Дифференцированная оценка воздействия биогенных полиаминов и алармонсинтетазы RelMsm на характер скольжения Mycobacterium smegmatis

Автор: Цыганов И.В., Нестерова Л.Ю., Ткаченко А.Г.

Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio

Статья в выпуске: 4, 2024 года.

Бесплатный доступ

Разработан метод сравнительного анализа скользящих колоний бактерий, включающий оценку плотности расположения бактериальных клеток в монослое. С использованием данного метода исследовано влияние биогенных полиаминов и алармонсинтетазы RelMsm на скольжение Mycobacterium smegmatis. Показан разнонаправленный эффект спермидина и спермина на скольжение, усиление скольжения у штамма с делецией relMsm, а также отсутствие прямой связи между скольжением микобактерий и их гидрофобностью.

Микобактерии, скольжение, полиамины, алармоны, адаптация бактерий

Короткий адрес: https://sciup.org/147247245

IDR: 147247245 | DOI: 10.17072/1994-9952-2024-4-401-411

Список литературы Дифференцированная оценка воздействия биогенных полиаминов и алармонсинтетазы RelMsm на характер скольжения Mycobacterium smegmatis

Цыганов И.В., Нестерова Л.Ю., Ткаченко А.Г. Скольжение бактерий: способ пассивного распространения без использования жгутиков и пилей (обзор) // Вестник Пермского университета. Сер. Биология. 2021. Вып. 4. С. 263-274. DOI: 10.17072/1994-9952-2021-4-263-274.
Brennan P.J., Nikaido H. The envelope of mycobacteria // Annual Review of Biochemistry. 1995. Vol. 64. P. 29-63. DOI: 10.1146/annurev.bi.64.070195.000333.
Chakraborty P., Kumar A. The extracellular matrix of mycobacterial biofilms: could we shorten the treatment of mycobacterial infections? // Microbial Cell. 2019. Vol. 6, № 2. P. 105-122. DOI: 10.15698/mic2019.02.667.
Daffe M., Draper P. The envelope layers of mycobacteria with reference to their pathogenicity // Advances in microbial physiology. 1997. Vol. 39. P. 131-203. DOI: 10.1016/s0065-2911(08)60016-8.
Ghosh S., Indi S.S., Nagaraja V. Regulation of lipid biosynthesis, sliding motility, and biofilm formation by a membrane-anchored nucleoid-associated protein of Mycobacterium tuberculosis // Journal of bacteriology. 2013. Vol. 195, № 8. P. 1769-1778. DOI: 10.1128/JB.02081-12.
Gupta K.R. et al. Regulation of growth, cell shape, cell division and gene expression by second messengers (p) ppGpp and c-di-GMP in Mycobacterium smegmatis // Journal of bacteriology. 2016. Vol. 198, № 9. P. 1414-1422. DOI: 10.1128/JB.00126-16.
Gupta K.R., Kasetty S., Chatterji D. Novel functions of (p)ppGpp and Cyclic di-GMP in mycobacterial physiology revealed by phenotype microarray analysis of wild-type and isogenic strains of Mycobacterium smegmatis // Applied Environmental Microbiology. 2015. Vol. 81, № 7. P. 2571-2578. DOI: 10.1128/AEM.03999-14.
Henrichsen J. Bacterial surface translocation: a survey and a classification // Bacteriological reviews. 1972. Vol. 36, № 4. P. 478-503. DOI: 10.1128/br.36.4.478-503.1972.
Hölscher T., Kovacs Ä.T. Sliding on the surface: bacterial spreading without an active motor // Environ Microbiology. 2017. Vol. 19, № 7. P. 2537-2545. DOI: 10.1111/1462-2920.13741.
Igarashi K., Kashiwagi K. Modulation of cellular function by polyamines // The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 2010. Vol. 42, № 1. P. 39-51. DOI: 10.1016/j.biocel.2009.07.009.
Lai L.Y. et al. Role of the Mycobacterium marinum ESX-1 Secretion System in Sliding Motility and Biofilm Formation // Frontiers in Microbiology. 2018. Vol. 9. Art. 1160. DOI: 10.3389/fmicb.2018.01160
Martinez A., Torello S., Kolter R. Sliding motility in mycobacteria // Journal of bacteriology. 1999. Vol. 181, № 23. P. 7331-7338. DOI: 10.1128/JB.181.23.7331-7338.1999.
McNeil M.B., Dennison D., Parish T. Mutations in MmpL3 alter membrane potential, hydrophobicity and antibiotic susceptibility in Mycobacterium smegmatis // Microbiology. 2017. Vol. 163, № 7. P. 1065-1070. DOI: 10.1099/mic.0.000498.
Mohan A. et al. Complete Genome Sequences of a Mycobacterium smegmatis Laboratory Strain (MC2 155) and Isoniazid-Resistant (4XR1/R2) Mutant Strains // Genome Announcements. 2015. Vol. 3, № 1. Art. e01520-14. DOI: 10.1128/genomeA.01520-14.
Nesterova L.Yu., Tsyganov I.V., Tkachenko A.G. Biogenic Polyamines Influence the Antibiotic Susceptibility and Cell-Surface Properties of Mycobacterium smegmatis // Applied Biochemistry and Microbiology. 2020. Vol. 56, № 4. Р. 387-394. DOI: 10.1134/S0003683820040110.
Petchiappan A., Naik S.Y., Chatterji D. RelZ-Mediated Stress Response in Mycobacterium smegmatis: ppGpp Synthesis and Its Regulation // Journal of Bacteriology. 2020. Vol. 202, № 2. Art. e00444-19. DOI: 10.1128/JB.00444-19.
Primm T.P. et al. III. The stringent response of Mycobacterium tuberculosis is required for long-term survival // Journal of Bacteriology. 2000. Vol. 182. P. 4889-4898. DOI: 10.1128/jb.182.17.4889-4898.2000.
Prossliner T. et al. Ribosome Hibernation // Annual Review of Genetics. 2018. Vol. 23, № 52. Р. 321348. DOI: 10.1146/annurev-genet-120215-035130.
Recht J. et al. Genetic Analysis of Sliding Motility in Mycobacterium smegmatis // Journal of bacteriology. 2000 Vol. 182, № 15. P. 4348-4351. DOI: 10.1128/JB.182.15.4348-4351.2000.
Schorey J.S., Sweet L. The mycobacterial glycopeptidolipids: structure, function, and their role in pathogenesis // Glycobiology. 2008. Vol. 18, № 11. P. 832-841. DOI: 10.1093/glycob/cwn076.
Tsyganov I.V., Tkachenko A.G. Effect of biogenic polyamines on sliding motility of mycobacteria in the presence of antibiotics // Vavilovskii Zhurnal Genetiki i Selektsii. 2022. Vol. 26, № 5. P. 458-466. DOI: 10.18699/VJGB-22-56.
Zamakhaev M. et al. Mycolicibacterium smegmatis possesses operational agmatinase but contains no detectable polyamines // International Journal of Mycobacteriology. 2020. Vol. 9, № 2. P. 138-143. DOI: 10.4103/ijmy.ijmy_48_20.
Zegadlo K. et al. Bacterial Motility and Its Role in Skin and Wound Infections // International Journal of Molecular Sciences. 2023. Vol. 24, № 2. Art. 1707. DOI: 10.3390/ijms24021707.

Еще

Статья научная