.L., Cwikla J.B., Sankowski A.J., Shcherbinin S., Grimmes J., Celle A., Buscombe J.R., Bator A., Pech M., Mikolajczak R., Pawlak D. Initial study of radiological and clinical efficacy radioembolization using 188Re-human serum albumin (HSA) microspheres in patients with progressive, unresectable primary or secondary liver cancers //Med. Sci. Monit. 2014. V. 20. P. 1353-1362.
- Способ получения меченых радионуклидом микросфер. Патент RU2359702C2, 27.06.2009.
- Петриев В.М. Закономерности образования комплексного соединения 188Re с микросферами альбумина крови человека //Радиохимия. 2009. Т. 51, № 5. С. 446-451.
- Бесядовский Р.А., Иванов К.В., Козюра А.К. Справочное руководство для радиобиологов. М.: Атомиздат, 1978. 128 с.
- Petriev V.M., Siruk O.V., Bryukhanova A.A., Smoryzanova O.A., Skvortsov V.G. Pharmacokinetic characteristics of the radiopharmaceutical «188Re-albumin microspheres» after intravenous administration to laboratory animals //Pharm. Chem. J. 2014. V. 47, N 11. P. 573-576.
- Zuckier L.S., Dohan O., Li Y., Chang C.J., Carrasco N., Dadachova E. Kinetics of perrhenate uptake and comparative biodistribution of perrhenate, pertechnetate, and iodide by NaI symporter-expressing tissues in vivo //J. Nucl. Med. 2004. V. 45, N 3. P. 500-507.