Биотехнологические и молекулярно-генетические методы в селекции овощных культур (к 95-летию ВНИИССОК)

Автор: Шмыкова Н.А., Супрунова Т.П., Пивоваров В.Ф.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Статья в выпуске: 5 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

Устойчивое наращивание конкурентоспособной сельскохозяйственной продукции при сокращении потребления ресурсов и затрат возможно за счет ускорения селекционного процесса. В связи с этим актуальное значение приобретают новейшие биотехнологические подходы и молекулярно-генетические методы. Клональное микроразмножение, андрогенез, гиногенез, генетическая трансформация широко применяются в сельскохозяйственных программах для расширения спектра формообразования, создания константных линий, ускорения процесса селекции (J.M. Dunwell, 2010). Методы андро- и гиногенеза дают возможность реализовать гаметоклональную изменчивость в индивидуальных растениях, обнаруживать редкие рецессивные аллели, создавать уникальные формы (T. Winkelmann с соавт., 2006). Один из способов получения исходного селекционного материала - межвидовая гибридизация, позволяющая передавать полезные признаки (например, устойчивость к биотическим и абиотическим стрессорам) от диких видов растений к культурным и расширять спектр генетической изменчивости (R. Hajjar с соавт., 2007). Преодоление проблем несовместимости при отдаленной гибридизации возможно за счет биотехнологических приемов. Использование молекулярно-генетических маркеров, выявляющих генетическое разнообразие на уровне ДНК, позволяет контролировать перенос хозяйственно ценных генов от одного организма к другому, проводить генотипирование, картирование и маркирование генов. Благодаря маркер-вспомогательной селекции можно подойти к решению таких практических задач, как поддержание генетических коллекций, подбор родительских форм для скрещивания, составление родословных сортов, их паспортизация и сертификация, защита интеллектуальной собственности селекционеров. Настоящий обзор посвящен 95-летию со дня основания Всероссийского НИИ селекции и семеноводства овощных культур (ВНИИССОК, Московская обл.). Обобщены результаты работы ВНИИССОК в области биотехнологии, молекулярной генетики и их практического использования в селекции овощных культур. С помощью методов отдаленной гибридизации в институте созданы новые сорта лука (Изумрудный, Сигма, Золотые Купола, Цепариус), салата (Изумрудный, Творец, Алекс, Коралл, Малахит), физалиса (Лакомка, Десертный). Ведутся исследования по вовлечению диких видов баклажана в селекцию, а также по межвидовой гибридизации моркови. Разработана технология создания исходного материала перца, устойчивого к вирусным заболеваниям. Активно разрабатываются способы культивирования тканей и клеток in vitro. Предложена технология клонального микроразмножения, позволяющая размножать растения капусты белокочанной с мужской стерильностью в неограниченных количествах. Технология клонального микроразмножения баклажана и перца легла в основу эмбриокультуры по спасению зародышей при межвидовой гибридизации. Оптимизировано культивирование пыльников моркови, благодаря чему созданы удвоенные гаплоидные сортообразцы. Разработана отечественная технология получения удвоенных гаплоидных линий перца через культуру пыльников (микроспор). Оптимизирован базовый протокол культуры микроспор рапса и созданы удвоенные гаплоидные линии капусты китайской, брокколи и капусты белокочанной. Разработаны методы получения удвоенных гаплоидов в культуре неопыленных семяпочек моркови, лука, огурца, кабачка, тыквы, свеклы столовой. Для изучения вариабельности геномов, генотипирования сортов и линий, определения чистоты гибридного потомства у овощных культур используется ISSR-, IRAP-, AFLP- и SSR-маркирование.

Еще

Межвидовая гибридизация, клональное микроразмножение, андрогенез, гиногенез, молекулярное маркирование

Короткий адрес: https://sciup.org/142134844

IDR: 142134844 | DOI: 10.15389/agrobiology.2015.5.561rus

Список литературы Биотехнологические и молекулярно-генетические методы в селекции овощных культур (к 95-летию ВНИИССОК)

Вавилов Н.И. Избранные сочинения. Генетика и селекция. М., 1966.
Hajjar R., Hodgkin T. The use of wild relatives in crop improvement: A survey of developments over the last 20 years. Euphytica, 2007, 156: 1-13 ( ) DOI: 10.1007/s10681-007-9363-0
Кривенко А.А. Межвидовые скрещивания луков (Allium L.). Биологический журнал, 1937, 4(3): 289-297.
Ершов И.И., Абрахина Ю.В. Межвидовая гибридизация репчатого и многолетних луков. Бюллетень Главного ботанического сада, 1966, 61: 16-19.
Титова И.В., Тимин Н.И., Юрьева Н.А. Межвидовая гибридизация луков с целью получения форм, устойчивых к ложной мучнистой росе. Доклады ВАСХНИЛ, 1983, 8: 190-195.
Шевченко Г.С., Полумордвинова И.В. Система цитологического контроля при отдаленной гибридизации луков. В сб.: Научные труды по селекции и семеноводству. Т. 1. М., 1995: 104-110.
Пивоваров В.Ф., Ершов И.И., Агафонов А.Ф. Луковые культуры. М., 2001.
Тимин Н.И., Агафонов А.Ф., Шмыкова Н.А., Титова И.В., Кан Л.Ю., Логунова В.В., Гуркина Л.К., Романов В.С. Межвидовая гибридизация в роде Allium L. и ее использование в селекции (методические рекомендации). М., 2007.
Тимин Н.И., Кан Л.Ю., Романов В.С., Агафонов А.Ф., Шмыкова Н.А. Методические особенности создания и оценки форм межвидовых гибридов лука. В сб.: Новые и нетрадиционные растения и перспективы их использования. М., 2007: 269-272.
Тимин Н.И., Пышная О.Н., Агафонов А.Ф., Мамедов М.И., Титова И.В., Кан Л.Ю., Логунова В.В., Романов В.С., Шмыкова Н.А., Тимина Л.Т., Гуркина Л.К., Супрунова Т.П., Кривошеев С.М., Енгалычева И.А. Межвидовая гибридизация овощных растений (Allium L. -лук, Daucus L. -морковь, Capsicum L. -перец). М., 2013.
Скворцова Р.В., Кондратьева И.Ю. Сорта томата и овощного физалиса для открытого грунта селекции ВНИИССОК. М., 2000.
Кондратьева И.Ю., Енгалычев М.Р. Новый сорт физалиса овощного Лакомка. Овощи России, 2013, 3: 64-65.
Верба В.М., Мамедов М.И., Пышная О.Н., Супрунова Т.П., Шмыкова Н.А. Получение межвидовых гибридов баклажана методом эмбриокультуры. Сельскохозяйственная биология, 2010, 5: 66-71.
Мамедов М.И., Пышная О.Н., Шмыкова Н.А., Верба В.М., Джос Е.А., Супрунова Т.П. Межвидовая гибридизация в роде Solanum L. и ее использование в селекции. Овощи России, 2012, 2: 10-21.
Бунин М.С., Мамедов М.И., Пышная О.Н., Шмыкова Н.А., Супрунова Т.П., Енгалычева И.А., Джос Е.А. Межвидовая гибридизация в роде Capsicum L. и ее использование в селекции (методика). М., 2008.
Хрусталёва Л.И., Кан Л.Ю., Киров И.В., Сальник А.А. Молекулярно-цитогенетический анализ естественных и синтетических гибридов Allium cepa ½ A. fistulosum. Известия ТСХА, 2010, 4: 12-21.
Будылин М.В., Кан Л.Ю., Романов В.С., Хрусталева Л.И. Хромосомная структура гибридов между Allium cepa и A. fistulosum L., относительно устойчивых к пероноспорозу, по данным геномной in situ гибридизации. Генетика, 2014, 50(4): 443-451.
Dunwell J.M. Haploids in flowering plants: origins and exploitation. Plant Biotechnol. J., 2010, 8: 377-424 ( ) DOI: 10.1111/j.1467-7652.2009.00498.x
Winkelmann T., Geier T., Preil W. Commercial in vitro plant production in Germany in 1985-2004. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2006, 86(3): 319-327 ( ) DOI: 10.1007/s11240-006-9125-z
Тюкавин Г.Б. Получение безвирусных растений чеснока в культуре in vitro. В сб.: Селекция овощных культур. М., 1989, вып. 28: 116-119.
Nagakubo T., Takaichi M., Oeda K. Micropropagation of Allium sativum L. (garlic). In: Biotechnology in agriculture and forestry. V. 39. High-tech and micropropagation V/Y.P.S. Bajaj (ed.). Berlin-Heidelberg: Springer-Verlag, 1997: 4-19.
Тюкавин Г.Б., Кононков П.Ф. Клональное микроразмножение якона in vitro. Мат. II Межд. cимп. «Новые и нетрадиционные растения и перспективы их практического использования». Пущино, 1997, т. 4: 502-505.
Тюкавин Г.Б., Кононков П.Ф. Технология оздоровления и клонального микроразмножения стахиса in vitro. Мат. II Межд. симп. «Новые и нетрадиционные растения и перспективы их практического использования». Пущино, 1997, т. 4: 508-510.
Ибрагимов И.А. Разработка технологии клонального микроразмножения цветной капусты. Автореф. канд. дис. М., 1991.
Yang W., Jizhe C., Cuiling L. Strategies in establishing effective regeneration system of Chinese cabbage. Acta Horticulturae Sinica, 2005, 32(4): 701-703.
Zenkteler M., Zenkteler E., Dostatnia I. Somatic embryogenesis from broccoli stigmas in tissue culture. Acta Biologica Cracovensia Series Botanica, 2006, 48(2): 121-125.
Guo Y.-D., Niemalo T., Tulisalo U., Pulli S. Maintenance of male sterile germplasm in Brassica rapa by in vitro propagation. Agricultural and Food Science in Finland, 2000, 9: 231-238.
Бунин М.С., Шмыкова Н.А. Использование биотехнологических методов для получения исходного селекционного материала капусты. М., 2004.
Верба В.М., Мамедов М.И., Пышная О.Н., Шмыкова Н.А. Клональное микроразмножение баклажана (Solanum melongena) путем органогенеза. Вестник РАСХН, 2010, 6: 57-59.
Шмыкова Н.А. Разработка системы биотехнологических методов, направленных на ускорение селекционного процесса овощных культур. Автореф. докт. дис. М., 2006.
Верба В.М. Разработка элементов технологии, направленной на расширение генетического разнообразия баклажана при селекции на качество. Автореф. канд. дис. М., 2011.
Tuvesson S., Dayteg C., Hagberg P., Manninen O., Tanhuanpaa P., Tenhola-Roininen T., Kiviharju E., Weyen J., Forster J., Schondelmaier J., Lafferty J., Marn M., Fleck A. Molecular markers and doubled haploids in European plant breeding. Euphytica, 2007, 158: 305-312 ( ) DOI: 10.1007/s10681-006-9239-8
Ferrie A.M.R. Current status of doubled haploids in medicinal plants. In: Advances in haploid production in higher plants/A. Touraev, B.P. Forster, S.M. Jain (eds.). Heidelberg: Springer, 2009.
Ferrie A.M.R., Caswell K.L. Isolated microspore culture techniques and recent progress for haploid and doubled haploid plant production. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2011, 104(3): 301-309 ( ) DOI: 10.1007/s11240-010-9800-y
Таганов Б.О. Разработка лабораторной технологии получения андрогенных растений моркови in vitro. Автореф. канд. дис. М., 1991.
Семова Н.Ю. Разработка лабораторной технологии получения андрогенных растений белокочанной капусты с использованием культуры пыльников. Автореф. канд. дис. М., 1992.
Тюкавин Г.Б., Шмыкова Н.А., Монахова М.А. Цитология эмбриогенеза в культуре пыльников моркови. Физиология растений, 1999, 46(6): 876-883.
Тюкавин Г.Б., Супрунова Т.П., Шмыкова Н.А., Домблидес А.С., Дорохов Д.Б., Клыгина Т.Э. Изучение гаметоклональной изменчивости у моркови сорта Нантская 4. В сб.: Овощеводство -состояние, проблемы и перспективы: Научные труды (к 70-летию ВНИИО). Т. 1. М., 2001: 157-161.
Шмыкова Н.А., Пышная О.Н., Шумилина Д.В., Супрунова Т.П., Джос Е.А., Мамедов М.И. Получение удвоенных гаплоидных линий перца (Capsicum annuum L.) через культуру пыльников/микроспор in vitro (Методические рекомендации). М., 2012.
Шмыкова Н.А., Пышная О.Н., Шумилина Д.В., Джос Е.А. Морфологические характеристики удвоенных гаплоидных растений перца, полученных в культуре микроспор/пыльников in vitro межвидовых гибридов Capsicum annuum L. и C. chinense Jacq. Доклады РАСХН, 2014, 5: 21-24.
Supena E.D., Suharsono S., Jacobsen E., Custers J.B. Successful development of a shed-microspore culture protocol for doubled haploid production in Indonesian hot pepper (Capsicum annuum L.). Plant Cell Reports, 2006, 25: 1-10 ( ) DOI: 10.1007/s00299-005-0028-y
Kim M.Z., Park E.J., Harn C.H., In D.S., Jung M. Method for plant production from embryos obtained by microspore culture of hot pepper (Capsicum annuum L.). Patent KR 20090070753, 2009.07.01.
Takahata Y., Keller W.A. High frequency embryogenesis and plant regeneration in isolated microspore culture of Brassica oleracea L. Plant Sci., 1991, 74: 235-242 ( ) DOI: 10.1016/0168-9452(91)90051-9
Zhang W., Fu Q., Dai X.G., Bao M.Z. The culture of isolated microspores of ornamental kale (Brassica oleracea var. acephala) and the importance of genotype to embryo regeneration. Sci. Horticult., 117(1): 69-72 ( ) DOI: 10.1016/j.scienta.2008.03.023
Winarto B., Teixeira da Silva J.A. Microspore culture protocol for Indonesian Brassica oleracea. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2011, 107: 305-315 ( ) DOI: 10.1007/s11240-011-9981-z
Yuan S.X., Su Y.B., Liu Y.V., Fang Z.Y., Yang L.M., Zhuang M., Zhang Y.Y., Sun P.T. Effects of pH, MES, arabinogalactan-proteins on microspore cultures in white cabbage. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2012, 110: 69-76 ( ) DOI: 10.1007/s11240-012-0131-z
Kim J., Lee S.S. Identification of monogenic dominant male sterility and its suppressor gene from an induced mutation using a broccoli (Brassica oleracea var. italica) microspore culture. Hort. Environ. Biotechnol., 2012, 53(3): 237-241 ( ) DOI: 10.1007/s13580-012-0091-6
Gu H., Zhao Z., Sheng X., Yu H., Wang J. Efficient doubled haploid production in microspore culture of loose-curd cauliflower (Brassica oleracea var. botrytis). Euphytica, 2014, 195: 467-475 ( ) DOI: 10.1007/s10681-013-1008-x
Шумилина Д.В., Шмыкова Н.А., Бондарева Л.Л., Супрунова Т.П. Влияние генотипа и компонентов среды на эмбриогенез в культуре микроспор капусты китайской Brassica rapa ssp. сhinensis сорта Ласточка. Известия РАН. Серия биологическая, 2015, 4: 1-8.
Andersen S.B. Anther culture in carrot. Hereditas Suppl., 1985, 3(12): 132.
Hu K.L., Matsubara S., Murakami K. Haploid plant production in carrot (Daucus carota L.). J. Japan. Hort. Sci., 1993, 62(3): 561-565.
Adamus A., Michalik B. Anther culture in carrot (Daucus carota L.). Folia Horticulturae Suppl., 2003, 1: 47-49.
Nowakowska M., Kozik E.U., Nowak N. Evaluation of phenotypic uniformity of androgenic R1 population of carrot derived by anther culture technique. Folia Horticulturae, 2006, 18(2): 77-86.
Gorecka K., Cvikrova M., Kowalska U., Eder J., Szafranska K., Gorecki R., Janas K.M. The impact of Cu treatment on phenolic and polyamine levels in plant material regenerated from embryos obtained in anther culture of carrot. Plant Physiol. Biochem., 2007, 45(1): 54-61 ( ) DOI: 10.1016/j.plaphy.2006.12.007
Gorecka K., Kowalska U., Krzyzanowska D., Kiszczak W. Obtaining carrot (Daucus catota L.) plants in isolated microspore cultures. J. Appl. Genet., 2010, 51: 141-147 ( ) DOI: 10.1007/BF03195722
Li J.-R., Zhuang F.-Y., Ou C.-G., Hu H., Zhao Z.-W., Mao J.-H. Microspore embryogenesis and production of haploid and doubled haploid plants in carrot (Daucus carota L.). Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2013, 112: 275-287 ( ) DOI: 10.1007/s11240-012-0235-5
Chen J.F., Cui L., Malik A.A., Mbira K.G. In vitro haploid and dihaploid production via unfertilized ovule culture. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2011, 104: 311-319 ( ) DOI: 10.1007/s11240-010-9874-6
Campion B., Azzimonti M.T., Vicini E., Schiavi M., Falavigna A. Advance in haploid plant induction in onion (Allium cepa L.) through in vitro gynogenesis. Plant Sci., 1992, 86: 97-104 ( ) DOI: 10.1016/0168-9452(92)90183-M
Bohanec B. Double-haploid onions. In: Allium Crop Science -Recent Advances/H.D. Rabinowich, L. Currah (eds.). London, CABI, 2002.
Sulistyaningsih E., Aoyagi Y., Tashiro Y. Flower bud culture of shallot (Allium cepa L. aggregatum group) with cytogenetic analysis of resulting gynogenic plants and somaclones. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2006, 86: 249-255 ( ) DOI: 10.1007/s11240-006-9114-2
Gemes-Juhasz A., Balogh P., Ferenczy A., Kristof Z. Effect of optimal stage of female gametophyte and heat treatment on in vitro gynogenesis induction in cucumber (Cucumis sativus L.). Plant Cell Rep., 2002, 21: 105-111 ( ) DOI: 10.1007/s00299-002-0482-8
Li J.W., Si S.W., Cheng J.Y., Li J.X., Liu J.Q. Thidiazuron and silver nitrate enhanced gynogenesis of unfertilized ovule cultures of Cucumis sativus. Biologia Plantarum, 2013, 57(1): 164-168 ( ) DOI: 10.1007/s10535-012-0269-x
Michalik B., Baranski R. In vitro induction of haploid plants from unpollinated ovules of red beet. Proc. XIII Eucarpia Congr. «Reproductive Biology and Plant Breeding». France, 1992: 193-194.
Mohamed M.F., Refaei E.F.S. Enhanced haploid regeneration in anther culture of summer squash Cucurbita pepo L. Cucurbit Genetics Cooperative Report, 2004, 27: 57-60.
Shalaby T.A. Factors affecting haploid induction through in vitro gynogenesis in summer squash (Cucurbita pepo L.). Sci. Hort., 2007, 115: 1-5 ( ) DOI: 10.1016/j.scienta.2007.07.008
Шмыкова Н.А. Культура пыльников, неопыленных завязей и семяпочек лука репчатого. В сб.: Научные труды по селекции и семеноводству. М., 1995: 164-170.
Шмыкова Н.А., Химич Г.А., Коротцева И.Б., Домблидес Е.А. Перспективы получения удвоенных гаплоидов растений семейства Cucurbitaceae. Овощи России, 2015, 3-4(28-29): 28-31.
Шмыкова Н.А., Супрунова Т.П. Индукция гиногенеза в культуре in vitro неопыленных семяпочек Cucumis sativus L. Гавриш, 2009, 4: 40-44.
Шмыкова Н.А., Шумилина Д.В., Кушнерева В.П., Химич Г.А. Индукция гиногенеза в культуре неопыленных семяпочек тыквы. Овощи России, 2011, 1(10): 28-31.
Тюкавин Г.Б. Основы биотехнологии моркови. М., 2007.
Супрунова Т.П. Идентификация вариабельности генома томата с помощью маркеров на основе ДНК. Автореф. канд. дис. М., 1997.
Кочиева Е.З., Супрунова Т.П. Идентификация внутри-и межвидового полиморфизма у томата. Генетика, 1999, 35(10): 1386-1389.
Кочиева Е.З., Супрунова Т.П., Семенова С.К. RAPD технология для идентификации сортов баклажана Solanum melongena L. Генетика, 1999, 35(8): 1165-1168.
Дорохов Д.Б., Лаптева М.Н. Быстрая технология RAPD-анализа генотипов луков. Сельскохозяйственная биология, 1997, 5: 22-28.
Балашова И.Т., Супрунова Т.П., Урсул Н.А., Пивоваров В.Ф., Ведадеваге С.П.К., Гужов В.Л. Последействие низкотемпературного стресса на ранних стадиях развития у исходного материала и гибридов F1 томата. Сельскохозяйственная биология, 2008, 3: 62-71.
Домблидес Е.А., Домблидес А.С., Бондарева Л.Л., Старцев В.И. Оценка генетического разнообразия и филогенетических связей у образцов А и С геномов капустных культур. Мат. II Межд. науч.-практ. конф. «Современные тенденции в селекции и семеноводстве овощных культур; традиции и перспективы». M., 2010: 214-223.
Домблидес А.С., Домблидес Е.А., Кан Л.Ю., Романов В.С. Полиморфизм межмикросателлитных повторов у видов лука. Овощи России, 2011, 3: 24-27.
Домблидес А.С., Домблидес Е.А., Харченко В.А., Потехин Г.А. Изучение генетического полиморфизма образцов петрушки с использованием RAPD и ISSR маркеров. Вестник Московского университета. Серия 16: Биология, 2010, 4: 25-28.
Mamedov M.I., Pishnaya O.N., Suprunova T.P., Verba V.M., Shmykova N.A. Development and analysis of interspecific hybrids among three species of the genus of Solanum. Proc. XV EUCARPIA Meeting on Genetics and Breeding of Capsicum and Eggplant. Italy, 2013: 525-529.
Снигирь Е.А., Пышная О.Н., Кочиева Е.З., Рыжова Н.Н. AFLP-анализ сортового полиморфизма Capsicum annuum L. Сельскохозяйственная биология, 2013, 1: 53-60 ( , 10.15389/agrobiology.2013.1.53eng) DOI: 10.15389/agrobiology.2013.1.53rus
Снигирь Е.А. Использование молекулярных маркеров для анализа полиморфизма генома перца и оптимизации селекционного процесса. Автореф. канд. дис. M., 2013.
Снигирь Е.А., Кочиева Е.З., Мамедов М.И., Супрунова Т.П., Шмыкова Н.А., Пышная О.Н. Изучение эффекта гетерозиса перца сладкого при подборе родительских пар с использованием данных молекулярного анализа. Овощи России, 2012, 4(17): 25-28.
Супрунова Т.П., Пышная О.Н., Шмыкова Н.А., Джос Е.А. Получение межвидовых гибридов перца (Capsicum L.) S-плазмотипа с использованием эмбриокультуры in vitro. Сельскохозяйственная биология, 2009, 3: 60-67.
Супрунова Т.П., Логунов А.Н., Логунова В.В., Агафонов А.Ф. Определение типа цитоплазматической мужской стерильности лука репчатого (Allium cepa L.) селекции ВНИИССОК с помощью молекулярных маркеров. Овощи России, 2011, 4: 20-21.
Havey M.J. Diversity among male-sterility-inducing and male-fertile cytoplasms of onion. Theor. Appl. Genet., 2000, 101: 778-782 ( ) DOI: 10.1007/s001220051543
Домблидес Е.А., Домблидес А.С., Заячковская Т.В., Бондарева Л.Л. Идентификация типа цитоплазмы у образцов семейства капустные с использованием ПЦР. Мат. VI Межд. науч.-практ. конф. «Биотехнология как инструмент сохранения разнообразия растительного мира». Ялта, 2014: 164-165.
Francia E., Tacconi G., Crosatti C., Barabaschi D., Bulgarelli D., Dall’Aglio E., Valè G. Marker assisted selection in crop plants. Plant Cell Tiss. Org. Cult., 2005, 82: 317-342 ( ) DOI: 10.1007/s11240-005-2387-z
Stewart C.J., Kang B.C., Liu K., Mazourek M., Moore S.L., Yoo E.Y., Kim B.D., Jahn M.M. The Pun1 gene for pungency in pepper encodes a putative acyltransferase. Plant J., 2005, 42: 675-688 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-313X.2005.02410.x
Suprunova T., Pishnaya O., Dzhos E., Mamedov M. Practical use of molecular markers of pungency in breeding program of pepper (Capsicum annuum L.). Proc. European Plant Genetic Resources Conference, EUCARPIA «Pre-breeding -fishing in the gene pool». Sweden, Alnarp, 2013: 67.
Collard B.C.Y., Mackill D.J. Marker-assisted selection: an approach for precision plant breeding in the twenty-first century. Phil. Trans. R. Soc. B., 2008, 363: 557-572 ( ) DOI: 10.1098/rstb.2007.2170

Еще

Статья научная