Действие наночастиц Al2O3 на почвенный микробиоценоз, состояние антиоксидантной системы и микрофлору кишечника красного калифорнийского червя (Eisenia fоetida)

Автор: Яушева Е.В., Сизова Е.А., Гавриш И.А., Лебедев С.В., Каюмов Ф.Г.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Биоэффекты металлов и их форм

Статья в выпуске: 1 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Обсуждение возможности применения наноматериалов в агротехнологиях ограничивается тем, что число работ по комплексной оценке биологических рисков при использовании наногербецидов и наноудобрений и изучению воздействия наноматериалов, в частности наночастиц (НЧ) металлов, на почвобионтов невелико. Мы сравнили влияние наночастиц Al2O3 на микрофлору почвы и кишечника красного калифорнийского червя ( Eisenia fоetida ), адаптационные способности этого почвобионта и особенности вермикомпостирования. Предварительный анализ биологической активности НЧ Al2O3 in vitro проводили в тесте ингибирования бактериальной биолюминесценции. Из особей используемого биоиндикаторного вида, имеющих одинаковую массу, сформировали пять групп (в каждой n = 10). При культивировании в I, II, III и IV группах в субстрат добавляли НЧ Al2O3 в дозах соответственно 50, 100, 300, 3000 мг/кг; V группа служила контролем (НЧ в почву не вносили). На 14-е сут определяли антиоксидантную активность каталазы (КТ), супероксиддисмутазы (СОД) и оценивали численность микрофлоры кишечника червей, а также численность микробов в почве. Для определения общей численности микроорганизмов проводили посев на мясо-пептонный агар. Микроорганизмы, использующие минеральные формы азота, выделяли на крахмал-аммиачном агаре (КАА), микроскопические грибы - на среде Чапека, азотфиксаторы - на среде Эшби, целлюлозолитические микроорганизмы - на среде Гетчинсона. При максимальной дозировке вносимых в почву наночастиц оксида алюминия отмечалось увеличение смертности червей (до 20 %). В результате воздействия исследуемых наночастиц происходил рост активности СОД и КТ. При повышении содержания НЧ Al2O3 с 50 до 3000 мг/кг наблюдалось снижение общего числа микроорганизмов в почве: без вермикомпостирования - на 61,7-67,6 %, с вермикомпостированием - на 55,6-61,3 %. Количество грибов в почве в I, II, III и IV группах снизилось соответственно на 42,8; 52,4; 61,9 и 76,2 % относительно контроля; численность азотфиксирующих бактерий - на 64,3; 77,9; 78,6 и 85,7 %, число бактерий, культивируемых на КАА, - на 22,7; 38,6; 84,1 и 86,4 %. В I группе число целлюлозолитических бактерий в почве увеличилось на 6,9 %. Во II, III и IV группах, напротив, отмечали снижение их количества (на 16,7; 12,5 и 25,0 %). В кишечнике E. foetida с ростом содержания НЧ Al2O3 в грунте с 50 до 3000 г/кг также происходило снижение общего числа микроорганизмов - на 9,7-43,2 %. Численность грибов уменьшилась в I, II, III и IV группах соответственно на 18,0; 20,0; 39,0 и 40,0 % относительно контроля, количество азотфиксирующих бактерий - на 16,0; 60,0; 78,8 и 80,0 %. Число целлюлозолитических бактерий в кишечнике E. foetida увеличивалось под действием минимальных дозировок наночастиц (на 16,0 %), тогда как во II, III и IV группах оно снижалось (на 8,0; 32,0 и 40,0 %). Численность бактерий, культивируемых на КАА, уменьшалась в кишечнике особей из I, II, III и IV групп - соответственно на 13,3; 46,7; 60,0 и 73,3 %. Таким образом, имело место дозозависимое действие наночастиц и постепенное развитие бактерицидного эффекта в отношении почвенной и кишечной микрофлоры при возрастании количества НЧ Al2O3 в почве. Обнаруженное негативное влияние НЧ Al2O3 на почвенный биоценоз проявилось в его обеднении, что ведет к деградации почв и снижению их плодородия. Полученные данные подтверждают необходимость комплексной оценки биотоксичности НЧ в разных средах обитания. По показателям антиоксидантной системы установлены адаптационные способности E. fоetida на фоне внесения в почву НЧ Al2O3.

Еще

Наночастицы, eisenia fоetida, каталаза, супероксиддисмутаза, микроорганизмы

Короткий адрес: https://sciup.org/142214010

IDR: 142214010   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.1.191rus

Список литературы Действие наночастиц Al2O3 на почвенный микробиоценоз, состояние антиоксидантной системы и микрофлору кишечника красного калифорнийского червя (Eisenia fоetida)

  • Yeo J., Kim G., Hong S., Kim M.S., Kim D., Lee J., Ko S.H. Flexible supercapacitor fabrication by room temperature rapid laser processing of roll-to-roll printed metal nanoparticle ink for wearable electronics application. Journal of Power Sources, 2014, 246: 562-568 ( ) DOI: 10.1016/j.jpowsour.2013.08.012
  • Shahravan A., Desai T., Matsoukas T. Passivation of aluminum nanoparticles by plasma-enhanced chemical vapor deposition for energetic nanomaterials. ACS Applied Materials & Interfaces, 2014, 10(6): 7942-7947 ( ) DOI: 10.1021/am5012707
  • Luska K.L., Julis J., Stavitski E., Zakharov D.N., Adams A., Leitner W. Bifunctional nanoparticle-SILP catalysts (NPs@SILP) for the selective deoxygenation of biomass substrates. Chemical Science, 2014, 12(5): 4895-4905 ( ) DOI: 10.1039/C4SC02033B
  • Machado S., Grosso J.P., Nouws H.P.A., Albergaria J.T., Delerue-Matos C. Utilization of food industry wastes for the production of zero-valent iron nanoparticles. Science of the Total Environment, 2014, 496: 233-240 ( ) DOI: 10.1016/j.scitotenv.2014.07.058
  • Ju C., Mo R., Xue J., Zhang L., Zhao Z., Xue L., Zhang C. Sequential intra-intercellular nanoparticle delivery system for deep tumor penetration. Angew. Chem. Int. Ed., 2014, 53: 6253-6258 ( ) DOI: 10.1002/anie.201311227
  • Ansari M.A., Khan H.M., Khan A.A., Sultan A., Azam A. Characterization of clinical strains of MSSA, MRSA and MRSE isolated from skin and soft tissue infections and the antibacterial activity of ZnO nanoparticles. World J. Microbiol. Biotechnol., 2012, 28(4): 1605-1613 ( ) DOI: 10.1007/s11274-011-0966-1
  • Pramanik A., Laha D., Bhattacharya D., Pramanik P., Karmakar P. A novel study of antibacterial activity of copper iodide nanoparticle mediated by DNA and membrane damage. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2012, 96: 50-55 ( ) DOI: 10.1016/j.colsurfb.2012.03.021
  • Rai M., Ingle A.P., Birla S., Yadav A., Santos C.A.D. Strategic role of selected noble metal nanoparticles in medicine. Critical Reviews in Microbiology, 2016, 42(5): 696-719 ( ) DOI: 10.3109/1040841x.2015.1018131
  • Manimaran M. A review on nanotechnology and its implications in agriculture and food industry. Asian Journal of Plant Science and Research, 2015, 5(7): 13-15.
  • Mishra S., Singh H.B. Biosynthesized silver nanoparticles as a nanoweapon against phytopathogens: exploring their scope and potential in agriculture. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2015, 99(3): 1097-1107 ( ) DOI: 10.1007/s00253-014-6296-0
  • Li X., Yang Y., Gao B., Zhang M. Stimulation of peanut seedling development and growth by zero-valent iron nanoparticles at low concentrations. PLoS ONE, 2015, 10(4): 1-12 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0122884
  • Новицкая Н.В., Джемесюк А.В. Урожайность сои в зависимости от элементов технологии на черноземах типичных лесостепи Украины. Вестник Алтайского государственного аграрного университета, 2015, 127(5): 127.
  • Зинченко В.А. Химическая защита растений: средства, технология и экологическая безопасность. М., 2005.
  • Шугалей И.В., Гарабаджиу А.В., Илюшин М.А., Судариков А.М. Некоторые аспекты влияния алюминия и его соединений на живые организмы. Экологическая химия, 2012, 21(3): 172-186.
  • Лущаева И.В., Моргалев С.Н. Изучение воздействия наночастиц TiO2 и Al2O3 на бактерии Pseudomonas fluorescens и Bacillus mucilaginosus. Вестник Томского государственного университета. Биология, 2009, 8(4): 97-103.
  • Heckmann L.-H., Besenbacher F., Janeck J., Hovgaard M.B., Sutherland D.S., Autrup H. Limit-test toxicity screening of selected inorganic nanoparticles to the earthworm Eisenia fetida. Ecotoxicology, 2011, 20: 226-233 ( ) DOI: 10.1007/s10646-010-0574-0
  • Sadiq I.M., Pakrashi S., Chandrasekaran N., Mukherjee A. Studies on toxicity of aluminum oxide (Al2O3) nanoparticles to microalgae species: Scenedesmus sp. and Chlorella sp. J. Nanopart. Res., 2011, 13: 3287-3299 ( ) DOI: 10.1007/s11051-011-0243-0
  • Azmat H., Javed M., Jabeen G. Acute toxicity of aluminium to the fish (Catla catla, Labeo rohita and Cirrhina mrigala). Pak. Vet. J., 2012, 32(1): 85-87.
  • Silva S. Aluminium toxicity targets in plants. Journal of Botany, 2012, 2012: Article ID 219462 ( ) DOI: 10.1155/2012/219462
  • Dovic M., Lestan D. Eisenia fetida avoidance behavior as a tool for assessing the efficiency of remediation of Pb, Zn and Cd polluted soil. Environ. Pollut., 2010, 158(8): 2766-2772 ( ) DOI: 10.1016/j.envpol.2010.04.015
  • Saez G., Aye M., Meo M., Aimé A., Bestel I., Barthélémy P., Giorgio C. Genotoxic and oxidative responses in coelomocytes of Eisenia fetida and Hediste diversicolor exposed to lipid-coated CdSe/ZnS quantum dots and CdCl2. Environ. Toxicol., 2015, 30(8): 918-926 ( ) DOI: 10.1002/tox.21966
  • Edwards C.A., Bohlen P.J. Biology and ecology of earthworms. V. 3. Springer Science & Business Media, 1996.
  • Vlčková K., Hofman J. A comparison of POPs bioaccumulation in Eisenia fetida in natural and artificial soils and the effects of aging. Environ. Pollut., 2012, 160: 49-56 ( ) DOI: 10.1016/j.envpol.2011.08.049
  • Методы почвенной микробиологии и биохимии/Под ред. Д.Г. Звягинцева. М., 1991.
  • Захарова Н.Г., Алимова Ф.К., Егоров С.Ю. Микробиологический мониторинг почв. Казань, 2005.
  • Fajardo C., Saccà M.L., Costa G., Nande M., Martin M. Impact of Ag and Al2O3 nanoparticles on soil organisms: in vitro and soil experiments. Science of The Total Environment, 2014, 473-474: 254-261 ( ) DOI: 10.1016/j.scitotenv.2013.12.043
  • Sadiq R., Khan Q.M., Mobeen A., Hashmat A.J. In vitro toxicological assessment of iron oxide, aluminium oxide and copper nanoparticles in prokaryotic and eukaryotic cell types. Drug. Chem. Toxicol., 2015, 38(2): 152-161 ( ) DOI: 10.3109/01480545.2014.919584
  • Tilston E.L., Collins C.D., Mitchell G.R., Princivalle J., Shaw L.J. Nanoscale zerovalent iron alters soil bacterial community structure and inhibits chloroaromatic biodegradation potential in Aroclor 1242-contaminated soil. Environ. Pollut., 2013, 173: 38-46 ( ) DOI: 10.1016/j.envpol.2012.09.018
  • Ko K.S., Kong I.C. Toxic effects of nanoparticles on bioluminescence activity, seed germination, and gene mutation. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2014, 98(7): 3295-3303 ( ) DOI: 10.1007/s00253-013-5404-x
  • Ismail R.A., Sulaiman G.M., Abdulrahman S.A., Marzoog T.R. Antibacterial activity of magnetic iron oxide nanoparticles synthesized by laser ablation in liquid. Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl., 2015, 53: 286-297 ( ) DOI: 10.1016/j.msec.2015.04.047
  • Liang H.Y., Li Y.S., Sun J. Effect of aluminum ion on activities of important antioxidant enzymes from earthworms, Eisenia andrei. Journal of Shanghai Jiaotong University (Agricultural Science), 2007, 25: 551-555.
  • Richards K.D., Schott E.J., Sharma Y.K., Davis K.R., Gardner R.C. Aluminum induces oxidative stress genes in Arabidopsis thaliana. Plant Physiol., 2016, 116: 409-418 ( ) DOI: 10.1104/pp.116.1.409
  • Yoon C., Koppula S., Yoo S., Yum M., Kim J., Lee J., Song M. Rhus javanica Linn protects against hydrogen peroxide-induced toxicity in human Chang liver cells via attenuation of oxidative stress and apoptosis signaling. Mol. Med. Rep., 2016, 13(1): 1019-1025 ( ) DOI: 10.3892/mmr.2015.4603
  • Sun W., Tai T.Y., Lin Y.S. Effect of monosultap on protein content. SOD and AChE activity of Eisenia foetida under two different temperatures. J. Agro-Environ. Sci., 2007, 26: 1816-1821.
  • Kunwar A., Priyadarsini K.I. Free radicals, oxidative stress and importance of antioxidants in human health. Journal of Medical and Allied Sciences, 2011, 1(2): 53-60.
  • Shinde A., Ganu J., Naik P. Effect of free radicals & antioxidants on oxidative stress: a review. Journal of Dental and Allied Sciences, 2012, 1(2): 63-66.
  • Ghosh S., Mashayekhi H., Pan B., Bhowmik P., Xing B. Colloidal behavior of aluminum oxide nanoparticles as affected by pH and natural organic matter. Langmuir, 2008, 24(21): 12385-12391 ( ) DOI: 10.1021/la802015f
  • Tourinho P.S., van Gestel C.A., Lofts S., Svendsen C., Soares A.M., Loureiro S. Metal-based nanoparticles in soil: fate, behavior, and effects on soil invertebrates. Environ. Toxicol. Chem., 2012, 31(8): 1679-1692 ( ) DOI: 10.1002/etc.1880
  • Fang T., Watson J., Goodman J., Dimkpa C.O., Martineau N., Das S., McLean J.E., Britt D.W., Anderson A.J. Does doping with aluminum alter the effects of ZnO nanoparticles on the metabolism of soil pseudomonads? Microbiol. Res., 2013, 168(2): 91-98 ( ) DOI: 10.1016/j.micres.2012.09.001
  • Pawlett M., Ritz K., Dorey R.A., Rocks S., Ramsden J., Harris J.A. The impact of zero-valent iron nanoparticles upon soil microbial communities is context dependent. Environ. Sci. Pollut. Res., 2013, 2: 1041-1049 ( ) DOI: 10.1007/s11356-012-1196-2
  • Мынбаева Б.Н. Популяционная структура микрофлоры почв г. Алматы при загрязнении их тяжелыми металлами. Вестник Башкирского университета, 2012, 3: 1282-1284.
  • Li H., Chen Q., Zhao J., Urmila K. Enhancing the antimicrobial activity of natural extraction using the synthetic ultrasmall metal nanoparticles. Scientific Reports, 2015, 5: Article number 11033 ( ) DOI: 10.1038/srep11033
  • Burke D.J., Pietrasiak N., Situ S.F., Abenojar E.C., Porche M., Kraj P., Lakliang Y., Samia A.C. Iron oxide and titanium dioxide nanoparticle effects on plant performance and root associated microbes. Int. J. Mol. Sci., 2015, 16(10): 23630-23650 ( ) DOI: 10.3390/ijms161023630
  • Бызов Б.А., Нечитайло Т.Ю., Бумажкин Б.К., Кураков А.В., Голышин П.Н., Звягинцев Д.Г. Культивируемые микроорганизмы из пищеварительного тракта дождевых червей. Микробиология, 2009, 78(3): 404-413.
Еще
Статья научная