Цветушность сахарной свеклы (Beta vulgaris subsp. Vulgaris var. Altissima d"oll): причины, генетические механизмы и предотвращение (обзор)

Автор: Крупина А.Ю., Крупин П.Ю., Карлов Г.И., Дивашук М.Г.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 1 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

Сахарная свекла - важная сельскохозяйственная культура, продукты переработки которой используются в производстве сахара и спирта, животноводческой, кондитерской и других отраслях промышленности. Будучи двухлетним растением, сахарная свекла в первый год формирует корнеплод, а во второй год, после зимнего хранения, - цветонос и соцветия. Способность формировать цветонос в первый год жизни называется цветушностью. Образование цветоноса у сахарной свеклы происходит в результате воздействия низких положительных температур (яровизация) и длинного светового дня. Цветушность актуальна для регионов свеклосеяния с холодными веснами и длинным световым днем и приводит к потере урожая и сахара. С точки зрения генетики цветушность обусловлена работой сложной системы генов перехода из вегетативной фазы развития в генеративную, центральное место в которой занимает взаимодействие генов BvBTC1 и BvBBX19 . Функциональные продукты экспрессии стимулируют ген-индуктор цветения BvFT2 и подавляют экспрессию гена-репрессора цветения BvFT1 (N. Dally с соавт., 2018). В геноме свеклы среди генов цветения идентифицировано множество генов-ортологов арабидопсиса, характеризующихся дифференциальной экспрессией и метилированием в результате яровизации и различающихся у устойчивых и неустойчивых к цветушности генотипов (M.-V. Trap-Gentil с соавт., 2011; Z. Pi с соавт., 2021). Главный физиологический регулятор перехода к цветению у сахарной свеклы - гибберелловая кислота, гены-регуляторы синтеза которой также участвуют в яровизации (E. Mutasa-Gottgens с соавт., 2009). Главные методы борьбы с цветушностью состоят в использовании соответствующих агротехнических приемов и в создании устойчивых сортов и гибридов селекционно-генетическими методами. Агротехнические методы подразумевают правильную дату сева, при которой растения не подвергаются воздействию низких положительных температур, выбор сортов, рекомендованных для зоны возделывания, уничтожение раннецветущих растений, использование химической обработки семян и вегетирующих растений (И.А. Оксененко с соавт., 1987; К.С. Девликамов с соавт., 2016; M. Sadeghi-Shoae с соавт., 2017). Селекционные методы предполагают создание аналитического фона для негативного отбора цветушного материала: сверхранний и подзимний посевы, отбор в условиях длинного дня, посев яровизированными семенами, посев в почву, обработанную гербицидами (А.В. Корниенко с соавт., 1983; А.В. Логвинов с соавт., 2021, 2022). Важно проводить оценку генетических ресурсов из мировых коллекций как культурных, так и дикорастущих образцов для поиска новых доноров устойчивости к цветушности (Е.С. Кутняхова с соавт., 2016; В.И. Буренин с соавт., 2018). Важным методом при создании новых ценных аллелей нецветушности служит мутагенез на основе этилметансульфоната. Маркеры для аллельных вариантов (гаплотипов) функциональных генов цветения, а также найденные локусы количественных признаков и однонкулеотидные полиморфизмы, ассоциированные с устойчивостью к цветушности, могут быть использованы в маркер-опосредованной селекции (B. Büttner с соавт., 2010; Y. Kuroda с соавт., 2019; S. Ravi с соавт., 2021). Для ускоренной селекции и семеноводства по схеме «от семени до семени» перспективна стимуляция цветушности растений сахарной свеклы в условиях искусственного климата за счет правильно подобранной температуры, фенофазы начала яровизации, продолжительности и качества светового периода.

Еще

Сахарная свекла, яровизация, цветение, стрелкование, селекция, маркер-опосредованный отбор, генные сети, агротехника, ускоренная селекция

Короткий адрес: https://sciup.org/142241616

IDR: 142241616   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.1.73rus

Список литературы Цветушность сахарной свеклы (Beta vulgaris subsp. Vulgaris var. Altissima d"oll): причины, генетические механизмы и предотвращение (обзор)

  • Никляев В.С., Косинский В.С., Ткачев В.В., Сучилина А.А. Основы технологии сельскохозяйственного производства. Земледелие и растениеводство /Под ред. В.М. Никляева. М., 2000.
  • Вавилов П.П., Гриценко В.В., Кузнецов В.С. и др. Растениеводство /Под ред. П.П. Вавилова. М., 1986: 200-242.
  • Борель А.Н. Сахарная свекла: достижения селекции как залог экономической эффективности. Сахар, 2016, 8: 30-31.
  • Булатов Р.К. История происхождения сахарной свеклы. NovaInfo, 2016, 44: 67-69.
  • Soare E., Dobre I., David L. Research on sugar beet production and trade — worldwide overview. Scientific Papers Series Management, Economic Engineering in Agriculture and Rural Development, 2021, 21(4): 533-540.
  • FAOSTAT. Food and Agriculture Organization. Crops and livestock productsю Режим доступа: https://www.fao.org/faostat/en/#data/QCL. Дата обращения: 20.09.2023.
  • Федеральная служба государственной статистики (Росстат). Главный межрегиональный центр. Посевные площади, валовые сборы и урожайность сельскохозяйственных культур в Российской Федерации в 2022 году (предварительные данные). Режим доступа: https://rosstat.gov.ru/storage/mediabank/29_cx_predv_2022.xlsx. Дата обращения: 20.09.2023.
  • Карамнова Н.В. Методика оценки устойчивого развития свеклосахарного производства. Теория и практика мировой науки, 2017, 7: 31-35.
  • Итоги 2022: сахар и сахарная свекла. Институт конъюнктуры аграрного рынка (ИКАР), 2022. Режим доступа: http://ikar.ru/lenta/752.html. Дата обращения: 20.09.2023.
  • Логвинов А.В., Нещадим Н.Н., Горпинченко К.Н. Проблемы и пути их решения в российском семеноводстве сахарной свеклы. Политематический сетевой электронный научный журнал Кубанского государственного аграрного университета, 2022, 183: 194-203.
  • Кухарев О.Н., Старостин И.А., Семов И.Н. К вопросу технико-технологического обеспечения селекции и семеноводства сахарной свеклы. Вестник Казанского ГАУ, 2019, 14(4-2): 25-30.
  • Апасов И.В., Бартенев И.И., Путилина Л.Н., Селиванова Г.А., Смирнов М.А., Подосин-ников И.В. Комплексная оценка гибридов сахарной свеклы в период вегетации послеуборочного хранения. Земледелие, 2013, 4: 43-46.
  • Ошевнев В.П., Грибанова Н.П. Гибриды сахарной свеклы для различных регионов России. Земледелие, 2013, 4: 39-41.
  • Логвинов А.В. Научные основы создания толерантных к церкоспорозу и гербицидам линии и гибридов сахарной свеклы: фенотипическое проявление, генотипические особенности и практическое их использование. Докт. дис. Краснодар, 2022.
  • Бикчурина Э. Уход от семенной зависимости: каковы перспективы импортозамещения в российском семеноводстве. Агроинвестор, 2017, 2. Режим доступа: https://www.agroinvestor.ru/tech-nologies/article/25823-ukhod-ot-semennoy-zavisimosti/. Дата обращения: 20.09.2023.
  • Каракотов С.Д., Апасов И.В., Налбандян А.А., Васильченко Е.Н., Федулова Т.П. Современные аспекты селекции гибридов сахарной свеклы (Beta vulgaris L.). Вавиловский журнал генетики и селекции, 2021, 25(4): 394-400 (doi: 10.18699/VJ21.043).
  • Ошевнев В.П., Грибанова Н.П., Васильченко Е.Н., Бердников Р.В. Стабилизация признака односемянности при создании компонентов гибридов сахарной свеклы. Известия Самарского научного центра Российской академии наук, 2018, 20(2(2)): 186-191.
  • Пыльнев В.В., Коновалов Ю.Б., Хупацария В.И., Буко О.А., Пыльнев В.М., Рубец В.С., Пыльнева Е.В., Конорев П.М., Баженова С.С., Березкина Л.Л. Частная селекция полевых культур /Под ред. В.В. Пыльнева. М., 2016: 467-500.
  • Кухарев О.Н., Касынкина О.М., Кошеляев В.В. Эффективность сортов и гибридов сахарной свеклы при различных уровнях минерального питания. Нива Поволжья, 2017, 2(43): 29-33.
  • Логвинов А.В., Мищенко В.Н., Логвинов В.А., Моисеев В.В., Шевченко А.Г. Создание гибридов сахарной свеклы, устойчивых к глифосату. Сахар, 2019, 3: 44-51.
  • Черкасова Н.Н., Жужжалова Т.П., Колесникова Е.О. Разработка технологии селективного отбора in vitro регенерантов сахарной свеклы с устойчивостью к кислотности и засухе. Сахар, 2018, 10: 43-45.
  • Хуссейн А.С., Михеева Н.Р., Налбандян А.А., Черкасова Н.Н. Скрининг растений-регенерантов сахарной свеклы на наличие гена устойчивости к тяжелым металлам MTP4. Биотехнология, 2021, 37: 14-19 (doi: 10.21519/0234-2758-2021-37-4-14-19).
  • Чесноков Ю.В., Буренин В.И., Иванов А.А. RAPD-анализ коллекционных образцов дикой и культурной свеклы (Beta L.). Сельскохозяйственная биология, 2013, 3: 28-36 (doi: 10.15389/agrobiology.2013.3.28rus).
  • Сащенко М.Н., Подвигина О.А., Ващенко Т.Г. Получение нового селекционного материала сахарной свеклы с использованием дикого вида. Вестник Воронежского государственного аграрного университета, 2015, 2(45): 14-20.
  • Шалаева Т.В., Анискина Ю.В., Колобова О.С., Велишаева Н.С., Логвинов А.В., Мищенко В.Н., Шилов И.А. Исследование микросателлитных локусов генома сахарной свеклы (Beta vulgaris L. ssp. vulgaris) для создания технологии генетического анализа линий и гибридов. Сельскохозяйственная биология, 2023, 58(3): 483-493 (doi: 10.15389/agrobiology.2023.3.483rus).
  • Абекова А.М., Ержебаева Р.С., Агеенко А.В., Конысбеков К.Т., Берсимбаева Г.Х. Оценка коллекционных образцов сахарной свеклы (Beta vulgaris L.) на холодостойкость. Сибирский вестник сельскохозяйственной науки, 2020, 50(5): 94-102 (doi: 10.26898/0370-8799-2020-5-11).
  • Jaggard K.W., Wickens R., Webb D.J., Scott R.K. Effects of sowing date on plant establishment and bolting and the influence of these factors on yields of sugar beet. The Journal of Agricultural Science, 1983, 101(1): 147-161 (doi: 10.1017/S0021859600036479).
  • Сапронов А.Р. Технология сахарного производства. М., 1999.
  • Rezaei J., Fasahat P. Autumn-sown sugar beet cultivation in semiarid regions. In: Sugar beet cultivation, management and processing /V. Misra, S. Srivastava, A.K. MallSingapore (eds.). Springer, Singapore, 2023: 275-290 (doi: 10.1007/978-981-19-2730-0_14).
  • Логвинов А.В., Цаценко Л.В., Мищенко В.Н., Жабатинская Ю.В. Результаты испытаний селекционного материала сахарной свеклы по устойчивости к цветушности. Труды Кубанского государственного аграрного университета, 2022, 101: 168-174 (doi: 10.21515/1999-1703-101-168-174).
  • Девликамов К.С., Девликамов Д.К. Цветушность сахарной свеклы: причины возникновения и способы борьбы. Наше сельское хозяйство. Агрономия, 2016, 9: 10-14.
  • Melzer S., Müller A.E., Jung C. Genetics and genomics of flowering time regulation in sugar beet. In: Genomics of plant genetic resources. Vol. 2. Crop productivity, food security and nutritional quality /R. Tuberosa, A. Graner, E. Frison (eds.). Springer, Dordrecht, 2014: 3-26 (doi: 10.1007/978-94-007-7575-6_1).
  • Чечеткина И., Гуляка М. Рекомендации по севу сахарной свеклы в 2021 году. Наше сельское хозяйство. Агрономия, 2021, 5: 42-44.
  • Milford G.F.J., Jarvis P.J., Walters C. A vernalization-intensity model to predict bolting in sugar beet. The Journal of Agricultural Science, 2010, 148(2): 127-137 (doi: 10.1017/S0021859609990323).
  • Abu-Ellail F.F.B., Salem K.F.M., Saleh M.M., Alnaddaf L.M., Al-Khayri J.M. Molecular breed-ing strategies of beetroot (Beta vulgaris ssp. vulgaris var. conditiva Alefeld). In: Advances in plant breeding strategies: vegetable crops /J.M. Al-Khayri, S.M. Jain, D.V. Johnson (eds.). Springer, Cham, 2021: 157-212 (doi: 10.1007/978-3-030-66965-2_4).
  • Логвинов А.В., Суслов В.И. Характеристика селекционных образцов сахарной свеклы по признаку цветушности. Мат. Межд. заочной науч.-практ. конф. «Наука XXI века: Актуальные вопросы, проблемы и перспективы». Нефтекамск, 2021: 30-39.
  • Smit A.L. Influence of external factors on growth and development of sugar-beet (Beta vulgaris L.). Wageningen, 1983.
  • Суслов В.И., Логвинов В.А., Мищенко В.Н., Суслов А.В., Логвинов А.В., Титаренко А.И., Колганов В.В. Оценка селекционных материалов сахарной свеклы по признаку цветуш-ности. Сахарная свекла, 2012, 6: 12-15.
  • Hoffmann C.M., Kluge-Severin S. Light absorption and radiation use efficiency of autumn and spring sown sugar beets. Field Crops Research, 2010, 119(2-3): 238-244 (doi: 10.1016/j.fcr.2010.07.014).
  • Еникиев Р.И., Камиланов А.А. Сроки посева сахарной свеклы и факторы, определяющие его. Уральский научный вестник, 2022, 8(3): 81-84.
  • Curcic Z., Ciric M., Nagl N., Taski-Ajdukovic K. Effect of sugar beet genotype, planting and harvesting dates and their interaction on sugar yield. Front. Plant Sci., 2018, 9: 1041 (doi: 10.3389/fpls.2018.01041).
  • Chiurugwi T., Holmes H.F., Qi A., Chia T.Y.P., Hedden P., Mutasa-Göttgens E.S. Development of new quantitative physiological and molecular breeding parameters based on the sugar-beet vernalization intensity model. The Journal of Agricultural Science, 2013, 151(4): 492-505 (doi: 10.1017/S0021859612000573).
  • Mutasa-Gottgens E., Qi A., Mathews A., Thomas S., Phillips A., Hedden P. Modification of gibberellin signalling (metabolism & signal transduction) in sugar beet: analysis of potential targets for crop improvement. Transgenic Res., 2009, 18: 301-308 (doi: 10.1007/s11248-008-9211-6).
  • Goudriaan J., Monteith J.L. A mathematical function for crop growth based on light interception and leaf area expansion. Annals of Botany, 1990, 66(6): 695-701 (doi: 10.1093/oxfordjour-nals.aob.a088084).
  • Gao R., Bouillet S., Stock A.M. Structural basis of response regulator function. Annual Review of Microbiology, 2019, 73: 175-197 (doi: 10.1146/annurev-micro-020518-115931).
  • Brambilla V., Fornara F. Y flowering? Regulation and activity of CONSTANS and CCT-domain proteins in Arabidopsis and crop species. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Gene Regulatory Mechanisms, 2016, 1860(5): 655-660 (doi: 10.1016/j.bbagrm.2016.10.009).
  • Dally N., Xiao K., Holtgräwe D., Jung C. The B2 flowering time locus of beet encodes a zinc finger transcription factor. PNAS, 2014, 111(28): 10365-10370 (doi: 10.1073/pnas.1404829111).
  • Pin P.A., Benlloch R., Bonnet D., Wremerth-Weich E., Kraft T., Gielen J.J.L., Nilsson O. An Antagonistic pair of FT homologs mediates the control of flowering time in sugar beet. Science, 2010, 330(6009): 1397-1400 (doi: 10.1126/science.1197004).
  • Dally N., Eckel M., Batschauer A., Höft N., Jung C. Two CONSTANS-LIKE genes jointly control flowering time in beet. Sci. Rep., 2018, 8: 16120 (doi: 10.1038/s41598-018-34328-4).
  • Kim D.-H. Current understanding of flowering pathways in plants: focusing on the vernalization pathway in Arabidopsis and several vegetable crop plants. Hortic. Environ. Biotechnol., 2020, 61: 209-227 (doi: 10.1007/s13580-019-00218-5).
  • Pi Z., Xing W., Zhu X., Long J., Zou Y., Wu Z. Temporal expression pattern of bolting-related genes during vernalization in sugar beet. Sugar Tech, 2021, 23: 146-157 (doi: 10.1007/s12355-020-00886-z).
  • Zhao L., Li S., Yu Q., Zhang C., Wang L., Jiang Y., Wu Z., Pi Z. Vernalization promotes GA-mediated bolting initiation via the inhibition of ABA and JA biosynthesis. Agronomy, 2023, 13(5): 1251 (doi: 10.3390/agronomy13051251).
  • Mutasa-Göttgens E.S., Joshi A., Holmes H.F., Hedden P., Göttgens B. A new RNASeq-based reference transcriptome for sugar beet and its application in transcriptome-scale analysis of vernalization and gibberellin responses. BMC Genomics, 2012, 13: 99 (doi: 10.1186/1471-2164-13-99).
  • Trap-Gentil M.-V., Hébrard C., Lafon-Placette C., Delaunay A., Hagège D., Joseph C., Brigno-las F., Lefebvre M., Barnes S., Maury S. Time course and amplitude of DNA methylation in the shoot apical meristem are critical points for bolting induction in sugar beet and bolting tolerance between genotypes. Journal of Experimental Botany, 2011, 62(8): 2585-2597 (doi: 10.1093/jxb/erq433).
  • Liang N., Cheng D., Zhao L., Lu H., Xu L., Bi Y. Identification of the genes encoding B3 domain-containing proteins related to vernalization of Beta vulgaris. Genes, 2022, 13(12): 2217 (doi: 10.3390/genes13122217).
  • Asgari M., Mirzaie-asl A., Abdollahi M.R., Khodaei L. Flowering time regulation by the miRNA156 in the beet (Beta vulgaris ssp. maritima). Research Square, 2022, 150: 361-370 (doi: 10.21203/rs.3.rs-865214/v1).
  • Liang G., He H., Li Y., Wang F., Yu D. Molecular mechanism of microRNA396 mediating pistil development in Arabidopsis. Plant Physiology, 2014, 164(1): 249-258 (doi: 10.1104/pp.113.225144).
  • Hébrard C., Trap-Gentil M.-V., Lafon-Placette C., Delaunay A., Joseph C., Lefèbvre M., Barnes S., Maury S. Identification of differentially methylated regions during vernalization re-vealed a role for RNA methyltransferases in bolting. Journal of Experimental Botany, 2013, 64(2): 651-663 (doi: 10.1093/jxb/ers363).
  • Hébrard C., Peterson D.G., Willems G., Delaunay A., Jesson B., Lefèbvre M., Barnes S., Maury S. Epigenomics and bolting tolerance in sugar beet genotypes. Journal of Experimental Botany, 2016, 67(1): 207-225 (doi: 10.1093/jxb/erv449).
  • Shavrukov Y.N. Localization of new monogerm and late-bolting genes in sugarbeet using RFLP markers. Journal of Sugarbeet Research, 2000, 37(4): 107-115.
  • Abou-Elwafa S.F., Hamada A., Mehareb E.M. Genetic identification of a novel locus (LB2) regulates bolting time in Beta vulgaris. International Journal of Agricultural Science and Technology, 2014, 2(1): 48-52 (doi: 10.14355/ijast.2014.0301.07).
  • Büttner B., Abou-Elwafa S.F., Zhang W., Jung C., Müller A.E. A survey of EMS-induced biennial Beta vulgaris mutants reveals a novel bolting locus which is unlinked to the bolting gene B. The-oretical and Applied Genetics, 2010, 121: 1117-1131 (doi: 10.1007/s00122-010-1376-8).
  • Abou-Elwafa S.F., Büttner B., Kopisch-Obuch F.J., Jung C., Müller A.E. Genetic identification of a novel bolting locus in Beta vulgaris which promotes annuality independently of the bolting gene B. Molecular Breeding, 2012, 29: 989-998 (doi: 10.1007/s11032-011-9671-x).
  • Kuroda Y., Kuranouchi T., Okazaki K., Takahashi H., Taguchi K. Biennial sugar beets capable of flowering without vernalization treatment. Genetic Resources and Crop Evolution, 2023, 71: 823-834 (doi: 10.1007/s10722-023-01662-0).
  • Pfeiffer N., Tränkner C., Lemnian I., Grosse I., Müller A.E., Jung C., Kopisch-Obuch F.J. Genetic analysis of bolting after winter in sugar beet (Beta vulgaris L.). Theoretical and Applied Genetics, 2014, 127: 2479-2489 (doi: 10.1007/s00122-014-2392-x).
  • Tränkner C., Lemnian I.M., Emrani N., Pfeiffer N., Tiwari S.P., Kopisch-Obuch F.J., Vogt S.H., Müller A.E., Schilhabel M., Jung C., Grosse I. A detailed analysis of the BR1 locus suggests a new mechanism for bolting after winter in sugar beet (Beta vulgaris L.). Front. Plant Sci., 2016, 7: 1662 (doi: 10.3389/fpls.2016.01662).
  • Pfeiffer N., Müller A.E., Jung C., Kopisch-Obuch F.J. QTL for delayed bolting after winter detected in leaf beet (Beta vulgaris L.). Plant Breed, 2017, 136(2): 237-244 (doi: 10.1111/pbr.12452).
  • Broccanello C., Stevanato P., Biscarini F., Cantu D., Saccomani M. A new polymorphism on chromosome 6 associated with bolting tendency in sugar beet. BMC Genet., 2015, 16: 142.
  • Kuroda Y. Key quantitative trait loci controlling bolting tolerance in sugar beet. Research Square, 2023 (doi: 10.21203/rs.3.rs-3271143/v1).
  • Ravi S., Campagna G., Della Lucia M.C., Broccanello C., Bertoldo G., Chiodi C., Maretto L., Moro M., Eslami A.S., Srinivasan S., Squartini A., Concheri G., Stevanato P. SNP alleles asso-ciated with low bolting tendency in sugar beet. Front. Plant Sci., 2021, 12: 693285 (doi: 10.3389/fpls.2021.693285).
  • Mutasa-Göttgens E.S., Qi A., Zhang W., Schulze-Buxloh G., Jennings A., Hohmann U., Müller A.E., Hedden P. Bolting and flowering control in sugar beet: relationships and effects of gib-berellin, the bolting gene B and vernalization. AoB PLANTS, 2010, 2010: plq012 (doi: 10.1093/aobpla/plq012).
  • Koda Y., Ohkawa-Takahashi K., Kikuta Y. Stimulation of root thickening and inhibition of bolt-ing by jasmonic acid in beet plants. Plant Production Science, 2001, 4(2): 131-135 (doi: 10.1626/pps.4.131).
  • Liang N., Cheng D., Liu Q., Cui J., Luo C. Difference of proteomics vernalization-induced in bolting and flowering transitions of Beta vulgaris. Plant Physiology and Biochemistry, 2018, 123: 222-232 (doi: 10.1016/j.plaphy.2017.12.017).
  • Логвинов В.А., Моисеев В.В., Мищенко В.Н., Логвинов А.В., Моисеев А.В. Семеноводство сахарной свеклы в связи с новыми направлениями селекционной работы. Труды Кубанского государственного аграрного университета, 2018, 71: 45-52 (doi: 10.21515/1999-1703-71-45-52).
  • Корниенко А.В., Люшняк В.П., Осадчий А.С., Макогон А.М. Способ отбора растений сахарной свеклы на устойчивость к цветушности. А.с. SU1237126 A1 (СССР) МКИ A 01 H 1/04, A 01 G 7/00. Центр. сел.-генет. ст. Науч.-произв. объед. “Сахсвекла” (СССР). № 3638987/30-15. Заявл. 29.06.83. Опубл. 15.06.86. Бюл. № 22.
  • Оксененко И.А., Шуклина И.А., Греков В.Е. Способ борьбы с цветушностью растений свеклы. А.с. SU646483A (СССР) МКИ A 01 N 33/08. Курский с.-х. институт им. проф. И.И. Иванова (СССР). № 2444237/23-04. Заявл. 18.01.77. Опубл. 30.09.87. Бюл. № 36.
  • Sadeghi-Shoae M., Habibi D., Taleghani D.F., Paknejad F., Kashani A. Evaluation the effect of paclobutrazol on bolting, qualitative and quantitative performance in autumn sown-sugar beet genotypes in Moghan region. International Journal of Biosciences, 2014, 5: 346-354 (doi: 10.13140/RG.2.1.4715.5366).
  • Sadeghi-Shoae M., Taleghani D.F., Habibi D. Some reactions of physiological and morphological characteristics to foliar application of paclobutrazol in autumn sugar beet (Beta vulgaris). Biosci. Biotech. Res. Asia, 2017, 14(1): 225-231 (doi: 10.13005/bbra/2439).
  • Корниенко А.В., Осадчий А.С., Макогон А.М. Способ отбора растений сахарной свеклы на устойчивость к цветушности. А.с. SU993886A1 (СССР) МКИ A01H 1/04. Уманский селекционный пункт Науч.-произв. объед. “Сахсвекла” (СССР). № 3314603/30-15. Заявл. 01.04.81. Опубл. 07.02.83. Бюл. № 5.
  • Щепетнев П.Е., Щепетнева А.С. Способ выведения форм сахарной свеклы с повышенной сахаристостью и устойчивых к цветухе. А.с. SU383435A1 (СССР) МКИ A01H 1/04. Всерос. орд. Труд. Кр. Знамени НИИ сахарной свеклы и сахара (СССР). № 1701512/30-15. Заявл. 23.09.71. Опубл. 23.05.73. Бюл. № 24.
  • Кутняхова Е.С., Цыкалов А.Н. Устойчивость к болезням и структура урожая гибридов сахарной свеклы предоставленных АО «Щелково Агрохим». Мат. Межд. науч.-практ. конф. молодых ученых и специалистов «Инновационные технологии и технические средства для АПК». Воронеж, 2016: 51-54.
  • Буренин В.И., Пискунова Т.М. Генофонд для селекции сахарной свеклы. Мат. Межд. науч.-практ. конф., посвященной 90-летию РУП «Опытная научная станция по сахарной свекле», «Научное обеспечение отрасли свекловодства». Минск, 2018: 26-32.
  • Büttner B., Abou-Elwafa S.F., Zhang W., Jung C., Müller A.E. A survey of EMS-induced biennial Beta vulgaris mutants reveals a novel bolting locus which is unlinked to the bolting gene B. The-oretical and Applied Genetics, 2010, 121: 1117-1131 (doi: 10.1007/s00122-010-1376-8).
  • Tränkner C., Pfeiffer N., Kirchhoff M., Kopisch-Obuch F.J., van Dijk H., Schilhabel M., Has-ler M., Emrani N. Deciphering the complex nature of bolting time regulation in Beta vulgaris. Theoretical and Applied Genetics, 2017, 130: 1649-1667 (doi: 10.1007/s00122-017-2916-2).
  • Höft N., Dally N., Jung C. Sequence variation in the bolting time regulator BTC 1 changes the life cycle regime in sugar beet. Plant Breed., 2018, 137(3): 412-422 (doi: 10.1111/pbr.12579).
  • Kuroda Y., Takahashi H., Okazaki K., Taguchi K. Molecular variation at BvBTC1 is associated with bolting tolerance in Japanese sugar beet. Euphytica, 2019, 215: 43 (doi: 10.1007/s10681-019-2366-9).
  • Höft N., Dally N., Hasler M., Jung C. Haplotype variation of flowering time genes of sugar beet and its wild relatives and the impact on life cycle regimes. Front. Plant Sci., 2018, 8: 2211 (doi: 10.3389/fpls.2017.02211).
  • Pin P.A., Zhang W., Vogt S.H., Dally N., Büttner B., Schulze-Buxloh G., Jelly N.S., Chia T.Y.P., Mutasa-Göttgens E.S., Dohm J.C., Himmelbauer H., Weisshaar B., Kraus J., Gielen J.J.L., Lommel M., Weyens G., Wahl B., Schechert A., Nilsson O., Jung C., Kraft T., Müller A. The role of a pseudo-response regulator gene in life cycle adaptation and domestication of beet. Current Biology, 2012, 22(12): 1095-1101 (doi: 10.1016/j.cub.2012.04.007).
  • Корниенко А.В. Основы мутационной селекции свеклы. М., 1990.
  • Kornienko A. V., Butorina A.K. Induced mutagenesis in sugar beet (Beta vulgaris L.): obtained results and prospects for use in development of TILLING project. Biology Bulletin Reviews, 2013, 3: 152-160 (doi: 10.1134/S2079086413020059).
  • Hohmann U., Jacobs G., Jung C. An EMS mutagenesis protocol for sugar beet and isolation of non-bolting mutants. Plant Breed., 2005, 124(2): 317-321 (doi: 10.1111/j.1439-0523.2005.01126.x).
  • Frerichmann S.L., Kirchhoff M., Müller A.E., Scheidig A.J., Jung C., Kopisch-Obuch F.J. Eco-TILLING in Beta vulgaris reveals polymorphisms in the FLC-like gene BvFL1that are associ-ated with annuality and winter hardiness. BMC Plant Biol., 2013, 13: 52 (doi: 10.1186/1471-2229-13-52).
  • Yıldırım K., Kavas M., Küçük İ.S., Seçgin Z., Saraç Ç.G. Development of highly efficient re-sistance to Beet Curly Top Iran Virus (Becurtovirus) in sugar beet (B. vulgaris) via CRISPR/Cas9 system. Int. J. Mol. Sci., 2023, 24(7): 6515 (doi: 10.3390/ijms24076515).
Еще
Статья обзорная