Динамика микробного сообщества типичного чернозема при биодеградации целлюлозы и соломы ячменя

Автор: Чирак Е.Л., Орлова О.В., Аксенова Т.С., Кичко А.А., Чирак Е.Р., Проворов Николай Александрович, Андронов Евгений Евгеньевич

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Зерновые: генетический потенциал, селекционное улучшение, агробиотехнологии

Статья в выпуске: 3 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

Изучение процессов разложения целлюлозы - важное направление исследований для сельскохозяйственной науки, поскольку солома служит одним из самых доступных органических удобрений. Было проведено большое число работ, направленных на исследование биохимических механизмов разрушения целлюлозы, а также оценку таксономического разнообразия целлюлозолитических микроорганизмов. Однако состав микробного сообщества оценивался только с помощью методов, основанных на культивировании и, как следствие, обнаруживающих небольшую часть почвенного микробиома. С появлением методов секвенирования нового поколения (NGS) открылась возможность анализа сообщества микроорганизмов через обнаруженные в почве копии гена 16S рРНК. Основной задачей представленной работы была реализация комплексного подхода, сочетающего классические агрохимические методы оценки интенсивности процессов биоразложения с современными молекулярными методами (анализ почвенного метагенома 16S рРНК), для изучения динамики микробных сообществ, разлагающих два субстрата, содержащих целлюлозу, - солому и фильтровальную бумагу. С помощью метода высокопроизводительного секвенирования мы впервые показали, что при внесении в почву соломы наблюдаются более глубокие изменения структуры микробного сообщества, чем при внесении химически чистой целлюлозы. Модельный опыт проводили на типичном черноземе, отобранном в Воронежской области на залежных участках с глубины 2-15 см. В почву вносили химически чистую целлюлозу в виде сильно измельченной фильтровальной бумаги и измельченную солому ячменя из расчета 1 г на 100 г почвы. Анализы проводили в день внесения субстратов (0-е сут), а также на 7-е, 14-е, 21-е и 28-е сут. Оценивали выделение СО2, содержание нитратов, аммонийного азота, лабильного углерода, микробной биомассы. Таксономическую структуру микробиома определяли на основании анализа тотальной ДНК. В первые 7 сут эксперимента в варианте с соломой наблюдали прирост биомассы и связанную с этим активизацию дыхательных процессов. В опыте с целлюлозой значительного прироста биомассы не наблюдалось, а дыхание активизировалось с задержкой. Внесение целлюлозы и соломы снизило содержание нитратного азота в почве относительно контроля, причем в варианте с соломой показатель снизился в меньшей степени. В течение опыта были обнаружены таксоны, численность которых как увеличивалась ( Chthoniobacteraceae, Xanthomonadaceae, Chitinophagaceae ), так и уменьшалась ( Gaiellaceae ). Среди первых встречались классические целлюлозолитики ( Chitinophaga и представители семейств Streptosporangiaceae и Micromonosporaceae ) и бактерии, пока не замеченные в процессах биодеградации ( Chthoniobacter, Chitinophaga ). При разложении целлюлозы было обнаружено проявление гомеостаза сообщества - значимые изменения состава микроорганизмов на 14-е сут эксперимента с восстановлением до исходного состояния на 28-е сут. Полученные нами данные об изменениях микробиома при внесении сломы и химически чистой целлюлозы могут служить основой для построения предикативных моделей динамики микробиомов в процессе разложения органического вещества в зависимости от типа разлагаемого субстрата и физико-химических особенностей почвы.

Еще

Микробиом, почва, метагеном, солома, целлюлоза, биоразложение

Короткий адрес: https://sciup.org/142214055

IDR: 142214055   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.3.588rus

Список литературы Динамика микробного сообщества типичного чернозема при биодеградации целлюлозы и соломы ячменя

  • Nannipieri P., Ascher J., Ceccherini M.T., Landi L., Pietramellara G., Renella G. Microbial diversity and soil functions. Eur. J. Soil Sci., 2003, 54(4): 655-670 ( ) DOI: 10.1046/j.1351-0754.2003.0556.x
  • Marschner M., Middlestead P., Clark I.D. Using a simple high-performance liquid chromatography separation and fraction collection methodology to achieve compound-specific isotopic analysis for dissolved organic compounds. Rapid Commun. Mass Sp., 2005, 19(2): 2610269 ( ) DOI: 10.1002/rcm.1780
  • Минеев В.Г. Агрохимия. М., 2004.
  • Halsall D.M., Gibson A.H. Cellulose decomposition and associated nitrogen fixation by mixed cultures of Cellulomonas gelida and Azospirillum species or Bacillus macerans. Appl. Environ. Microb., 1985, 50(4): 1021-1026.
  • Tomme P., Warren R.A.J., Gilkes N. Cellulose hydrolysis by bacteria and fungi. Adv. Microb. Physiol., 1995, 37: 1-81 ( ) DOI: 10.1016/S0065-2911(08)60143-5
  • Poll C., Marhan S., Ingwersen J., Kandeler E. Dynamics of litter carbon turnover and microbial abundance in a rye detritusphere. Soil Biol. Biochem., 2008, 40: 1306-1321 ( ) DOI: 10.1016/j.soilbio.2007.04.002
  • Шульц Э., Кершенс М. Характеристика разлагаемой части органического вещества почв и ее трансформации при помощи экстракции горячей водой. Почвоведение, 1998, 7: 890-894.
  • Паников Н.С., Горбенко А.Ю., Светлов С.В. Способ определения суммарного содержания водорастворимых органических веществ в почве. А.C. ¹ 3949440/30-15. Опубл. 1987. Бюл. ¹ 23.
  • West A.W., Sparling G.P. Modification to the substrate-induced respiration method to permit measurement of microbial biomass in soils of different water contents. J. Microbiol. Meth., 1986, 5: 177-189 ( ) DOI: 10.1016/0167-7012(86)90012-6
  • Diaferia G., Saltini G., del Vecchio E., Rossi-Bernardi L., Biunno I., Malferrati G., Monferinin P., De Blasio P. High-quality genomic DNA from Human whole blood and mononuclear cells. BioTechniques, 2002, 33(6): 1128-1130.
  • Андронов Е.Е., Петрова С.Н., Чижевская Е.П., Коростик Е.В., Ахтемова Г.А., Пинаев А.Г. Влияние внесения генетически модифицированного штамма Sinorhizobium meliloti Ach_5 на структуру почвенного сообщества микроорганизмов. Микробиология, 2009, 78(4): 525-534.
  • Bates S.T., Berg-Lyons J.G., Caporaso W.A., Walters W.A., Knight R., Fierer N. Examining the global distribution of dominant archaeal populations in soil. ISME J., 2010, 5: 908-917 ( ) DOI: 10.1038/ismej.2010.171
  • Caporaso J.G., Kuczynski J., Stombaugh J., Bittinger K., Bushman F.D., Costello E.K., Huttley G.A. QIIME allows analysis of high-throughput community sequencing data. Nat. Methods, 2010, 7(5): 335-336 ( ) DOI: 10.1038/nmeth.f.303
  • Edgar R.C. Search and clustering orders of magnitude faster than BLAST. Bioinformatics, 2010, 26: 2460-2461 ( ) DOI: 10.1093/bioinformatics/btq461
  • DeSantis T.Z., Hugenholtz P., Larsen N., Rojas M., Brodie E.L., Keller K., Andersen G.L. Green genes, a chimera-checked 16S rRNA gene database and workbench compatible with ARB. Appl. Environ. Microbiol., 2006, 72: 5069-5072 ( ) DOI: 10.1128/AEM.03006-05
  • Мишустин Е.Н. Использование соломы как органического удобрения. М., 1980.
  • Паников Н.С., Афремова В.Д., Асеева И.В. Кинетика разложения целлюлозы в почвах. Почвоведение, 1984, 1: 56-62.
  • Кожевин П.А. Микробные популяции в природе. М., 1989.
  • Chung E.J., Park T.S., Jeon C.O., Chung Y.R. Chitinophaga oryziterrae sp. nov., isolated from the rhizosphere soil of rice (Oryza sativa L.). Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2012, 112: 345-351 ( ) DOI: 10.1099/ijs.0.036442-0
  • Zhang L.P., Jiang C.L., Chen W.X. Streptosporangium yunnanense sp. nov. and Streptosporangium purpuratum sp. nov., from soil in China. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2005, 55: 719-724 ( ) DOI: 10.1099/ijs.0.02565-0
  • De Menezes A.B., McDonald J.E., Allison H.E., McCarthy A.J. Importance of Micromonospora spp. as colonizers of cellulose in freshwater lakes as demonstrated by quantitative reverse transcriptase PCR of 16S rRNA. Appl. Environ. Microbiol., 2012, 78(9): 495-505 ( ) DOI: 10.1128/AEM.07314-11
  • Cazemier A.E., Verdoes J.C., Reubsaet F.A., Hackstein J.H., van der Drift C., Den Camp H.J.O. Promicromonospora pachnodae sp. nov., a member of the (hemi)cellulolytic hindgut flora of larvae of the scarab beetle Pachnoda marginata. Antonie Van Leeuwenhoek, 2003, 83(2): 135-148 ( ) DOI: 10.1023/A:1023325817663
  • Yoo S.H., Weon H.Y., Kim B.Y., Hong S.B., Kwon S.W., Cho Y.H., Stackebrandt E. Devosia soli sp. nov., isolated from greenhouse soil in Korea. International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2006, 56: 2689-2692 ( ) DOI: 10.1099/ijs.0.64214-0
  • Sangwan P., Chen X., Hugenholtz P., Janssen P.H. Chthoniobacter flavus gen. nov., sp. nov., the first pure-culture representative of subdivision two, Spartobacteria classis nov., of the phylum Verrucomicrobia. Appl. Environ. Microbiol., 2004, 70(10): 5875-5881 ( ) DOI: 10.1128/AEM.70.10.5875-5881.2004
  • Чирак Е.Л., Першина Е.В., Дольник А.С., Кутовая О.В., Василенко Е.С., Когут Б.М., Мерзлякова Я.В., Андронов Е.Е. Таксономическая структура микробных сообществ в почвах различных типов по данным высокопроизводительного секвенирования библиотек гена 16s-pPHK. Сельскохозяйственная биология, 2013, 3: 100-109 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2013.3.100rus
  • Eichorst S.A., Kuske C.R. Identification of cellulose-responsive bacterial and fungal communities in geographically and edaphically different soils by using stable isotope probing. Appl. Environ. Microbiol., 2012, 78(7): 2316-2327 ( ) DOI: 10.1128/AEM.07313-11
  • Vries M., Schöler A., Ertl J., Xu Z., Schloter M. Metagenomic analyses reveal no differences in genes involved in cellulose degradation under different tillage treatments. FEMS Microbiol. Ecol., 2015, 91(7): fiv069 ( ) DOI: 10.1093/femsec/fiv069
  • Hess M., Sczyrba, A., Egan R., Kim T.W., Chokhawala H., Schroth G., Luo S., Clark D.S., Chen F., Zhang T., Mackie R. Metagenomic discovery of biomass-degrading genes and genomes from cow rumen. Science, 2011, 331: 463-467 ( ) DOI: 10.1126/science.1200387
Еще
Статья научная