Динамика содержания азотистых веществ и липидов в хвое интродуцированных видов Picea а. Dietr. в таежной зоне (Карелия)
Автор: Кищенко Иван Тарасович
Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio
Рубрика: Ботаника
Статья в выпуске: 1, 2020 года.
Бесплатный доступ
Исследования проводились в Ботаническом саду Петрозаводского государственного университета. Объектами служили аборигенный (Picea fennica (Regel) Kom.) и 5 интродуцированных (P. pungens Engelm., P. obovata Ledeb., P. glauca (Mill.) Britt., P. omorica (Pane) Purk., P. mariana Britt.) видов рода ель. Установлено, что в процессе адаптации интродуцированных видов к низким температурам зимы наибольшее участие принимают белковые вещества. Их количество значительно увеличивается при переходе от периода активного роста побегов к периоду глубокого покоя у всех изученных видов. Накопление белков вызывает снижение уровня суммарных свободных аминокислот большинства видов интродуцентов, в то время как у местного вида содержание аминокислот сохраняется на достаточно высоком уровне. В хвое большинства изученных видов к периоду глубокого покоя уменьшается доля глутаминовой кислоты и аланина и увеличивается доля аргинина и этаноламина в общей сумме аминокислот. Увеличение содержания суммарных липидов и фосфолипидов в хвое при переходе к периоду глубокого покоя менее существенное, чем белков. В хвое аборигенного вида, в сравнении с хвоей интродуцентов, суммарные липиды активнее используются в фазу интенсивного роста побегов. Несмотря на некоторые различия, интродуцированные виды рода Picea адаптируются к низким температурам с помощью тех же биохимических механизмов, что и местный вид. Это свидетельствует об успешной адаптации изученных интродуцированных видов к новым условиям существования.
Азотистые вещества, липиды, хвоя, тайга, интродукция
Короткий адрес: https://sciup.org/147229634
IDR: 147229634 | DOI: 10.17072/1994-9952-2020-1-4-12
Текст научной статьи Динамика содержания азотистых веществ и липидов в хвое интродуцированных видов Picea а. Dietr. в таежной зоне (Карелия)
Известно, что большинство аборигенных видов древесных растений таежной зоны России плохо переносят прогрессирующее загрязнение окружа- ющей среды. Между тем виды хвойных растений других географических районов, в том числе и рода Picea, устойчивы к загазованности и задымленности, долговечны и весьма декоративны в течение всего года [Встовская, 1983; Плотникова, 1988]. Кроме того, многие из них отличаются значитель-
но большей продуктивностью, чем местные виды, и нередко способны к натурализации [Калуцкий, Болотов, 1983; Мамаев, Махиев, 1996]. Повышение биологического разнообразия естественных и искусственных фитоценозов, по мнению ряда исследователей [Мамаев, Махиев, 1996; Буданцев, 1999], возможно только через интродукцию древесных растений. Все это свидетельствует о необходимости интродукции хвойных и оценки их перспективности. Последняя может быть установлена лишь на основе всестороннего изучения адаптаций, происходящих у испытуемых растений в новых условиях произрастания [Ворошилов, 1960; Базилевская, 1964].
В Карелии основным экологическим фактором, лимитирующим рост и развитие растений, является низкая температура воздуха в зимний период. Исследованиями многих авторов [Новицкая, 1971; Сергеева, 1971; Туманов, 1979; Петухова, 1981; Трунова, 1990; Kontunen-Soppela, Laine, 2001; Welling, Palva, 2006; Kargiotidou, Deli, Galan-opoulou, 2008; Семенова и др., 2017; Нохсоров, Дударева, Петров, 2019] показано, что устойчивость растений к низким температурам обеспечивается их подготовкой к периоду глубокого покоя, которая состоит в специальных физиологических и цитологических перестройках. Известно, что у многолетних растений, в том числе и древесных, при подготовке к периоду глубокого покоя идет дополнительный синтез белков и других высокомолекулярных веществ. Это способствует созданию структуры протоплазмы клеток, повышающей устойчивость растительных организмов к неблагоприятным факторам среды, и в частности, к отрицательным зимним температурам [Сергеев, Сергеева, 1977; Трунова, 1984, 1990; Drossopoulos, Ni-avis, 1988; Kontunen-Soppela, Laine, 2001; Welling, Palva, 2006; Kargiotidou, Deli, Galanopoulou, 2008]. Аминокислоты представляют собой физиологически наиболее важную группу азотистых соединений, участвующих в синтезе различных веществ:
структурных белков, ферментов, нуклеиновых и органических кислот, сложных углеводов, жиров и др. [Кретович, 1980; Kontunen-Soppela, Laine, 2001; Welling, Palva, 2006; Kargiotidou, Deli, Galanopoulou, 2008; Fowden, 2015]. Поэтому аминокислоты прямо или косвенно связаны с биохимизмом ростовых процессов. Кроме того, их содержание является динамичным показателем, изменяющимся под действием различных факторов среды, в том числе и низких температур [Савицкая, 1965; Спирин, Гаврилова, 1967; Durzan, 1968; Брянцева, 1973; Pietiliänen, Lähdesmäki, 1986]. Важная роль в процессах адаптации древесных растений к отрицательным температурам принадлежит мембранной фракции липидов – фосфолипидам. Показано, что накопление фосфолипидов в хвое Рicea fennica в осенний период связано с новообразованием фосфолипидных мембран эндоплазматического ретикулума, диктиосом, и увеличением крист митохондрий [Родионов и др., 1983; Kontunen-Soppela, Laine, 2001; Welling, Palva, 2006; Kargiotidou, Deli, Galanopoulou, 2008]. Перестройка ультраструктуры клеток хвои осенью и связанное с ней накопление фосфолипидов являются важным условием высокой морозоустойчивости хвои. Состав азотистых веществ и липидов в хвое интродуцированных в Карелии видов до сих пор не изучался.
Цель исследований – определить устойчивость интродуцированных видов рода Picea к низкой температуре воздуха по динамике азотистых веществ и липидов в хвое.
Материалы и методы исследований
Исследования проводились в Ботаническом саду Петрозаводского государственного университета, расположенного в таежной зоне. Объектами служили аборигенный и 5 интродуцированных видов рода Picea (табл. 1).
Таблица 1
Характеристика объектов исследований
Таксон |
Место происхождения саженцев (ботсад–город) |
Средний возраст, лет |
Средняя высота, м |
Наличие семе-ношения |
Picea fennica (Regel) Кom. |
Петрозаводск |
19 |
5.8 |
Нет |
P. fennica (Regel) Кom. |
Петрозаводск |
50 |
16.0 |
Есть |
P. pungens Engelm. f. glauca Regel |
С.–Петербург |
36 |
12.7 |
Есть |
P. pungens Engelm. f. viridis Regel |
С.–Петербург |
36 |
10.7 |
Есть |
P. glauca (Mill.) Britt. |
С.–Петербург |
33 |
11.2 |
Есть |
P. omorica (Pane) Purk. |
Бухарест |
27 |
5.7 |
Нет |
P. mariana Britt. |
Бухарест |
19 |
4.7 |
Нет |
P. obovata Ledeb. |
Минск |
23 |
6.4 |
Нет |
Для проведения биохимического анализа отби- каждого вида из средней части кроны с разных рали однолетнюю хвою с нескольких деревьев сторон 4 раза в год (2002–2003 гг.) в периоды
набухания вегетативных почек (май), интенсивного роста побегов (конец июня), перехода к глубокому покою (середина сентября), глубокого покоя (конец октября). Результаты проведенных ранее исследований [Кищенко, 2000] показали, что различия в сроках прохождения указанных фенофаз у изучаемых видов не превышают 1 недели, в связи с чем одновременное взятие образцов представлялось вполне корректным.
Содержание белков в свежем материале устанавливали по методу Г.А. Бузуна, К.М. Джемухад-зе, Л.Ф. Милешко [1982] с применением красителя амидочерный 10. Извлечение аминокислот из растительного материала проводили по методике Б.П. Плешкова [1976], состав и содержание аминокислот определяли на автоматических аминокислотных анализаторах ААА–339 и ААА–881, отсчет аминограмм – на персональном компьютере. Липиды экстрагировали смесью хлороформа и метанола [Родионов, 1979]. Для выделения фракций фосфолипидов с целью изучения их жирнокислотного состава использовали метод тонкослойной хромотографии. Состав жирных кислот определяли газохроматографическим методом [Родионов, Захарова, 1979]. Хроматограммы регистрировали на измерительно-вычислительном комплексе ВК–1 и обсчитывали на ЭВМ. Образцы хвои для определения изоферментного состава пероксидазы замораживали жидким азотом и измельчали на электрической мельнице. Экстракцию ферментов из растительного материала проводили в трис-глициновом буфере (рН 8.3), содержащем 0.1 ЭДТ 1% тритона Х–100 [Ларионова, 1979]. Для очистки белков от фенолов применяли ионообменную смолу Дауэкс 1 x 8 (200-400 меш). Экстракцию вели в течение 1 ч. в холодильнике. Разделение изоферментов осуществляли методом диск-электрофореза в полиакриламидном геле [Сафонов, Сафонова, 1969]. Окраску на геле зон с ферментативной активностью производили по В.И. Сафонову и М.П. Сафоновой [1979]. В качестве субстрата для пероксидазы использовали бензидин. Подвижность отдельных изоформ в электрическом поле, измеряемой величиной ОЭП (относительная электрофоретическая подвижность), рассчитывали путем деления расстояния, пройденного данной фракцией, на расстояние от старта до финиша, пройденное красителем-метчиком (бромфенол синий) [Садва-касова, Кунаева, 1987].
Результаты и их обсуждение
Азотистые вещества. Результаты биохимических исследований показали, что заметное повышение содержания азотистых веществ в хвое изученных видов рода Picea происходит при переходе растений из фазы активного роста побегов к пери- оду глубокого покоя (табл. 2). У аборигенного вида (Р. fennica) количество азотистых веществ в хвое увеличивается при этом в 3–4 раза, а у интродуцированных видов – в 3.5–5 раз. Наиболее высокий уровень белков в хвое отмечается у P. mariana, а наиболее низкий – у P. glauca.
У Р. fennica , P. omorica и P. obovata усиление синтеза азотистых веществ к периоду глубокого покоя сопровождается вначале некоторым снижением уровня свободных аминокислот, а затем их возрастанием. У изучаемых интродуцированных видов (кроме P. omorica ) в этот период наблюдается снижение концентрации свободных аминокислот. У P. mariana высокий уровень аминокислот отмечается в период набухания почек; к фазе интенсивного роста побегов он резко снижается (почти в 5 раз), а затем вновь возрастает к наступлению периода глубокого покоя (табл. 2). По нашим данным, только у двух изученных видов ( Р. fennica, P. omorica ) свободные аминокислоты, обеспечив синтез значительного количества белков, сами накапливаются к периоду глубокого покоя. При качественном анализе аминокислот выяснили, что большую их часть составляют глутаминовая, γ-аминомаслянная, аспарагиновая кислоты, пролин, аргинин, аланин, этаноламин (всего 19 аминокислот).
В период набухания почек у 50-летней Р. fennica и у P. mariana – более половины, а у других видов – около трети общего количества свободных аминокислот составляет глутаминовая кислота. Во время вегетации ее процент несколько снижается, а при переходе к покою он падает. Исключение составляет P. omorica, у которой процентное содержание глутаминовой кислоты возрастает в период подготовки к глубокому покою (табл. 2). Глутаминовая кислота занимает ключевое положение в обмене аминокислот как универсальный донор и акцептор аминогрупп. Она обеспечивает взаимодействие белкового и углеводного обменов, осуществляет ассимиляцию азота, его транспорт и запасание [Измайлов, Смирнов, 1977]. В процессе подготовки к росту глутаминовая кислота накапливается в хвое в свободном состоянии в больших количествах. Образование ее происходит в хлоропластах и митохондриях. В процессе роста новых побегов расход глутаминовой кислоты идет активней ее синтеза, а при переходе древесного растения к зимнему покою новообразование кислоты параллельно со снижением активности фотосинтеза еще больше тормозится, зато увеличивается ее участие в образовании белковых структур, играющих защитную функцию в неблагоприятных условиях зимы; γ-аминомасляная кислота является продуктом декарбоксилирования глутаминовой кислоты [Измайлов, Смирнов, 1977] и может рассматриваться как запасной фонд по- следней ввиду легкости их взаимных превращений [Судачкова, 1977].
Таблица 2
Содержание отдельных свободных аминокислот в хвое видов рода Picea в разные фенофазы,
мкг/г сухого вещества (в скобках - процент от суммы аминокислот) |
||||
Таксон |
Фенофаза |
|||
набухание почек |
рост побегов |
подготовка к покою |
глубокий покой |
|
Глутаминовая кислота |
||||
Р. fennica (19 лет) |
603 (35) |
203 (22) |
118 (14) |
153 (13) |
Р. fennica (50 лет) |
1352 (52) |
776 (36) |
311 (27) |
252 (12) |
P. pungens f. glauca |
348 (31) |
219 (17) |
68 (8) |
109 (15) |
P. pungens f. viridis |
333 (35) |
376 (24) |
100 (9) |
147 (10) |
P. glauca |
275 (26) |
201 (20) |
73 (12) |
122 (16) |
P. mariana |
1034 (58) |
80 (21) |
258 (26) |
177 (19) |
P. omorica |
366 (20) |
271 (17) |
187 (29) |
197 (20) |
P. obovata |
696 (33) |
403 (28) |
299 (27) |
125 (17) |
Y-аминомасляная кислота |
||||
Р. fennica (19 лет) |
261 (15) |
166 (18) |
80 (9) |
165 (14) |
Р. fennica (50 лет) |
220 (8) |
221 (10) |
62 (5) |
265 (12) |
P. pungens f. glauca |
149 (14) |
238 (19) |
276 (33) |
122 (16) |
P. pungens f. viridis |
103 (11) |
331 (21) |
160 (15) |
399 (28) |
P. glauca |
265 (25) |
251 (25) |
48 (8) |
99 (13) |
P. mariana |
145 (8) |
99 (26) |
76 (8) |
171 (18) |
P. omorica |
139 (8) |
319 (20) |
44 (7) |
171 (18) |
Аргинин |
||||
Р. fennica (19 лет) |
91 (50) |
50 (5) |
127 (15) |
83 (7) |
Р. fennica (50 лет) |
112 (4) |
201 (9) |
82 (7) |
268 (13) |
P. pungens f . glauca |
50 (4) |
36 (3) |
60 (7) |
110 (15) |
P. pungens f . viridis |
30 (3) |
28 (2) |
173 (16) |
191 (13) |
P. glauca |
50 (5) |
37 (4) |
86 (14) |
85 (11) |
P. mariana |
50 (3) |
42 (4) |
52 (5) |
127 (13) |
P. omorica |
25 (1) |
114 (7) |
43 (7) |
45 (5) |
P. obovata |
294 (14) |
235 (16) |
166 (15) |
114 (16) |
Этаноламин |
||||
Р. fennica (19 лет) |
72 (4) |
38 (4) |
56 (7) |
83 (7) |
Р. fennica (50 лет) |
74 (3) |
32 (2) |
61 (5) |
130 (6) |
P. pungens f . glauca |
61 (6) |
41 (3) |
51 (6) |
69 (9) |
P. pungens f . viridis |
54 (6) |
47 (3) |
64 (6) |
76 (5) |
P. glauca |
59 (6) |
60 (6) |
53 (9) |
46 (6) |
P. mariana |
45 (2) |
21 (6) |
76 (8) |
99 (10) |
P. omorica |
54 (3) |
75 (5) |
44 (7) |
57 (6) |
P. obovata |
53 (2) |
26 (2) |
53 (5) |
69 (10) |
В состав белков она не входит, но является донором аминных групп и углеродного скелета при синтезе белка [Савицкая, 1965]. У P. mariana, P. omorica и P. pungens f. glauca динамика процентного содержания γ-аминомасляной кислоты противоположна изменению процента глутаминовой кислоты в хвое: увеличение доли одной кислоты в сумме аминокислот при переходе из одной фенофазы ели в другую сопровождается снижением доли другой (табл. 2). У всех изучаемых видов, кроме P. omorica и P. obovata, повышается процентное содержание аргинина в хвое к периоду глубокого покоя. По данным С.М. Брея [1986], аргинин является запасной формой азота при перезимовке. Значит, большинство видов рода Picea запасает некоторую часть азота на зиму в виде аминокислоты аргинина. Вместе с аминокислотами на аминокислотном анализаторе обнаружен и аминоспирт этаноламин. Известно, что он входит в состав группы фосфолипидов, называемых кефалинами, которые преобладают в мембранах митохондрий [Кретович, 1980]. Доля этаноламина в сумме аминокислот растет к периоду глубокого покоя в хвое всех изучаемых видов, за исключением P. glauca.
Липиды. Содержание суммарных липидов в хвое в фазу набухания почек более низко у интро-дуцентов по сравнению с местным видом, за исключением P. omorica, которая во все сроки ис- следования отличается высоким уровнем этих соединений (табл. 3). Во время интенсивного роста побегов у интродуцированных видов отмечается незначительное накопление липидных веществ, в то время как у Р. fennica происходит их снижение. Вероятно, характер использования этих высокоэнергетических соединений у разных видов различен, о чем свидетельствует и существенная разница в процессах роста и развития [Кищенко, 1995]. Это прежде всего касается нейтральных липидов, которые составляют основную часть суммарных липидов и содержат ди- и триглицериды, являющиеся предшественниками в синтезе ряда соединений, необходимых для новообразования структур [Jamieson, Reid, 1972]. К периоду глубокого покоя хвоя всех видов рода Picea накапливает липиды.
Результаты наших исследований показали, что в динамике фосфолипидов у исследуемых видов ели прослеживается одна и та же тенденция: к периоду глубокого покоя содержание их повышается. Уровень такого накопления неодинаков у разных видов ели. Минимальный запас фосфолипидов отмечен у Р. fennica и P. оbovatа .
Анализируя в целом данные по динамике некоторых показателей азотного и липидного обменов елей при переходе растений от активного роста к глубокому покою (табл. 3), можно отметить, что у P. fennica значительно повышается содержание белков (в 3–4 раза) и незначительно – суммарных свободных аминокислот у молодой P. fennica (у средневозрастной P. fennica сумма аминокислот не изменяется); несколько возрастает концентрация суммарных липидов и фосфолипидов (соответственно на 25 и 40%). У P. pungens f. viridis, P. omorica и P. obovata заметно повышается содержание белков в хвое (в 2 с лишним раза) при уменьшении суммы свободных аминокислот (почти вдвое); количество суммарных липидов и фосфолипидов увеличивается, причем наиболее заметно (соответственно на 80 и 56%) – у P. pungens f. glauca и f. viridis и P. glauca больше других видов накапливают в хвое белки (в 4.7–5.2 раза) при незначительном снижении концентрации аминокислот, а также суммарные липиды (и фосфолипиды у P. pungens f. viridis). P. mariana отличается от других видов тем, что при переходе к периоду глубокого покоя в ее хвое примерно, в равной степени, повышается количество белков и свободных аминокислот (соответственно в 2.9 и 2.5 раза). Кроме того, происходит незначительное увеличение содержания суммарных липидов при почти неизменном уровне фосфолипидов.
Таблица 3
Отношение содержания вещества в хвое в период глубокого покоя к его содержанию в период интенсивного роста побегов у видов рода Picea
Таксон |
Белки |
Сумма свободных аминокислот |
Суммарные липиды |
Фосфолипиды |
Р. fennica (19 лет) |
3.3 |
1.3 |
1.4 |
1.2 |
Р. fennica (50 лет) |
4.0 |
1.0 |
1.2 |
1.2 |
P. pungens f. glauca |
2.2 |
0.6 |
1.8 |
1.6 |
P. pungens f. viridis |
4.7 |
0.9 |
1.3 |
1.4 |
P. glauca |
5.2 |
0.8 |
1.2 |
0.9 |
P. mariana |
2.9 |
2.5 |
1.1 |
1.0 |
P. omorica |
2.6 |
0.6 |
1.0 |
1.2 |
P. obovata |
2.8 |
0.5 |
1.4 |
1.4 |
Таким образом, выявлены некоторые тенденции в изменении процентного содержания отдельных аминокислот в хвое разных видов рода Picea при переходе от роста побегов к глубокому покою: наблюдается уменьшение доли глутаминовой кислоты и увеличение доли аргинина и этаноламина в общей сумме аминокислот. Среди изучаемых видов выделяется P. omorica , у которой иначе, чем у других объектов исследования, изменяется процент глутаминовой кислоты и аргинина, и P. glauca , с отличающейся динамикой этаноламина.
Все изученные виды можно условно разделить на следующие три группы по характеру изменения исследуемых показателей метаболизма при переходе дерева от роста к глубокому покою (табл. 2):
-
1 группа – Р. fennica и P. obovata (местные ви-
- ды) – в процессе адаптации к зиме важная роль принадлежит белкам, но участвуют и суммарные липиды, фосфолипиды. Количество свободных аминокислот не уменьшается.
-
2 группа – интродуцированные виды P. pungens f . glauca и f. viridis, P. omorica и P. glauca – в процессе адаптации к зиме велико значение белков, усиленный синтез которых приводит к уменьшению уровня свободных аминокислот. У них в разной степени накапливаются суммарные липиды и фосфолипиды.
-
3 группа – интродуцент P. mariana – усиление синтеза белков не приводит к снижению содержания аминокислот, уровень которых растет почти в той же степени, что и белков. Суммарные липиды и фосфолипиды в процессе адаптации к условиям
зимы, вероятно, играют незначительную роль.
Таким образом, при переходе ели от роста к глубокому покою наибольшее участие в процессах приспособления к перенесению низких температур зимы принимают белковые вещества, в меньшей степени – фосфолипиды. Накопление суммарных липидов может иметь не только защитное значение, но и играть запасающую роль в растении. Липиды - наиболее энергоемкие запасные органические вещества. Сумма свободных аминокислот оказалась показателем, наиболее изменчивым у разных видов Picea : у одних его величина растет при переходе к покою, у других – падает. У большинства видов этого рода к наступлению глубокого покоя увеличивается доля этаноламина и аргинина и уменьшается доля глутаминовой кислоты в общей сумме аминокислот.
Заключение
Проведенные исследования позволили установить, что в процессе адаптации интродуцированных видов рода Picea к низким температурам зимы наибольшее участие принимают белковые вещества. Их количество значительно увеличивается при переходе от периода активного роста побегов к периоду глубокого покоя у всех изученных видов рода Picea . Накопление белков вызывает снижение уровня суммарных свободных аминокислот большинства видов интродуцентов, в то время как у местного вида содержание аминокислот сохраняется на достаточно высоком уровне. Исключением из интродуцентов является P. mariana , в хвое которой уровень свободных аминокислот повышается к периоду глубокого покоя почти в той же степени, что и белков. В хвое большинства изученных видов рода Picea к периоду глубокого покоя уменьшается доля глутаминовой кислоты и алана-нина и увеличивается доля аргинина и этанолами-на в общей сумме аминокислот. Увеличение содержания суммарных липидов и фосфолипидов в хвое при переходе к периоду глубокого покоя менее существенное, чем белков. В хвое аборигенного вида в сравнении с хвоей интродуцентов, суммарные липиды активнее используются в фазу интенсивного роста побегов.
Несмотря на некоторые различия, интродуцированные виды рода Picea приспосабливаются к перенесению низких температур с помощью тех же биохимических механизмов, что и местный вид. Это свидетельствует об успешной адаптации изученных интродуцированных видов к новым условиям существования.
Исследование выполнено при поддержке РФФИ (проект 18-44-100002 р_а).
Список литературы Динамика содержания азотистых веществ и липидов в хвое интродуцированных видов Picea а. Dietr. в таежной зоне (Карелия)
- Базилевская Н.А. Теория и методы интродукции растений. М.: Наука, 1964. 130 с.
- Брей С.М. Азотный обмен в растениях. М.: Агро-промиздат, 1986. 199 с.
- Брянцева З.Н. Азотный и фосфорный обмен кукурузы в связи с измененной интенсивностью ее роста // Физиологические механизмы адаптации и устойчивости у растений. Новосибирск: Наука, 1973. Ч. 2. С. 67-76.
- Буданцев Л.Ю. Биологическое разнообразие растительного мира, разные аспекты - одна задача // Биологическое разнообразие. Интродукция растений: материалы 2-й Междунар. науч. конф. СПб., 1999. С. 12-14.
- Бузун Г.А., Джемухадзе К.М., Милешко Л.Ф. Определение белка в растениях с помощью амидочерного // Физиология растений. 1982. Т. 29, вып. 1. С. 198-204.
- Встовская Т.Н. Интродукция древесных растений Дальнего Востока и Западной Сибири. Новосибирск: Наука, 1983. С. 196 с.
- Ворошилов В.Н. Ритм развития у растений. М.: Наука, 1960. 312 с.
- Измайлов С.М., Смирнов А.М.Функциональная компартментация дикарбоновых аминокислот в растительной клетке // Известия АН СССР. Сер. Биол. 1977. Т. 5. С. 733-746.
- Калуцкий К.К., Болотов Н.А. Биоэкологические особенности лесной интродукции // Лесная интродукция. Воронеж, 1983. С. 4-14.
- Кищенко И. Т. Влияние экологических факторов на развитие представителей рода Picea (Pinaceae) в условиях интродукции // Ботанический журнал. 1995. Т. 80, № 8. С. 11-18.
- Кищенко И.Т. Рост и развитие аборигенных и ин-тродуцированных видов семейства Pinaceae Lindl. в условиях Карелии. Петрозаводск: Изд-во ПетрГУ, 2000. 212 с.
- Кретович В. Биохимия растений. М.: Наука, 1980. 445 с
- Ларионова А.Я. Динамика электрофоретических спектров хвои лиственницы // Известия Сибирского отделения АН СССР. Сер. биол. наук. 1979. № 10/2. С. 97-100.
- Мамаев С.А., Махиев А.К. Проблемы биологического разнообразия и его поддержания в лесных экосистемах // Лесоведение. 1996. № 6. С. 3-10.
- Новицкая Ю.Е. Особенности физиолого-биохими-ческих процессов в хвое и побегах ели в условиях Севера. Л.: Наука, 1971. 117 с.
- Нохсоров В.В., Дударева Л.В., Петров К.А. Состав и содержание липидов и их жирных кислот в хвое Pinus sylvestris L. и Picea obovata Ledeb. при закаливании к низкой температуре в условиях криолитозоны Якутии // Физиология растений. 2019. Т. 66, № 4. С. 286-294.
- Петухова И.П. Эколого-физиологические основы интродукции древесных растений. М.: Наука, 1981. 124 с.
- Плешков Б.П. Практикум по биохимии растений. М.: Колос, 1976. 255 с.
- Плотникова Л.С. Научные основы интродукции и охраны древесных растений флоры СССР. М.: Наука, 1988. 263 с.
- Родионов В.С. Методы хроматографии и количественного анализа галакто- и фосфолипидов листьев растений // Известия АН СССР. Сер. Биол. 1979. № 2. С. 238-250.
- Родионов В.С., Захарова Л.С. Исследование состава жирных кислот глицеролипидов в листьях картофеля // Биохимия. 1979. Т. 44, вып. 9. С. 1706-1714.
- Родионов В.С., Ильинова М.К., Степанова А.А. Динамика содержания жирных кислот нейтральных липидов, глико- и фосфолипидов в однолетней хвое сосны обыкновенной в годичном цикле // Липидный обмен древесных растений в условиях Севера. Петрозаводск: Карелия, 1983. С. 8-96.
- Савицкая Н.Н. О содержании свободных аминокислот в растениях ячменя при недостатке воды в почве // Физиология растений. 1965. Т. 12, № 2. С. 349-30.
- Садвакасова Г.Г., Кунаева Р.М. Некоторые физико-химические и биологические свойства пе-роксидазы растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1987. Т. 19, № 2. С. 107-119.
- Сафонов В.И., Сафонова М.П. Анализ белков растений методом вертикального микроэлектрофореза в полиакриламидном геле // Физиология растений. 1969. Т. 16, № 2. С. 350-356.
- Сафонов В.И., Сафонова М.П. Исследование белков и ферментов растений методом микроэлектрофореза в полиакриламидном геле // Биохимические методы в физиологии растений. М., 1971. С. 113-136.
- Семенова Н.В. и др. Жирнокислотный состав суммарных липидов хвои и каллусов некоторых хвойных: Pinus sylvestris L., Picea pungens Engelm., Pinus koraiensis Siebold & Zucc. и Larix sibirica Ledeb. // Биологические мембраны. 2017. № 34. С. 298-306.
- Сергеев Л.И., Сергеева К.А. Структурно-метаболические механизмы адаптации древесных растений к неблагоприятным факторам среды // Сезонные структурно-метаболические ритмы и адаптация древесных растений. Уфа, 1977. С. 11-36.
- Сергеева К.А. Физиологические и биохимические основы зимостойкости древесных растений. М.: Наука, 1971. 174 с.
- Спирин А.С., Гаврилова Л.П. Рибосома. М.: Наука, 1967. 125 с.
- Судачкова Н.В. Метаболизм хвойных и формирование древесины. Новосибирск: Наука, 1977. 220 с.
- Трунова Т.И. Физиологические и биохимические основы адаптации растений к морозу // Сельскохозяйственная биология. 1984. № 6. С. 3-10.
- Трунова Т.И. Физиолого-биохимические основы адаптации и морозостойкости растений // Второй съезд ВОФР. Тез. докл. М., 1990. С. 91.
- Туманов И.И. Физиология закаливания и морозостойкости растений. М.: Наука, 1979. 352 с.
- Drossopoulus J.B., Niavis C.A Seasonal changes of the metabolites in the leaves, bark and xylem tiss-nes of olive tree (Olea europea L.) 1. Nitrogenous compounds // Ann. Bot. 1988. Vol. 2, № 3. P. 313-320.
- Durzan D.J. Nitrogen metabolism of Picea glauca. Seasonal changes of free amino acids in buds, shoot apices and leaves and the metabolism of uniformly labelled 14C-1- arginine by buds during the onset of dormancy // Canad J. Botany. 1968. Vol. 46, № 7. P: 909-912.
- Fowden Z. Aspects of amino acid metabolism in plants // Ann. Rev. Plant. Physiol. 2015. № 18. Р. 85-106.
- Jamieson G. R., Reid E. H. The leaf lipids of some conifer species // Phytochemistry. 1972. Vol. 11, № 1. P. 269-275.
- Kargiotidou A., Deli D., Galanopoulou D. Temperature and light regulate delta-12 fatty acid desaturases (FAD2) at a transcriptional level in cotton (Gossypium hirsutum) // J. Exp. Bot. 2008. № 59. Р. 2043-2056.
- Kontunen-Soppela S., Laine K. Seasonal Fluctuation of Dehydrins Is Related to Osmotic Status in Scots Pine Needles // Trees. 2001. № 15. Р. 425-430.
- Pietilainen P., Lahdesmaki P. Tree amino acid and protein levels and glutamyltransferase activity in Pinus sylvestris apical buds and shoots during the growing season // Scand. J. Forest. Res. 1986. Vol. 1, № 4. P. 387-395.
- Welling A., Palva E.T. Molecular Control of Cold Ac climation in Trees // Physiol. Plant. 2006. № 127. Р. 167-181.