Дефензины растений: биологическая роль, механизмы действия и методы анализа

Автор: Кулаева Ольга Алексеевна, Клюкова М.С., Повыдыш М.Н., Тихонович Игорь Анатольевич, Жуков В.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры

Статья в выпуске: 1 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Одной из актуальных проблем современного сельского хозяйства остается потеря урожая вследствие различных биотических и абиотических факторов. У растений существует многокомпонентная система защиты, включающая создание защитных барьеров, активацию реакции гиперчувствительности и синтез антимикробных пептидов, которые представляют собой низкомолекулярные соединения, проявляющие широкий спектр активности против грибов, бактерий и вирусов. К антимикробным пептидам растений относятся несколько групп соединений, в том числе дефензины - богатые цистеином пептиды, состоящие из 45-54 аминокислот. По-видимому, это один из наиболее распространенных классов антимикробных пептидов, которые участвуют в различных защитных реакциях и обнаруживаются у всех живых существ (B.P. Thomma с соавт., 2002). Гены растительных дефензинов экспрессируются в разных органах растений, где их белковые продукты необходимы при биотическом и абиотическом стрессах, то есть эти пептиды крайне важны с точки зрения селекции сортов, устойчивых к патогенам и абиотическим стрессам. Дефензины характеризуются сильной вариабельностью последовательностей, что, вероятно, коррелирует с разнообразием механизмов действия этих пептидов, способных как проникать внутрь клетки патогена, так и индуцировать гибель клетки, оставаясь на ее поверхности (T.M. Shafee с соавт., 2016). Большинство растительных дефензинов обладают антифунгальной, некоторые - антибактериальной активностью, которая может сочетаться с антимикотическими свойствами. Для небольшого числа дефензинов показано участие в обеспечении устойчивости к тяжелым металлам, холодовому стрессу, засухе, засолению и в процессах онтогенеза. Современные методические подходы позволяют проводить эффективный поиск новых форм активности дефензинов, исследуя дикорастущие немодельные растительные объекты. Интенсивное изучение их транскриптомов стало возможным с развитием секвенирования следующего поколения (Next Generation Sequencing). Для корректного аннотирования последовательностей высоковариабельных пептидов небольшого размера в пределах семейства необходимо применять специальные программы, в частности SPADA (Small Peptide Alignment Discovery Application), алгоритм работы которой заключается в проведении множественного выравнивания последовательностей известных представителей генного семейства и построении предсказательной модели для поиска новых членов этого семейства (P. Zhou с соавт., 2013). При анализе большого числа генов, кодирующих дефензины, предсказание активности вновь выявляемых дефензинов и обнаружение консервативных аминокислот также возможно с использованием методов вычислительной биологии. Подход, основанный на множественном выравнивании последовательностей и кластерном анализе, позволяет разделить дефензины на группы со сходной функциональной активностью (N.L. van der Weerden с соавт., 2013). Таким образом, сочетание современных методов молекулярной и вычислительной биологии существенно повышает эффективность изучения этой группы защитных белков.

Еще

Дефензины, пептиды, богатые цистеином, защитные реакции, биотический и абиотический стресс, секвенирование следующего поколения

Короткий адрес: https://sciup.org/142214154

IDR: 142214154   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.1.3rus

Список литературы Дефензины растений: биологическая роль, механизмы действия и методы анализа

  • Goyal R.K., Mattoo A.K. Multitasking antimicrobial peptides in plant development and host defense against biotic/abiotic stress. Plant Sci., 2014, 228: 135-149 ( ) DOI: 10.1016/j.plantsci.2014.05.012
  • Tam J.P., Wang S., Wong K.H., Tan W.L. Antimicrobial peptides from plants. Pharmaceuticals, 2015, 8(4): 711-757 ( ) DOI: 10.3390/ph8040711
  • Egorov T.A., Odintsova T.I. Defense peptides of plant immune system. Russian Journal of Bioorganic Chemistry, 2012, 38(1): 1-9 ( ) DOI: 10.1134/S1068162012010062
  • Thomma B.P., Cammue B.P., Thevissen K. Plant defensins. Planta, 2002, 216(2): 193-202 ( ) DOI: 10.1007/s00425-002-0902-6
  • Stotz H.U., Thomson J., Wang Y. Plant defensins: defense, development and application. Plant Signal. Behav., 2009, 4(11): 1010-1012 ( ) DOI: 10.4161/psb.4.11.9755
  • Комалетдинова Ф.М. Роль растительных дефензинов в многокомпонентной системе защиты растений. Сельскохозяйственная биология, 2009, 5: 8-16.
  • Bruix M., Jimenez M.A., Santoro J., Gonzalez C., Colilla F.J., Mendez E., Rico M. Solution structure of gamma 1-H and gamma 1-P thionins from barley and wheat endosperm determined by proton NMR: a structural motif common to toxic arthropod proteins. Biochemistry, 1993, 32(2): 715-724 ( ) DOI: 10.1021/bi00053a041
  • Fant F., Vranken W., Broekaert W., Borremans F. Determination of the three-dimensional solution structure of Raphanus sativus antifungal protein 1 by 1 H NMR. J. Mol. Biol., 1998, 279(1): 257-270 ( ) DOI: 10.2210/pdb1ayj/pdb
  • Do H.M., Lee S.C., Jung H.W., Sohn K.H., Hwang B.K. Differential expression and in situ localization of a pepper defensin (CADEF1) gene in response to pathogen infection, abiotic elicitors and environmental stresses in Capsicum annuum. Plant Sci., 2004, 166(5): 1297-1305 ( ) DOI: 10.1016/j.plantsci.2004.01.008
  • Huang G.-J., Lai H.-C., Chang Y.-S., Sheu M.-J., Lu T.-L., Huang S.-S., Lin Y.-H. Antimicrobial, dehydroascorbate reductase, and monodehydroascorbate reductase activities of defensin from sweet potato storage roots. J. Agric. Food Chem., 2008, 56(9): 2989-2995 ( ) DOI: 10.1021/jf072994j
  • Lay F.T., Brugliera F., Anderson M.A. Isolation and properties of floral defensins from ornamental tobacco and petunia. Plant Physiol., 2003, 131(3): 1283-1293 ( ) DOI: 10.1104/pp.102.016626
  • Urdangarín M.C., Norero N.S., Broekaert W.F., de la Canal L. A defensin gene expressed in sunflower inflorescence. Plant Physiol. Biochem., 2000, 38(3): 253-258 ( ) DOI: 10.1016/S0981-9428(00)00737-3
  • Maróti G., Downie J.A., Kondorosi É. Plant cysteine-rich peptides that inhibit pathogen growth and control rhizobial differentiation in legume nodules. Curr. Opin. Plant Biol., 2015, 26: 57-63 ( ) DOI: 10.1016/j.pbi.2015.05.031
  • Chiang C.C., Hadwiger L.A. The Fusarium solani-Induced expression of a pea gene family encoding high cysteine content proteins. Mol. Plant-Microbe Interact., 1991, 4(4): 324-331 ( ) DOI: 10.1094/MPMI-4-324
  • Lacerda A., Vasconcelos É.A.R., Pelegrini P.B., Grossi-de-Sa M.F. Antifungal defensins and their role in plant defense. Front. Microbiol., 2014, 5: 116 ( ) DOI: 10.3389/fmicb.2014.00116
  • Franco O.L., Murad A.M., Leite J.R., Mendes P.A., Prates M.V., Bloch C. Identification of a cowpea γ-thionin with bactericidal activity. FEBS J., 2006, 273(15): 3489-3497 ( ) DOI: 10.1111/j.1742-4658.2006.05349.x
  • Zhang Y., Lewis K. Fabatins: new antimicrobial plant peptides. FEMS Microbiol. Lett., 1997, 149(1): 59-64 ( ) DOI: 10.1111/j.1574-6968.1997.tb10308.x
  • Melo F.R., Rigden D.J., Franco O.L., Mello L.V., Ary M.B., Grossi de Sá M.F., Bloch C. Inhibition of trypsin by cowpea thionin: Characterization, molecular modeling, and docking. Proteins: Struct., Funct., Bioinf., 2002, 48(2): 311-319 ( ) DOI: 10.1002/prot.10142
  • Mirouze M., Sels J., Richard O., Czernic P., Loubet S., Jacquier A., François I.E.J.A., Cammue B.P.A., Lebrun M., Berthomieu P., Marquès L. A putative novel role for plant defensins: a defensin from the zinc hyper-accumulating plant, Arabidopsis halleri, confers zinc tolerance. Plant J., 2006, 47(3): 329-342 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-313X.2006.02788.x
  • Gaudet D.A., Laroche A., Frick M., Huel R., Puchalski B. Cold induced expression of plant defensin and lipid transfer protein transcripts in winter wheat. Physiologia Plantarum, 2003, 117(2): 195-205 ( ) DOI: 10.1034/j.1399-3054.2003.00041.x
  • Koike M., Okamoto T., Tsuda S., Imai R. A novel plant defensin-like gene of winter wheat is specifically induced during cold acclimation. BBRC, 2002, 298(1): 46-53 ( ) DOI: 10.1016/S0006-291X(02)02391-4
  • Stolf-Moreira R., Medri M.E., Neumaier N., Lemos N.G., Brogin R.L., Marcelino F.C., De Oliveira M.C.N., Farias J.R.B., Abdelnoor R.V., Nepomuceno A.L. Cloning and quantitative expression analysis of drought-induced genes in soybean. Genet. Mol. Res., 2010, 9(2): 858-867 ( ) DOI: 10.4238/vol9-2gmr701
  • Sui J., Jiang D., Zhang D., Song X., Wang J., Zhao M., Qiao L. The salinity responsive mechanism of a hydroxyproline-tolerant mutant of peanut based on digital gene expression profiling analysis. PloS ONE, 2016, 11(9): e0162556 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0162556
  • Nishiyama R., Le D.T., Watanabe Y., Matsui A., Tanaka M., Seki M., Yamaguchi-Shinozaki K., Shinozaki K., Tran L.S.P. Transcriptome analyses of a salt-tolerant cytokinin-deficient mutant reveal differential regulation of salt stress response by cytokinin deficiency. PLoS ONE, 2012, 7(2): e32124 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0032124
  • Okuda S., Tsutsui H., Shiina K., Sprunck S., Takeuchi H., Yui R., Kasahara R.D., Hamamura Y., Mizukami A., Susaki D., Kawano N., Sakakibara T., Namoki S., Itoh K., Otsuka K., Matsuzaki M., Nozaki H., Kuroiwa T., Nakano A., Kanaoka M.M., Dresselhaus T., Sasaki N., Higashiyama T. Defensin-like polypeptide LUREs are pollen tube attractants secreted from synergid cells. Nature, 2009, 458(7236): 357-361 ( ) DOI: 10.1038/nature07882
  • Shafee T.M., Lay F.T., Hulett M.D., Anderson M.A. The defensins consist of two independent, convergent protein superfamilies. Mol. Biol. Evol., 2016, 33(9): 2345-2356 ( ) DOI: 10.1093/molbev/msw106
  • Almeida M.S., Cabral K.M., Kurtenbach E., Almeida F.C., Valente A.P. Solution structure of Pisum sativum defensin 1 by high resolution NMR: plant defensins, identical backbone with different mechanisms of action. J. Mol. Biol., 2002, 315(4): 749-757 ( ) DOI: 10.1006/jmbi.2001.5252
  • Broekaert W.F., Terras F.R., Cammue B.P., Osborn R.W. Plant defensins: novel antimicrobial peptides as components of the host defense system. Plant Physiol., 1995, 108(4): 1353-1358 ( ) DOI: 10.1104/pp.108.4.1353
  • van der Weerden N.L., Anderson M.A. Plant defensins: common fold, multiple functions. Fungal Biol. Rev., 2013, 26(4): 121-131 ( ) DOI: 10.1016/j.fbr.2012.08.004
  • Méndez E., Rocher A., Calero M., Girbés T., Citores L., Soriano F. Primary structure of omega-hordothionin, a member of a novel family of thionins from barley endosperm, and its inhibition of protein synthesis in eukaryotic and prokaryotic cell-free systems. Eur. J. Biochem., 1996, 239(1): 67-73 ( ) DOI: 10.1111/j.1432-1033.1996.0067u.x
  • Gao A.-G., Hakimi S.M., Mittanck C.A., Wu Y., Woerner B.M., Stark D.M., Shah D.M., Liang J., Rommens C.M. Fungal pathogen protection in potato by expression of a plant defensin peptide. Nat. Biotechnol., 2000, 18(12): 1307-1310 ( ) DOI: 10.1038/82436
  • Terras F.R., Eggermont K., Kovaleva V., Raikhel N.V., Osborn R.W., Kester A., Rees S.B., Torrekens S., Van Leuven F., Vanderleyden J. Small cysteine-rich antifungal proteins from radish: their role in host defense. Plant Cell, 1995, 7(5): 573-588 ( ) DOI: 10.1105/tpc.7.5.573
  • Spelbrink R.G., Dilmac N., Allen A., Smith T.J., Shah D.M., Hockerman G.H. Differential antifungal and calcium channel-blocking activity among structurally related plant defensins. Plant Physiol., 2004, 135(4): 2055-2067 ( ) DOI: 10.1104/pp.104.040873
  • Janssen B.J., Schirra H.J., Lay F.T., Anderson M.A., Craik D.J. Structure of Petunia hybrida defensin 1, a novel plant defensin with five disulfide bonds. Biochemistry, 2003, 42(27): 8214-8222 ( ) DOI: 10.1021/bi034379o
  • Lobo D.S., Pereira I.B., Fragel-Madeira L., Medeiros L.N., Cabral L.M., Faria J., Bellio M., Campos R.C., Linden R., Kurtenbach E. Antifungal Pisum sativum defensin 1 interacts with Neurospora crassa cyclin F related to the cell cycle. Biochemistry, 2007, 46(4): 987-996 ( ) DOI: 10.1021/bi061441j
  • Stolf-Moreira R., Medri M.E., Neumaier N., Lemos N.G., Pimenta J.A., Tobita S., Brogin R.L., Marcelino-Guimarães F.C., Oliveira M.C.N., Farias J.R.B., Abdelnoor R.V., Nepomuceno A.L. Soybean physiology and gene expression during drought. Genet. Mol. Res., 2010, 9(4): 1946-1956 ( ) DOI: 10.4238/vol9-4gmr851
  • Mith O., Benhamdi A., Castillo T., Berge M., MacDiarmid C.W., Steffen J., Eide D.J., Perrier V., Subileau M., Gosti F., Berthomieu P., Marques L. The antifungal plant defensin AhPDF1.1b is a beneficial factor involved in adaptive response to zinc overload when it is expressed in yeast cells. MicrobiologyOpen, 2015, 4(3): 409-422 ( ) DOI: 10.1002/mbo3.248
  • Oomen R.J., Séveno-Carpentier E., Ricodeau N., Bournaud C., Con-éjéro G., Paris N., Berthomieu P., Marquès L. Plant defensin AhPDF1.1 is not secreted in leaves but it accumulates in intracellular compartments. New Phytol., 2011, 192(1): 140-150 ( ) DOI: 10.1111/j.1469-8137.2011.03792.x
  • Shahzad Z., Ranwez V., Fizames C., Marquès L., Martret B., Alassimone J., Godé C., Lacombe E., Castillo T., Saumitou-Laprade P., Berthomieu P., Gosti F. Plant Defensin type 1 (PDF1): protein promiscuity and expression variation within the Arabidopsis genus shed light on zinc tolerance acquisition in Arabidopsis halleri. New Phytol., 2013, 200(3): 820-833 ( ) DOI: 10.1111/nph.12396
  • Nguyen N.N., Ranwez V., Vile D., Soulié M.-C., Dellagi A., Expert D., Gosti F. Evolutionary tinkering of the expression of PDF1s suggests their joint effect on zinc tolerance and the response to pathogen attack. Front. Plant Sci., 2014, 5: 70 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2014.00070
  • Ahmed N.U., Park J.-I., Jung H.-J., Seo M.-S., Kumar T.S., Lee I.-H., Nou I.-S. Identification and characterization of stress resistance related genes of Brassica rapa. Biotechnol. Lett., 2012, 34(5): 979-987 ( ) DOI: 10.1007/s10529-012-0860-4
  • Cabot C., Gallego B., Martos S., Barceló J., Poschenrieder C. Signal cross talk in Arabidopsis exposed to cadmium, silicon, and Botrytis cinerea. Planta, 2013, 237(1): 337-349 ( ) DOI: 10.1007/s00425-012-1779-7
  • Bahramnejad B., Erickson L.R., Chuthamat A., Goodwin P.H. Differential expression of eight defensin genes of N. benthamiana following biotic stress, wounding, ethylene, and benzothiadiazole treatments. Plant Cell Rep., 2009, 28(4): 703-717 ( ) DOI: 10.1007/s00299-009-0672-8
  • Wilmes M., Cammue B.P., Sahl H.-G., Thevissen K. Antibiotic activities of host defense peptides: more to it than lipid bilayer perturbation. Nat. Prod. Rep., 2011, 28(8): 1350-1358 ( ) DOI: 10.1039/c1np00022e
  • Poon I.K., Baxter A.A., Lay F.T., Mills G.D., Adda C.G., Payne J.A., Phan T.K., Ryan G.F., White J.A., Veneer P.K., van der Weerden N., Anderson M.A., Kvansakul M., Hulett M.D. Phosphoinositide-mediated oligomerization of a defensin induces cell lysis. Elife, 2014, 3: e01808 ( ) DOI: 10.7554/eLife.01808
  • Terras F.R., Schoofs H.M., De Bolle M.F., Van Leuven F., Rees S.B., Van-derleyden J., Cammue B.P., Broekaert W.F. Analysis of two novel classes of plant antifungal proteins from radish (Raphanus sativus L.) seeds. J. Biol. Chem., 1992, 267(22): 15301-15309.
  • Thevissen K., Cammue B.P., Lemaire K., Winderickx J., Dickson R.C., Lester R.L., Ferket K.K., Van Even F., Parret A.H., Broekaert W.F. A gene encoding a sphingolipid biosynthesis enzyme determines the sensitivity of Saccharomyces cerevisiae to an antifungal plant defensin from dahlia (Dahlia merckii). PNAS, 2000, 97(17): 9531-9536 ( ) DOI: 10.1073/pnas.160077797
  • Thevissen K., Warnecke D.C., François I.E., Leipelt M., Heinz E., Ott C., Zähringer U., Thomma B.P., Ferket K.K., Cammue B.P. Defensins from insects and plants interact with fungal glucosylceramides. J. Biol. Chem., 2004, 279(6): 3900-3905 ( ) DOI: 10.1074/jbc.M311165200
  • Thevissen K., Ferket K.K., François I.E., Cammue B.P. Interactions of antifungal plant defensins with fungal membrane components. Peptides, 2003, 24(11): 1705-1712 ( ) DOI: 10.1016/j.peptides.2003.09.014
  • Thevissen K., de Mello Tavares P., Xu D., Blankenship J., Vandenbosch D., Idkowiak-Baldys J., Govaert G., Bink A., Rozental S., de Groot P.W.J., Davis T.R., Kumamoto C.A., Vargas G., Nimrichter L., Coenye T., Mitchell A., Roemer T., Hannun Y.A., Cammue B.P.A. The plant defensin RsAFP2 induces cell wall stress, septin mislocalization and accumulation of ceramides in Candida albicans. Mol. Microbiol., 2012, 84(1): 166-180 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2958.2012.08017.x
  • Ramamoorthy V., Cahoon E.B., Li J., Thokala M., Minto R.E., Shah D.M. Glucosylceramide synthase is essential for alfalfa defensin-mediated growth inhibition but not for pathogenicity of Fusarium graminearum. Mol. Microbiol., 2007, 66(3): 771-786 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2958.2007.05955.x
  • Vriens K., Cammue B., Thevissen K. Antifungal plant defensins: mechanisms of action and production. Molecules, 2014, 19(8): 12280-12303 ( ) DOI: 10.3390/molecules190812280
  • Sagaram U.S., El-Mounadi K., Buchko G.W., Berg H.R., Kaur J., Pandurangi R.S., Smith T.J., Shah D.M. Structural and functional studies of a phosphatidic acid-binding antifungal plant defensin MtDef4: identification of an RGFRRR motif governing fungal cell entry. PLoS ONE, 2013, 8(12): e82485 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0082485
  • Aerts A.M., François I.E., Bammens L., Cammue B., Smets B., Winderickx J., Accardo S., De Vos D.E., Thevissen K. Level of M (IP) 2C sphingolipid affects plant defensin sensitivity, oxidative stress resistance and chronological life-span in yeast. FEBS Lett., 2006, 580(7): 1903-1907 ( ) DOI: 10.1016/j.febslet.2006.02.061
  • van der Weerden N.L., Lay F.T., Anderson M.A. The plant defensin, NaD1, enters the cytoplasm of Fusarium oxysporum hyphae. J. Biol. Chem., 2008, 283(21): 14445-14452 ( ) DOI: 10.1074/jbc.M709867200
  • Mello E.O., Ribeiro S.F., Carvalho A.O., Santos I.S., Da Cunha M., Santa-Catarina C., Gomes V.M. Antifungal activity of PvD1 defensin involves plasma membrane permeabilization, inhibition of medium acidification, and induction of ROS in fungi cells. Curr. Microbiol., 2011, 62(4): 1209-1217 ( ) DOI: 10.1007/s00284-010-9847-3
  • Aerts A.M., Bammens L., Govaert G., Carmona-Gutierrez D., Madeo F., Cammue B., Thevissen K. The antifungal plant defensin HsAFP1 from Heuchera sanguinea induces apoptosis in Candida albicans. Front. Microbiol., 2011, 2: 47 ( ) DOI: 10.3389/fmicb.2011.00047
  • Zhukov V.A., Kulaeva O.A., Zhernakov A.I., Tikhonovich I.A. «Next generation sequencing» for studying transcriptome profiles of tissues and organs of garden pea (Pisum sativum L.) (review). Agricultural Biology, 2015, 50(3): 278-287 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.3.278eng
  • Zhukov V.A., Zhernakov A.I., Kulaeva O.A., Ershov N.I., Borisov A.Y., Tik-honovich I.A. De novo assembly of the pea (Pisum sativum L.) nodule transcriptome. Int. J. Genomics, 2015, 2015: 695947 ( ) DOI: 10.1155/2015/695947
  • Conesa A., Madrigal P., Tarazona S., Gomez-Cabrero D., Cervera A., McPherson A., Szcześniak M.W., Gaffney D.J., Elo L.L., Zhang X., Mortazavi A. A survey of best practices for RNA-seq data analysis. Genome Biology, 2016, 17: 13 ( ) DOI: 10.1186/s13059-016-0881-8
  • Zhou P., Silverstein K.A., Gao L., Walton J.D., Nallu S., Guhlin J., Young N.D. Detecting small plant peptides using SPADA (small peptide alignment discovery application). BMC Bioinformatics, 2013, 14: 335 ( ) DOI: 10.1186/1471-2105-14-335
  • Shafee T.M., Robinson A.J., Weerden N., Anderson M.A. Structural homology guided alignment of cysteine rich proteins. SpringerPlus, 2016, 5: 27 ( ) DOI: 10.1186/s40064-015-1609-z
  • Alves-Carvalho S., Aubert G., Carrere S., Cruaud C., Brochot A.-L., Jacquin F., Klein A., Martin C., Boucherot K., Kreplak J., da Silva C., Moreau S., Gamas P., Wincker P., Gouzy J., Burstin J. Full-length de novo assembly of RNA-seq data in pea (Pisum sativum L.) provides a gene expression atlas and gives insights into root nodulation in this species. Plant J., 2015, 84(1): 1-19 ( ) DOI: 10.1111/tpj.12967
  • He J., Benedito V.A., Wang M., Murray J.D., Zhao P.X., Tang Y., Udvardi M.K. The Medicago truncatula gene expression atlas web server. BMC Bioinformatics, 2009, 10: 441 ( ) DOI: 10.1186/1471-2105-10-441
Еще
Статья обзорная