Биосинтез каучука и инулина в зависимости от спектрального состава света и активности фотосинтетического аппарата при аэропонном культивировании Taraxacum kok-saghys E. Rodin

Автор: Мартиросян Л.Ю., Мартиросян Ю.Ц., Кособрюхов А.А., Гольдберг В.М., Гачок И.В., Мартиросян В.В., Гладченко М.А., Гайдамака С.Н., Америк А.Ю., Миних А.А., Варфоломеев С.Д.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Нетрадиционные культуры и технологии

Статья в выпуске: 1 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

В связи с интенсивным развитием промышленности и новых технологий повышается спрос на натуральный каучук. Этот биополимер не может быть полностью заменен синтетическим каучуком, поскольку обладает уникальными потребительскими и эксплуатационными характеристиками. Наряду с традиционным источником производства натурального каучука из латекса гевеи бразильской Hevea brasiliensis (Willd. ex A. Juss.) Müll. Arg. ведутся работы по его получению из растений кок-сагыза Taraxacum kok-saghys E. Rodin, которые можно выращивать как в естественных, так и в контролируемых условиях. Определение наиболее благоприятного светового режима с учетом физиологического состояния растений - важный элемент при разработке технологий, обеспечивающих высокий выход целевых продуктов. В представленном исследовании впервые показано повышение скорости биосинтеза каучука при облучении растений кок-сагыза светом с большей долей синей части спектра, а также описан характер изменения скорости световых и темновых реакций фотосинтетического аппарата, концентраций сахарозы и глюкозы при изменении светового режима выращивания растений в течение нескольких часов. Цель работы - изучение влияния световых условий на физиолого-биохимические процессы и биосинтез каучука и инулина у растений кок-сагыза, выращиваемых в контролируемых условиях фитотрона. Растения кок-сагыза коллекционной формы 391 из коллекции Всероссийского института генетических ресурсов растений им. Н.И. Вавилова (ВИР), выращенные из семян в стерильных условиях, на 19-20-е сут (в фазу 3-4-х настоящих листьев) высаживали в аэропонные фитотроны, в две камеры с полноспектральным светодиодным (СД) облучением в области фотосинтетически активной радиации ФАР400-700 нм 400±28 мкмоль фотонов·м-2·с-1. В первой камере облучение в области ФАР400-500 нм синего спектра (λmax = 460 нм, СД СС) составляло 255,6 мкмоль фотонов·м-2·с-1, в области ФАР600-700 нм красного спектра (λmax = 660 нм, СД КС) - 75,6 мкмоль фотонов·м-2·с-1, соотношение КС/СС - 0,30. Во второй камере интенсивность облучения КС в области ФАР600-700 нм составляла 259,6 мкмоль фотонов·м-2·с-1, интенсивность облучения в области ФАР400-500 нм СС - 71,8 мкмоль фотонов·м-2·с-1, соотношение КС/СС - 3,6. Анализ ростовых и фотосинтетических процессов, определение содержания глюкозы и сахарозы в листьях, каучука и инулина в корнях растений в условиях длительного роста при различных спектральных режимах, а также при смене режима облучения показали, что при выращивании кок-сагыза в течение 28 сут в камерах фитотрона при повышенной доле КС содержание каучука увеличивалось в 3,0 раза, инулина - в 4,1 раза по сравнению с первоначальными значениями тех же параметров у исходных растений. При повышении доли СС в области ФАР показатели увеличивались соответственно в 5,4 и 4,6 раза. В конечном итоге при облучении светом с большей долей СС растения накапливали в 1,75 раза больше каучука. Изменение спектра облучения растений с СС на КС приводило к кратковременному повышению концентрации глюкозы и сахарозы в листьях по сравнению с исходными значениями. Такая зависимость сохранялась в течение 2 ч, после чего содержание сахарозы не изменялось, но снижалось содержание глюкозы. При переключении с КС на СС наблюдали противоположные эффекты. Изменение концентрации растворимых углеводов связано с переменой спектрального состава облучения растений и, как результат, с модуляцией активности фотосинтетического аппарата. Показано снижение активности фотосинтетического аппарата при смене режима облучения растений с СС на КС: скорость фотосинтеза уменьшалась с 26,7 до 15,2 мкмоль СО2·м-2·с-1 (при световом насыщении), скорость темнового дыхания - с 2,80 до 2,38 мкмоль СО2·м-2·с-1, квантовый выход фотосинтеза - с 0,066 до 0,055. При изменении облучения с КС на СС наблюдалось повышение скорости фотосинтеза и активности фотосистемы II, но снижение накопления глюкозы и сахарозы в течение первых 2 ч с возвращением к исходным значениям через 3 ч.

Еще

Тaraxacum kok-saghyz, кок-сагыз, рост, скорость фотосинтеза, скорость темнового дыхания, квантовый выход фотосинтеза, каучук, инулин, светодиодные источники света, фитотрон, аэропоника

Короткий адрес: https://sciup.org/142238089

IDR: 142238089   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.1.100rus

Список литературы Биосинтез каучука и инулина в зависимости от спектрального состава света и активности фотосинтетического аппарата при аэропонном культивировании Taraxacum kok-saghys E. Rodin

  • Евстафьев С.Н., Тигунцева Н.П. Биологически активные вещества одуванчика лекарственного Taraxacum officinale Wigg. (обзор). Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология, 2014, 1(6).
  • Тихомирова Л.И., Базарнова Н.Г., Ильичева Т.Н., Мартиросян Ю.Ц., Афанасенкова И.В. Получение растительного сырья ириса сибирского (Iris sibirica) методами биотехнологии. Химия растительного сырья, 2018, 4: 235-245.
  • Verma N., Shukla S. Impact of various factors responsible for fluctuation in plant secondary metabolites. Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants, 2015, 2(4): 105-113 (doi: 10.1016/j.jarmap.2015.09.002).
  • Yang L., Wen K.-S., Ruan X., Zhao Y.-X., Wei F., Wang Q. Response of plant secondary me-tabolites to environmental factors. Molecules, 2018, 23: 762 (doi: 10.3390/molecules23040762).
  • Jan R., Asaf S., Numan M., Kim K.M. Plant secondary metabolite biosynthesis and transcrip-tional regulation in response to biotic and abiotic stress conditions. Agronomy, 2021, 11(5): 968 (doi: 10.3390/agronomy11050968).
  • Wei Y.-C., Liu G.-X., Zhang L., Zhao F., Liao S., Luo M.-C. Exploring the unique character-istics of natural rubber induced by coordination interaction between proteins and Zn2+. Poly-mer, 2020, 193: 122357 (doi: 10.1016/j.polymer.2020.122357).
  • Gronover S.C., Wahler D., Prufer D. Natural rubber biosynthesis and physic-chemical studies of plant derived latex. In: Biotechnology of biopolymers /M. Elnashar (ed.). InTech, Rijeka, 2011: 75-88 (doi: 10.5772/17144).
  • Cornish K. Biochemistry of natural rubber, a vital raw material, emphasizing biosynthetic rate, molecular weight and compartmentalization, in evolutionarily divergent plant species. Natural Product Report, 2001, 18(2): 182-189 (doi: 10.1039/a902191d).
  • Cornish K. Alternative natural rubber crops: why should we care? Technology and Innovation, 2017, 18: 245-256 (doi: 10.21300/18.4.2017.245).
  • Yager T.J., McCarty J.L. Friction characteristics of three 30 ½ 11.5-14.5, Type VIII, aircraft tires with various tread groove patterns and rubber compounds. NASA Technical Paper, 1977, 100: 1.
  • Araujo-Morera J., Verdejo R., López-Manchado M.A., Santana M.H. Sustainable mobility: the route of tires through the circular economy model. Waste Management, 2021, 126: 309-322 (doi: 10.1016/j.wasman.2021.03.025).
  • Ahrends A., Hollingsworth P.M., Ziegler A.D., Fox J.M., Chen H., Su Y., Xu J. Current trends of rubber plantation expansion may threaten biodiversity and livelihoods. Global Environmental Change, 2015, 34: 48-58.
  • Amerik A.Yu., Martirosyan L.Yu., Martirosyan V.V., Martirosyan Yu.Ts. Parthenium argentatum A. Gray, Taraxacum kok-saghyz L.E. Rodin, and Scorzonera tau-saghyz Lipsch. et Bosse as alter-native sources of natural rubber: do we really need them? Sel'skokhozyaistvennaya Biologiya [Ag-ricultural Biology], 2022, 57(1): 3-26 (doi: 10.15389/agrobiology.2022.1.3eng).
  • Amerik A.Yu., Martirosyan Yu.Tc., Gachok I.V. Regulation of natural rubber biosynthesis by proteins associated with rubber particles. Russian Journal of Bioorganic Chemistry, 2018, 44(2): 140-149 (doi: 10.1134/S106816201801003X).
  • Amerik A.Y., Martirosyan Y.T., Martirosyan L.Y., Goldberg V.M., Uteulin K.R., Varfolo-meev S.D. Molecular genetic analysis of natural rubber biosynthesis. Russian Journal of Plant Physiology, 2021, 68(1): 31-45 (doi: 10.1134/S1021443721010039).
  • Ramirez-Cadavid D.A., Cornish K., Michel Jr F.C. Taraxacum kok-saghyz (TK): Compositional analysis of a feedstock for natural rubber and other bioproducts. Industrial Crops and Products, 2017, 107: 624-640 (doi: 10.1016/j.indcrop.2017.05.043).
  • Прокофьев А.А. Распределение каучука в корнях тау-сагыза. Советские каучуки, 1934, 3: 4.
  • Cherian S., Ryu S.B., Cornish K. Natural rubber biosynthesis in plants, the rubber transferase complex, and metabolic engineering progress and prospects. Plant Biotechnology Journal, 2019, 17(11): 2041-2061 (doi: 10.1111/pbi.13181).
  • Мартиросян Л.Ю., Мартиросян Ю.Ц., Варфоломеев С.Д., Гольдберг В.М. Способ аэропонного выращивания каучуконосного растения кок-сагыз Taraxacum kok-saghyz R. Патент РФ № 2779988. Опубл. 16.09.2022. Бюл. № 26.
  • Кутузова С.Н., Петросян И.А. Морфо-биологическое изучение кок-сагыза из коллекции ВИР. Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, 2011, 167: 125-132.
  • Кутузова С.Н., Брач Н.Б., Конькова Н.Г., Гаврилова В.А. Taraxacum kok-saghyz (Asteraceae, Compositae) — источник ценного растительного сырья для резиновой, пищевой и фармацевтической промышленности. Междисциплинарный научный и прикладной журнал «Биосфера», 2015, 7(3): 391-401.
  • Prioul J.L., Chartier P. Partitioning of transfer and carboxylation components of intracellular resistance to photosynthetic CO2 fixation: a critical analysis of the methods used. Annals of Botany, 1977, 41(4): 789-800 (doi: 10.1093/oxfordjournals.aob.a085354).
  • Junior-PAM chlorophyll fluorometer: operator’s guide /E. Pfündel (ed.). Germany, Heinz Walz GmbH, 2007.
  • Гольцев В.Н., Каладжи Х.М., Кузманова М.А. Аллахвердиев С.И. Переменная и замедленная флуоресценция хлорофилла а — теоретические основы и практическое приложение в исследовании растений. Ижевск-М., 2014.
  • Воробьев В.Н., Якушенкова Т.П., Воробьев Г.В. Практикум по физиологии и биохимии растений. Фотосинтез. Казань, 2013.
  • McCleary B.V., McLoughlin C. Measurement of available carbohydrates in cereal and cereal products, dairy products, vegetables, fruit and related food products and animal feeds. Journal of AOAC INTERNATIONAL, 2021, 104(6): 1465-1478 (doi: 10.1093/jaoacint/qsab019).
  • Ramirez-Cadavid D.A., Valles-Ramirez S., Cornish K., Michel Jr. F.C. Simultaneous quantification of rubber, inulin, and resins in Taraxacum kok-saghyz (TK) roots by sequential solvent extraction. Industrial Crops and Products, 2018, 122: 647-656 (doi: 10.1016/j.indcrop.2018.06.008).
  • Nelson N. A photometric adaptation of the somogyi method for determination of glucose. J. Biol. Chem., 1944, 153: 375-380.
  • Войцеховская О.В. Фитохромы и другие (фото)рецепторы информации у растений. Физиология растений, 2019, 66(3): 163-177 (doi: 10.1134/S0015330319030151).
  • Whitted M.G., Geher J.F., Benko A.D., Crvin A.M., Chotani K.G., Mcauliffe C.J., LaDuca J.R., Ben-Shoshan A.E., Sanford J.K. Technology update: development of a gas-phase bioprocess for isoprene-monomer production using metabolic pathway engineering. Industrial Biotechnology, 2010, 6(3): 152-163 (doi: 10.1089/ind.2010.6.152).
  • Lange I., Poirier B.C., Herron B.K., Lange B.M. Comprehensive assessment of transcriptional regulation facilitates metabolic engineering of isoprenoid accumulation in Arabidopsis. Plant Phys-iology, 2015, 169(3): 1595-1606 (doi: 10.1104/pp.15.00573).
  • Lastdrager J., Hanson J., Smeekens S. Sugar signals and the control of plant growth and devel-opment. Journal of Experimental Botany, 2014, 65(3): 799-807 (doi: 10.1093/jxb/ert474).
  • Ruan Y.L. Sucrose metabolism: gateway to diverse carbon use and sugar signaling. Annual Review of Plant Biology, 2014, 65: 33-67 (doi: 10.1146/annurev-arplant-050213-040251).
  • Воскресенская Н.П. Регуляторная роль синего света в фотосинтезе. В кн: Физиология фотосинтеза. М., 1982: 203-220.
  • Spalholz H., Hernández R. Transplant lettuce response to different blue:red photon flux ratios in indoor LED sole-source lighting production. Acta Horticulturae, 2018, 1227: 555-562 (doi: 10.17660/ActaHortic.2018.1227.70).
  • Мартиросян Ю.Ц., Мартиросян Л.Ю., Кособрюхов А.А. Динамика фотосинтетических процессов в условиях переменного спектрального облучения растений. Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(1): 130-139 (doi: 10.15389/agrobiology.2019.1.130rus).
Еще
Статья научная