Доклиническое исследование лекарственной формы (1,2)-L-рамно-(1,4)-D-галактопиранозилуронана из корневищ аира болотного Acorus calamus L. в онкологическом эксперименте
Автор: Лопатина К.А., Разина Т.Г., Зуева Е.П., Крылова С.Г., Гурьев А.М., Амосова Е.Н., Рыбалкина О.Ю., Сафонова Е.А., Ефимова Л.А., Белоусов М.В.
Журнал: Сибирский онкологический журнал @siboncoj
Рубрика: Лабораторные и экспериментальные исследования
Статья в выпуске: 1 (67), 2015 года.
Бесплатный доступ
Показано, что разработанная для инъекционного применения лекарственная форма α(1,2)-L-рамно-α(1,4)-Dгалактопиранозилуронана из корневищ аира болотного ( Acorus calamus L. ) при внутривенном введении повышает противоопухолевую и антиметастатическую эффективность циклофосфана у мышей с карциномой легких Льюис, раком легкого-67 и меланомой В-16.
Полисахариды, опухоль, циклофосфан
Короткий адрес: https://sciup.org/14056510
IDR: 14056510
Текст научной статьи Доклиническое исследование лекарственной формы (1,2)-L-рамно-(1,4)-D-галактопиранозилуронана из корневищ аира болотного Acorus calamus L. в онкологическом эксперименте
Несмотря на выраженный противоопухолевый эффект химиотерапии, осложнения цитостатического лечения часто становятся показаниями для его прекращения. Для повышения цитотоксического эффекта и снижения повреждающего действия химиопрепаратов на нормальные органы и ткани предпринимаются попытки использования биологически активных соединений растительного происхождения [1]. К числу наиболее распространенных в природе биополимеров относятся полисахариды, отличающиеся разнообразием структурного строения и физико-химических свойств, широким спектром фармакологических эффектов [2].
Ранее в экспериментах нами была показана возможность повышения эффективности химиотерапии полисахаридами аира болотного (Acorus calamus L.) при внутрижелудочном и внутрибрюшинном введении [2], показана возможность коррекции гематологической токсичности, гепатотоксичности, защита слизистой желудочнокишечного тракта при их включении в схемы цитостатической терапии перевиваемых опухолей животных [5–8]. Установлено, что наиболее выраженный терапевтический эффект полисахаридов наблюдается при внутрибрюшинном способе введения, в отличие от внутрижелудочного, при котором наступление фармакологического эффекта лимитируется физиологическими особенностями живого организма, кроме того, он снижается за счет биотрансформации действующего вещества пищеварительными ферментами.
Исследование механизмов противоопухолевой активности α (1,2)-L-рамно- α (1,4)-D-галактопиранозилуронана Acorus calamus L. показало, что специфической мишенью для его воздействия являются антиген-презентирующие клетки (макрофаги, дендритные клетки), которыми богата внутрибрюшинная жидкость, и противоопухолевый эффект реализуется посредством изменения их поляризационного профиля и активацией Th1-типа иммунного ответа [9]. Известно, что концентрация некоторых препаратов в кровеносном русле при внутрибрюшинном способе доставки не многим, но уступает внутривенному пути введения медикаментов, при котором развитие эффекта ввиду поступления лекарства в кровь происходит мгновенно. К тому же внутрибрюшинный путь введения в клинической практике – явление не популярное, используется для профилактики спаечной болезни, изредка – для введения цитостатиков и антибиотиков.
Целью настоящего исследования явилось сравнение эффективности применения α (1,2)-L-рамно- α (1,4)-D-галактопиранозилуронана Acorus calamus L. при внутрибрюшинном и внутривенном пути введения в сочетании с циклофосфаном у мышей с карциномой легкого Льюис (LLC), раком легкого – 67 (РЛ-67) и меланомой В-16 (В-16).
Материал и методы
Экспериментальная партия лекарственной формы α(1,2)-L-рамно-α(1,4)-D-галактопиранозилуронана из корневищ аира болотного ( Асоrus calamus L. ) (1 % стерильный изотонический раствор для инъекций – далее по тексту «препарат») изготовлена в Центре внедрения технологий ГБОУ ВПО «Сибирского государственного медицинского университета» Минздрава (серия 011212 для доклинических исследований). Выделение и стандартизация α(1,2)-L-рамно-α(1,4)-D-галактопиранозилуронана из корневищ аира болотного проводились с использованием методов динамической экстракции, спиртового осаждения, ионообменной хроматографии, фильтрации через полупроницаемую мембрану, лиофильной сушки, хромато-масс-спектрометрии и ЯМР-спектроскопии [9].
Эксперименты выполнены на половозрелых мышах-самках линии С57Bl/6 (массой 19–26 г, 2–3 мес), конвенциональных, 1-й категории, разводки отдела экспериментального биомоделирования ФГБНУ «Научно-исследовательский институт фармакологии и регенеративной медицины имени Е.Д. Гольдберга» (сертификат здоровья лабораторных животных Научного центра биомедицинских технологий № 24–03). Содержание мышей осуществлялось в соответствии с правилами, принятыми Европейской конвенцией по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и иных научных целей (Страсбург, 1986). Дизайн исследования одобрен Этическим комитетом ФГБНУ «Научно-исследовательский институт фармакологии и регенеративной медицины имени Е.Д. Гольдберга».
Трансплантацию LLC, В-16 и РЛ-67 проводили гомогенатом опухолевой ткани в стерильном физиологическом растворе внутримышечно по 5×106 опухолевых клеток в объеме 0,1 мл. Во всех экспериментах внутривенные и внутрибрюшинные введения препарата по 20 мг/кг начинали с 7-х сут развития опухоли и производили ежедневно в течение 10 сут. На 10-е сут развития опухоли однократно вводили циклофосфан (ЦФ) (ОАО «Биохимик», Россия, г. Саранск) в дозе 125 мг/кг, внутрибрюшинно; эксперимент заканчивали на 21-е сут развития опухоли. Контрольные группы получали физиологический раствор в эквивалентном объеме ежедневно, при этом путь введения чередовали.
По окончании экспериментов мышей умерщвляли, соблюдая «Правила проведения работ с использованием экспериментальных животных», утвержденные Министерством здравоохранения РФ. Определяли массу первичной опухоли, подсчитывали количество и площадь метастазов в легких, вычисляли процент торможения роста опухоли, частоту метастазирования и индекс ингибирования метастазирования [4].
Обработку полученных результатов проводили с использованием непараметрических критериев Вилкоксона – Манна – Уитни и углового преобразования Фишера. Различия считали достоверными при р<0,05 [3].
Результаты и обсуждение
На модели карциномы легких Льюис показано, что препарат повышает противоопухолевый
Таблица
Bлияние α(1,2)-L-рамно-α(1,4)-D-галактопиранозилуронана Acorus calamus L. (препарата) на развитие карциномы легкого Льюис, меланомы B-16, рака легкого-67 у мышей линии C57Bl/6 и эффективность терапии циклофосфаном
Показатели развития опухоли |
Опухолевый штамм |
Контроль |
ЦФ |
ЦФ + препарат (внутрибрюшинно) |
ЦФ + препарат (внутривенно) |
Масса опухоли, г |
LLC |
4,24 ± 0,20 n=12 |
3,19 ± 0,34* n=13 |
3,24 ± 0,19 n=13 |
2,14 ± 0,18** n=18 |
B-16 |
4,47 ± 0,18 n=16 |
3,35 ± 0,12* n=16 |
3,57 ± 0,16 n=11 |
3,20 ± 0,10 n=17 |
|
РЛ-67 |
8,66 ±0,25 n=9 |
6,44±0,29 n=22 |
6,40±0,31 n=14 |
6,50 ± 0,19 n=17 |
|
Торможение роста опухоли, % |
LLC |
- |
25 % |
24 % |
50 % |
B-16 |
- |
25 % |
20 % |
28 % |
|
РЛ-67 |
- |
26 % |
25 % |
26 % |
|
Частота метастазирования |
LLC |
100 |
62* |
15** |
17** |
B-16 |
63 |
50 |
46 |
29* |
|
РЛ-67 |
100 |
90 |
50** |
25** |
|
Количество метастазов на 1 животное |
LLC |
8,75 ± 1,39 |
1,15 ± 0,39* |
0,23 ± 0,17 |
0,39 ± 0,24 |
B-16 |
2,06 ± 0,60 |
1,44 ± 0,54* |
1,09 ± 0,49 |
0,94 ± 0,42 |
|
РЛ-67 |
12,33 ± 1,05 |
3,43 ± 0,62* |
0,75 ± 0,45** |
0,93 ± 0,29** |
|
Площадь метастазов на 1 животное, мм2 |
LLC |
5,66 ± 1,64 |
0,11 ± 0,04* |
0,07 ± 0,07 |
0,03 ± 0,02 |
B-16 |
0,17 ± 0,06 |
0,11 ± 0,04* |
0,17 ± 0,06 |
0,07 ± 0,03 |
|
РЛ-67 |
10,24 ± 1,24 |
1,08 ± 0,44* |
0,05 ± 0,03** |
0,28 ± 0,17** |
|
Индекс ингибирования метастазирования |
LLC |
- |
92 |
99 |
99 |
B-16 |
- |
45 |
61 |
79 |
|
РЛ-67 |
- |
75 |
97 |
98 |
Примечание: * – различия статистически значимы по сравнению с группой контроля (р<0,05) разница с контролем; ** – различия статистически значимы по сравнению с группой ЦФ (р<0,05).
и антиметастатический эффект ЦФ. Так, масса опухоли в группе мышей, которым вводили ЦФ и исследуемый препарат внутривенно, снижалась в 1,5 раза относительно таковой у получавших только ЦФ (таблица). Препарат, используемый совместно с циклофосфаном, вызывал снижение частоты метастазирования у подопытных животных. Так, если при изолированном введении цитостатика этот показатель достигал 62 %, то добавление в схему лечения препарата вызывало его снижение до 15 и 17 % при внутрибрюшинном и внутривенном введении соответственно. Следует отметить тенденцию к снижению среднего количества метастазов и их площади в группах комбинированной терапии.
У мышей с меланомой В-16 препарат, вводимый внутривенно совместно с циклофосфаном, вызывал достоверное снижение частоты метастазирования опухоли. Если цитостатик назначали изолированно, этот показатель составлял 50 %, при этом различие с контрольной группой не было достоверным. В то же время в группе «ЦФ + препарат внутривенно» обнаружено снижение частоты метастазирования до 29 %, при этом разница с группой, леченной только цитостатиком, была статистически значимой.
Наиболее выраженное повышение антиметаста-тического эффекта при включении в схему химиотерапии препарата удалось обнаружить на модели РЛ-67. Внутрибрюшинное введение препарата приводило к снижению частоты метастазирования до 50 % против 90 % в группе изолированной химиотерапии. Лишь у 25 % животных отмечалось метастатическое поражение легочной ткани, если на фоне ЦФ препарат вводили внутривенно. Количество метастазов у мышей с РЛ-67, получавших совместно с ЦФ препарат внутрибрюшинно или внутривенно, достоверно снижалось в 4,6 и 3,7 раза соответственно относительно этого показателя у животных, леченных только ЦФ. Препарат при его внутрибрюшинном и внутривенном введении способствовал не только угнетению процесса диссеминации опухоли, но и тормозил рост уже образовавшихся метастазов, о чем свидетельствует достоверное снижение площади метастатического поражения относительно группы животных, получавших ЦФ.
Таким образом, результаты экспериментов показали, что внутривенное введение препарата по эффективности не уступает внутрибрюшинному, а в некоторых случаях, как, например, в эксперименте на животных с карциномой легких Льюис, даже превосходит. Внутрибрюшинное назначение препарата не повлияло на рост основного опухолевого узла, в то время как внутривенно используемый препарат вызывал достоверное торможение роста опухоли. Внутривенный способ имеет неоспоримые преимущества перед другими способами в связи с быстрым наступлением эффекта, а также обеспечивает максимальную биодоступность препаратов.
Механизм действия препаратов полисахаридной природы реализуется опосредованно, через клетки иммунной системы. При внутрибрюшинном введении лекарственные препараты быстро адсорбируются клетками брюшной полости, в частности макрофагами, которые в кратчайшие сроки запускают цепь специфического противоопухолевого ответа, проникая через стенки брюшины, густо пронизанные кровеносными сосудами. Как известно, биодоступность препаратов при внутривенном введении достигает 100 %. Непосредственное попадание препарата в кровеносное русло также вызывает цепь иммунных реакций, приводящую к реализации терапевтического эффекта препарата [9]. Кроме опосредованных через иммунокомпетентные клетки эффектов, полисахариды способны оказывать прямое влияние на рецепторный аппарат, на поверхностные мембранные структуры клеток, в том числе и опухолевые, что, несомненно, делает внутривенный путь доставки препаратов полисахаридной природы предпочтительным. Так, антиметастатический и противоопухолевый эффект полисахаридов, вероятно, может быть связан с угнетением процесса неоангиогенеза через сигнальные белки VEGF-1 и матричные металлопротеиназы [10, 11]. Проведенное исследование доказывает, что биологическая активность препарата при внутривенном способе доставки не снижается относительно внутрибрюшинного, а также позволяет экстраполировать полученные результаты на ситуацию в клинике и рекомендовать внутривенный путь α(1,2)-L-рамно-α(1,4)-D-галактопиранозилуронана из корневищ аира болотного (Acorus calamus L.) для клинических исследований в качестве основного метода введения.