Фармакокинетика наноалмазов, меченных 188Re, в организме мышей с экспериментальной карциномой Эрлиха

Автор: Петриев В.М., Тищенко В.К., Михайловская А.А., Коноплянников А.Г.

Журнал: Радиация и риск (Бюллетень Национального радиационно-эпидемиологического регистра) @radiation-and-risk

Рубрика: Научные статьи

Статья в выпуске: 2 т.26, 2017 года.

Бесплатный доступ

Адресная доставка радионуклидов непосредственно к опухолевому очагу является важной задачей радионуклидной терапии рака. В этой связи огромный интерес представляют наноалмазы (НА), которые могут применяться для селективной доставки терапевтических радионуклидов в опухолевую ткань. Целью данной работы было изучение фармакокинетических свойств НА, меченных 188Re (188Re-НА), при различных путях их введения. Экспериментальные исследования выполняли на мышах с солидным вариантом карциномы Эрлиха при внутриопухолевом, внутривенном и внутрижелудочном введении 188Re-НА. В качестве контроля служили результаты фармакокинетики свободного 188Re в виде перрената натрия (Na188ReO4) после внутриопухолевого введения. Согласно полученным результатам максимальное содержание активности в опухоли отмечалось при внутриопухолевом введении 188Re-НА и достигало 98,5%/г. В дальнейшем, однако, происходило быстрое выведение активности из опухолевой ткани. При внутривенном и внутрижелудочном введении максимальные удельные активности 188Re-НА в опухоли составили 2,85%/г и 3,14%/г соответственно. На протяжении всего исследования концентрация препарата при внутривенном и внутрижелудочном путях введения была существенно ниже, чем при внутриопухолевой инъекции. Концентрация Na188ReO4 в опухолевой ткани были также ниже, чем 188Re-НА. Повышенное содержание 188Re-НА наблюдали в щитовидной железе и желудке. Таким образом, высокую удельную активность в опухоли отмечали лишь при интратуморальном введении 188Re-НА. Способ введения 188Re-НА не оказывал значительного влияния на уровни активностей во внутренних органах и тканях, но влиял на скорость накопления активности в них.

Еще

Наночастицы, наноалмазы, радиофармпрепарат, карцинома эрлиха, радионуклидная терапия, терапия рака, внутриопухолевое введение, внутривенное введение, внутрижелудочное введение

Короткий адрес: https://sciup.org/170170294

IDR: 170170294   |   DOI: 10.21870/0131-3878-2017-26-2-62-71

Текст научной статьи Фармакокинетика наноалмазов, меченных 188Re, в организме мышей с экспериментальной карциномой Эрлиха

В связи с неуклонным ростом онкологической заболеваемости своевременная и эффективная терапия опухолей продолжает оставаться наиболее актуальной проблемой современной клинической медицины. Перспективным направлением в этой области является применение наноалмазных частиц для таргетной доставки противоопухолевых препаратов или радионуклидов с терапевтической целью. Значительный интерес к наноалмазам (НА) связан с их низкой токсичностью, высокой химической стабильностью, высоким сродством к биомолекулам и простотой функционализации их поверхности [1]. Благодаря этому наноалмазы широко применяются для разработки систем доставки лекарственных препаратов и радионуклидов непосредственно в опухолевую ткань.

Наноалмазы сочетают в себе как свойства алмаза (высокая химическая стабильность, твёрдость, прочность, жёсткость), так и наночастиц (малый размер, большая площадь поверхности и высокая сорбционная ёмкость) [2]. Благодаря этому наноалмазы способны связываться с широким спектром лекарственных соединений и биологически активных молекул. Кроме того, наноалмазы обладают наименьшей цитотоксичностью из всех углеродсодержащих наномате-

Петриев В.М.* – в.н.с., д.б.н., проф. НИЯУ МИФИ; Тищенко В.К. – с.н.с., к.б.н.; Михайловская А.А. – с.н.с., к.б.н. Коноплянников А.Г. – зав. отд., д.б.н., проф. МРНЦ им. А.Ф. Цыба – филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России.

риалов [1]. Сочетание этих свойств делает наноалмазы перспективной субстанцией для пролонгированного высвобождения лекарственных препаратов и эффективной терапии широкого спектра заболеваний.

В литературе приводятся данные о возможности конъюгации НА с такими противоопухолевыми препаратами как доксорубицин [3, 4], эпирубицин [5], даунорубицин [6], цисплатин [7], паклитаксел [8], митоксантрон [9], 10-гидроксикамптотецин [10] и др. Применение таких комплексов увеличивает содержание химиотерапевтических препаратов в опухолевых клетках, что позволяет не только преодолеть лекарственную устойчивость опухоли к препаратам, но и избежать системных побочных эффектов. Более того, высвобождение соединений из наноалмаз-ной матрицы происходит постепенно, что позволяет поддерживать терапевтическую концентрацию препарата в течение длительного времени и достигать максимального терапевтического эффекта [8].

Перспективным радионуклидом для создания терапевтических радиофармпрепаратов (РФП) является 188Re. 188Re имеет оптимальные ядерно-физические характеристики для создания «очаговой» терапевтической дозы облучения за счёт бета-излучения (Т 1/2 =17 ч, Е βmax =2,1 МэВ, проникающая способность в мягких тканях составляет 10 мм), а также позволяет за счёт гамма-излучения (Еγ=155 кэВ) наблюдать за поведением меченого соединения in vivo с помощью визуализирующей аппаратуры. Еще одним достоинством 188Re является его доступность, поскольку его получают из генератора 188W/188Re. Все это позволяет готовить РФП в клинических условиях непосредственно перед введением пациенту. Исходя из вышеизложенного, следует признать целесообразным разработку нового РФП на основе наноалмазных частиц и 188Re. Целью настоящей работы является разработка метода получения 188Re-наноалмазов и изучение их поведения в организме лабораторных животных с экспериментальной злокачественной опухолью при разных способах поступления меченого препарата в организм.

Материалы и методы

Суспензия детонационных наноалмазов была получена в Физико-техническом институте им. А.Ф. Иоффе (Санкт-Петербург) по методу, описанному в работе [11]. Средний размер наночастиц, оцениваемый методом динамического рассеяния света, составил 4,5 нм.

Изучение распределения 188Re-НА проводили на беспородных мышах-самцах весом 30±3 г с перевитой карциномой Эрлиха. Карциному Эрлиха перевивали беспородным мышам внутрибрюшинно или подкожно асцитной жидкостью. При внутрибрюшинной перевивке образуется асцит с большим количеством опухолевых клеток. Для получения солидного варианта опухоли Эрлиха перевивали асцитную жидкость, полученную от мышей-доноров на 8-10 сутки роста. Полученную взвесь, содержащую в 0,1 мл 3,5⋅106 клеток опухоли, вводили мышам под кожу бедра. Введение 188Re-НА осуществляли на 7 сутки, когда объём опухоли достигал 0,4-0,6 см3.

Всего было использовано 80 животных. Животные были поделены на четыре группы (по 20 мышей в каждой). На животных первой, второй и третьей групп изучали распределение 188Re-НА после внутриопухолевого, внутрижелудочного и внутривенного введения соответственно. Четвёртая группа животных была контрольной: на этих животных изучали распределение свободного 188Re в виде перрената натрия (Na188ReO 4 ) после внутриопухолевого введения.

Через 5 мин, 1, 3, 24 и 48 ч по 4 животных в каждый срок забивали под наркозом декапитацией, выделяли пробы органов и тканей, помещали их в пластиковые пробирки, взвешивали на электронных весах «Sartorius» (Германия) и проводили радиометрию с помощью автоматического гамма-счётчика «Wizard» версии 2480 фирмы PerkinElmer/Wallac (Финляндия).

По данным радиометрии рассчитывали содержание 188Re-НА в 1 г массы ткани и на весь орган в процентах от введённого количества. При характеристике количественных величин вычисляли среднее арифметическое (М), стандартную ошибку (m).

Результаты и обсуждение

Результаты накопления активности в опухолевой ткани при различных путях введения 188Re-НА представлены в табл. 1 и 2. Наиболее высокая концентрация активности в опухоли наблюдается при внутриопухолевом введении сразу же после инъекции препарата (98,5±24,3%/г или 29,4±7,35%/орган) (табл. 1 и 2). В то же время необходимо отметить, что 188Re-НА достаточно быстро выводятся из опухолевой ткани. Так, уже через 1 ч содержание 188Re-НА снижается до 17,0±2,10%/г, а через 3 ч – до 6,08±0,41%/г. Тем не менее, уровень активности исследуемого РФП в опухоли при внутриопухолевом введении существенно выше, чем при внутривенном и внутрижелудочном путях введения на протяжении всего исследования (p<0,001-0,01).

Таблица 1 Распределение активности в опухоли мышей с карциномой Эрлиха после внутриопухолевого, внутривенного и внутрижелудочного введения 188Re-НА

(в %/г от введённого количества)

Наименование органа, ткани

Метод введения

Время после введения препарата

5 мин

1 ч

3 ч

1 сут

2 сут

в/о

98,5±24,3

17,0±22,10

6,08±20,41

2,09±20,22

1,85±20,19

Карцинома Эрлиха

в/ж

3,14±20,31

2,36±20,27

2,32±20,03

0,11±20,02

0,11±20,02

в/в

2,85±20,33

2,59±20,15

2,18±20,22

0,24±20,07

0,17±20,03

Список литературы Фармакокинетика наноалмазов, меченных 188Re, в организме мышей с экспериментальной карциномой Эрлиха

  • Schrand A.M., Huang H., Carlson C., Schlager J., Osawa E., Hussain S., Dai L. Are diamond nanoparticles cytotoxic?//J. Phys. Chem. B. 2007. V. 111, N 1. P. 2-7.
  • Mochalin V., Shenderova O., Ho D., Gogotsi Y. The properties and applications of nanodiamonds//Nat. Nanotechnol. 2012. V. 7, N 1. P. 11-23.
  • Huang H., Pierstorff E., Osawa E., Ho D. Active nanodiamond hydrogels for chemotherapeutic delivery//Nano Lett. 2007. V. 7, N 11. P. 3305-3314.
  • Xiao J., Duan X., Yin Q., Zhang Z., Yu H., Li Y. Nanodiamonds-mediated doxorubicin nuclear delivery to inhibit lung metastasis of breast cancer//Biomaterials. 2013. V. 34, N 37. P. 9648-9656.
  • Wang X., Low X.C., Hou W., Abdullah L.N., Toh T.B., Mohd Abdul Rashid M., Ho D., Chow E.K. Epirubicin-adsorbed nanodiamonds kill chemoresistant hepatic cancer stem cells//ACS Nano. 2014. V. 8, N 12. P. 12151-12166.
  • Man H.B., Kim H., Kim H.J., Robinson E., Liu W.K., Chow E.K., Ho D. Synthesis of nanodiamond-daunorubicin conjugates to overcome multidrug chemoresistance in leukemia//Nanomed. 2014. V. 10, N 2. P. 359-369.
  • Guan B., Zou F., Zhi J. Nanodiamond as the pH-responsive vehicle for an anticancer drug//Small. 2010. V. 6, N 14. P. 1514-1519.
  • Liu K.K., Zheng W.W., Wang C.C., Chiu Y.C., Cheng C.L., Lo Y.S., Chen C., Chao J.I. Covalent linkage of nanodiamond-paclitaxel for drug delivery and cancer therapy//Nanotechnol. 2010. V. 21, N 31. P. 315106.
  • Toh T.B., Lee D.K., Hou W., Abdullah L.N., Nguyen J., Ho D., Chow E.K. Nanodiamond-mitoxantrone complexes enhance drug retention in chemoresistant breast cancer cells//Mol. Pharmacol. 2014. V. 11, N 8. P. 2683-2691.
  • Li J., Zhu Y., Ki W., Zhang X., Peng Y., Huang Q. Nanodiamonds as intracellular transporters of chemotherapeutic drug//Biomaterials. 2010. V. 31, N 32. P. 8410-8418.
  • Aleksenskiy A.E., Eydelman E.D., Vul A.Ya. Deagglomeration of detonation nanodiamonds//Nanosci. Nanotechnol. Lett. 2011. V. 3, N 1. P. 68-74.
  • Perevedentseva E., Hong S.F., Huang K.J., Chiang L.T., Lee C.Y., Tseng Y.T., Cheng C.L. Nanodiamond internalization in cells and the cell uptake mechanism//J. Nanopart. Res. 2013. V. 15. P. 1834-1845.
  • Cuche A., Sonnefraud Y., Faklaris O., Garrot D., Boudou J.P., Sauvage T., Roch J.F., Treussart F., Huant S. Diamond nanoparticles as photoluminescent nanoprobes for biology and near-field optics//J. Lumin. 2009. V. 129, N 12. P. 1475-1477.
  • Liu K.K., Wang C.C., Cheng C.L., Chao J.I. Endocytic carboxylated nanodiamond for the labeling and tracking of cell division and differentiation in cancer and stem cells//Biomaterials. 2009. V. 30, N 26. P. 4249-4259.
  • Kaur R., Badea I. Nanodiamonds as novel nanomaterials for biomedical applications: drug delivery and imaging systems//Int. J. Nanomed. 2013. V. 8. P. 203-220.
  • Keremidarska M., Ganeva A., Mitev D., Hikov T., Presker R., Pramatarova L., Krasteva N. Comparative study of cytotoxicity of detonation nanodiamond particles with an osteosarcoma cell line and primary mesenchymal stem cells//Biotechnol. Biotechnol. Equip. 2014. V. 28, N 4. P. 733-739.
  • Yuan Y., Chen Y.W., Liu J.H., Wang H., Liu Y. Biodistribution and fate of nanodiamonds in vivo//Diam. Relat. Mater. 2009. V. 18, N 1. P. 95-100.
  • Zhang X.Y., Yin J.L., Kang C., Li J., Zhu Y., Li W., Huang Q., Zhu Z. Biodistribution and toxicity of nanodiamonds in mice after intratracheal instillation//Toxicol. Lett. 2010. V. 198, N 2. P. 237-243.
  • Wei Q., Zhan L., Juanjuan B., Jing W., Jianjun W., Taoli S., Yian G., Wangsuo W. Biodistribution of co-exposure to multi-walled carbon nanotubes and nanodiamonds in mice//Nanoscale Res. Lett. 2012. V. 7, N 1. P. 473-481.
  • Rojas S., Gispert J.D., Martin R., Abad S., Menchόn C., Pareto D., Victor V.M., Alvaro M., Garcia H., Herance J.R. Biodistribution of amino-functionalized diamond nanoparticles. In vivo studies based on 18F radionuclide emission//ACS Nano. 2011. V. 5, N 7. P. 5552-5559.
Еще
Статья научная