Действие светодиодного облучения разного спектрального состава на фотосинтетический аппарат растений картофеля (Solanum tuberosum L.) в культуре in vitro

Автор: Мартиросян Ю.Ц., Диловарова Т.А., Мартиросян В.В., Креславский В.Д., Кособрюхов А.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Фотосинтез и продуктивность

Статья в выпуске: 5 т.51, 2016 года.

Бесплатный доступ

Размножение в культуре in vitro - важный этап при получении оздоровленного посадочного материала картофеля. Различный спектр облучения может быть использован для регулирования роста и морфогенеза у проростков картофеля ( Solanum tuberosum L.) in vitro. Мы исследовали влияние светодиодных источников света (СД), различающихся по спектральному составу излучения, на ростовые процессы растений картофеля сорта Агрия в культуре in vitro и функциональные параметры фотосинтетического аппарата. Источниками освещения служили светодиодные облучатели («ООО Фокус», Россия) (СД) красного (КС, λ = 635 нм при полуширине полосы излучения ППИ 45 нм), синего (СС, λ = 463 нм, ППИ 23 нм), зеленого (ЗС, λ = 521 нм, ППИ 38 нм) и белого света (БС, λ = 400-730 нм) с интенсивностью облучения на уровне растений 60-65 мкмоль квантовŸм-2Ÿс-1. Часть растений помещали под белые люминесцентные лампы («OSRAM AG», Германия) при той же интенсивности света. Через 28 сут измеряли площадь листьев, высоту растений, учитывали сухую биомассу, определяли скорость СО2-газообмена, а также измеряли параметры переменной флуоресценции хлорофилла. Наибольшее накопление биомассы отмечали при облучении растений люминесцентными лампами, несколько меньшее - при использовании светодиодов белого света. По сравнению с СД белого света действие СС, ЗС и КС приводило к снижению накопления биомассы растениями соответственно на 49,5, 75,6 и 67,5 %. Наблюдаемые изменения были связаны с более высокой активностью фотосинтетического аппарата растений, выращиваемых при облучении светодиодами БС и СС. Скорость фотосинтеза единицы листовой поверхности у этих растений была выше по сравнению с выращиваемыми под СД ЗС и КС. Эффективный квантовый выход ФС II у исследованных растений менялся незначительно (от 0,47 до 0,53), при этом более высокие значения отмечали при использовании люминесцентных ламп и СД белого и зеленого света. Скорость электронного транспорта (ЕТР) и коэффициент нефотохимического тушения (NPQ) менялись подобным образом в зависимости от условий выращивания растений. В условиях, когда скорость фотосинтеза не была лимитирована по СО2, поглощение углекислоты листьями снижалось в ряду люминесцентные лампы > белые СД > красные СД > синие СД > зеленые СД. Максимальная скорость карбоксилирования и большая эффективность реакции наблюдались при облучении растений люминесцентным светом и СД белого света. При облучении СД СС, КС и, особенно, ЗС скорость карбоксилирования снижалась до 77,9; 67,9 и 11,1 % от максимальных значений. Эффективность карбоксилирования резко снижалась при СД КС и ЗС до 37,5 % и 6,7% от максимума. Скорость электронного транспорта в вариантах люминесцентные лампы, БС, КС, СС, ЗС составила соответственно 100; 97,3; 75,1; 68,0; 20,8 %. Одновременно наблюдалось снижение скорости утилизации триозофосфатов до 88,9; 48,7; 28,2; 9,4 % от величины, наблюдаемой при люминесцентном освещении (100 %). Таким образом, в условиях низкой интенсивности света, независимо от его спектрального состава и типа облучателя, активность световых реакций фотосинтеза существенно не изменяется, а наблюдаемые различия в накоплении сухого вещества растениями обусловлены процессами, связанными с активностью реакций темновой фазы фотосинтеза, а также со снижением устьичной проводимости. Полученные результаты позволяют подойти к выяснению влияния разных монохроматических спектров светодиодных облучателей на функционирование фотосинтетического аппарата для обоснования их применения при выращивании растений.

Еще

Картофель, рост, фотосинтез, светодиодные облучатели, фоторецепторы

Короткий адрес: https://sciup.org/142213971

IDR: 142213971   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2016.5.680rus

Список литературы Действие светодиодного облучения разного спектрального состава на фотосинтетический аппарат растений картофеля (Solanum tuberosum L.) в культуре in vitro

  • Aksenova N.P., Konstantinova T.N., Chailakhyan M.Kh. Morphogenetic effects of blue and red light during exposure of overground and underground organs of potato in culture in vitro. Doklady Botanical Sciences, 1989, 305: 508-512.
  • Aksenova N.P., Konstantinova T.N., Sergeeva L.I., Machackova I., Golyanovskayua S.A. Morphogenesis of potato plants in vitro. I. Effect of light quality and hormones. J. Plant Growth Reg., 1994, 13: 143-146 ( ) DOI: 10.1007/BF00196378
  • Seabrook J.E.A., Douglass L.K. Prevention of stem growth inhibition and alleviation of intumescence formation in potato plantlets in vitro by yellow filters. Am. J. Potato Res., 1998, 75: 219-224 ( ) DOI: 10.1007/BF02854216
  • Seabrook J.E.A. Light effects on the growth and morphogenesis of potato (Solanum tuberosum L.) in vitro: a review. Am. J. Potato Res., 2005, 82: 353-367 ( ) DOI: 10.1007/BF02871966
  • Charles G., Rossignol L., Rossignol M. Environmental effects on potato plants in vitro. J. Plant Physiol., 1992, 139: 708-713 ( ) DOI: 0.1016/S0176-1617(11)81715-3
  • Jao R.C., Fang W. Growth of potato plantlets in vitro is different when provided concurrent versus alternating blue and red light photoperiods. Hort. Sci., 2004, 39: 380-382.
  • Kim S.J., Hahn E.J., Heo J.W., Paek K.Y. Effects of LEDs on net photosynthetic rate, growth and leaf stomata of chrysanthemum plantlets in vitro. Hort. Sci., 2004, 101: 143-151.
  • Ohashi-Kaneko K., Takase M., Kon N., Fujiwara K., Kurata K. Effect of light quality on growth and vegetable quality in leaf lettuce, spinach and komatsuna. Environ. Control Biol., 2007, 45: 189-198 ( ) DOI: 10.2525/ecb.45.189
  • Yorio N.C., Goins G.D., Kagie H.R., Wheeler R.M., Sager J.C. Improving spinach, radish, and lettuce growth under red light-emitting diodes (LEDs) with blue light supplementation. Hort. Sci., 2001, 36: 380-383.
  • Kim H.H., Goins G.D., Wheeler R.M., Sager J.C. Green-light supplementation for enhanced lettuce growth under red-and blue-light-emitting diodes. Hort. Sci., 2004, 39: 1617-1622.
  • Kosobryukhov A.A., Kreslavski V.D., Khramov R.N., Bratkova L.R., Shchelokov R.N. Influence of additional low intensity luminescent radiation on growth and photosynthesis of plants. Biotronics, 2000, 29: 23-31.
  • Тараканов И.Г., Яковлева О.С. Влияние качества света на физиологические особенности и продукционный процесс базилика эвгенольного (Ocimum gratissimum. L.). В сб.: Физиолого-биохимические основы продукционного процесса у культивируемых растений. Саратов, 2010: 95-97.
  • Kreslavski V.D., Lyubimov V.Y., Shirshikova G.N., Shmarev A.N., Kosobryukhov A.A., Schmitt F.J., Friedrich T., Allakhverdiev S.I. Preillumination of lettuce seedlings with red light enhances the resistance of photosynthetic apparatus to UV-A. J. Photochem. Photobiol. B Biol., 2013, 122: 1-6 ( ) DOI: 10.1016/j.jphotobiol.2013.02.016
  • Креславский В.Д., Любимов В.Ю., Шабнова Н.И., Ширшикова Г.Н., Шмарев А.Н., Кособрюхов А.А. Активация фитохрома В повышает устойчивость фотосинтетического аппарата проростков салата к УФ-А. Доклады РАСХН, 2014, 1: 20-23.
  • Мартиросян Ю.Ц., Полякова М.Н., Диловарова Т.А., Кособрюхов А.А. Фотосинтез и продуктивность растений картофеля в условиях различного спектрального облучения. Сельскохозяйственная биология, 2013, 1: 107-112.
  • Аверчева О.В., Беркович Ю.А., Ерохин А.Н., Жигалова Т.В., Погосян С.И., Смолянина С.О. Особенности роста и фотосинтеза растений китайской капусты при выращивании под светодиодными светильниками. Физиология растений, 2009, 56: 17-26.
  • Johkan M., Shoji K., Goto F., Hashida S., Yoshihara T. Blue light-emitting diode light irradiation of seedlings improves seedling quality and growth after transplanting in red leaf lettuce. Hort. Sci., 2010, 45: 1809-1814.
  • Гольцев В.Н., Каладжи Х.М., Кузманова М.А., Аллахвердиев С.И. Переменная и замедленная флуоресценция хлорофилла а -теоретические основы и практическое приложение в исследовании растений. Ижевск-М., 2014.
  • Farquhar G.D., von Caemmerer S., Berry J.A. A biochemical model of photosynthetic CO2 assimilation in leaves of C3 plants. Planta, 1980, 149(1): 78-90 ( ) DOI: 10.1007/BF00386231
  • Bukhov N.G., Drozdova I.S., Bondar V.V., Mokronosov A.T. Blue, red and blue plas red light control of chlorophyll content and CO2 Gas exchange in barley leaves: quantitative description of the effects of light quality and fluence rate. Physiologia Plantarum, 1992, 85: 632-638 ( ) DOI: 10.1111/j.1399-3054.1992.tb04765.x
  • Матевосян Г.Л., Бурень В.М., Баранова Р.К., Волкова Р.И., Сергеева Л.С. Фиторегуляторные проблемы роста и развития картофеля при быстром размножении промышленно важных сортов. В сб.: Регуляция роста и развития картофеля. М., 1990: 83-87.
  • Воскресенская Н.П., Дроздова И.С., Аксенова Н.П., Константинова Т.И., Бондар В.В., Перфильева С.Д., Чайлахян М.Х. Влияние света и фитогормонов на фотосинтез, рост и развитие картофеля сорта Миранда. В сб.: Регуляция роста и развития картофеля. М., 1990: 20-29.
  • Креславский В.Д., Кособрюхов А.А., Шмарев А.Н., Аксенова Н.П., Константинова Т.Н., Голяновская С.А., Романов Г.А. Введение гена phyb арабидопсиса повышает устойчивость фотосинтетического аппарата трансгенных растений Solanum tuberosum к УФ-В облучению. Физиология растений, 2015, 62(2): 222-229.
  • Shin K.S., Mrthy H.N., Heo J.W., Hahn E.J., Paek K.Y. The effect of light quality on the growth and development of in vitro cultured Doritaenopsis plants. Acta Physiol. Plant., 2008, 30: 339-343 ( ) DOI: 10.1007/s11738-007-0128-0
  • Kreslavski V.D., Schmitt F.-J., Keuer C., Fridrich T., Shirshikova G.N., Zharmukhamedov S.K., Kosobryukhov A.A., Allakhverdiev S.I. Response of the photosynthetic apparatus to UV-A and red light in the phytochrome B-deficient Arabidopsis thaliana L. hy3 mutant. Photosynthetica, 2016, 54(3): 321-330 ( ) DOI: 10.1007/s11099-016-0212-z
  • Terashima I., Fujita T., Inoue T., Chow W.S., Oguchi R. Green light drives leaf photosynthesis more efficiently than red light in strong white light: revisiting the enigmatic question of why leaves are green. Plant Cell Physiol., 2009, 50: 684-697 ( ) DOI: 10.1093/pcp/pcp034
  • Kosobryukhov A.A., Lyubimov V.Yu., Kreslavski V.D. Adaptive mechanisms of photosynthetic apparatus to UV radiation. In: Stress response in plants/B.N. Tripathi, M. Müller (eds.). Springer International Publishing Switzerland, 2015, chapter 3: 59-78 ( ) DOI: 10.1007/978-3-319-13368-3_3
  • Hogewoning S.W., Trouwborst G., Maljaars H., Poorter H., van Ieperen W., Harbinson J. Blue light dose-responses of leaf photosynthesis, morphology, and chemical composition of Cucumis sativus grown under different combinations of red and blue light. J. Exp. Bot., 2010, 6: 3107-3117 ( ) DOI: 10.1093/jxb/erq132
Еще
Статья научная