Филогенетический анализ штаммов рода Rhizobium, выделенных из клубеньков Vavilovia formosa (Stev.) Fed

Автор: Кимеклис А.К., Сафронова В.И., Кузнецова И.Г., Сазанова А.Л., Белимов А.А., Пинаев А.Г., Чижевская Е.П., Пухаев А.Р., Попов К.П., Андронов Е.Е., Проворов Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Микробно-растительные системы

Статья в выпуске: 5 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

Из пяти родов трибы Fabeae самым малоизученным остается Vavilovia Fed., содержащий единственный вид Vavilovia formosa (Stev.) Fed. Ареал вавиловии прекрасной расположен на высокогорье Центрального и Восточного Кавказа, известны всего несколько популяций на территориях Армении, Дагестана и Северной Осетии, Азербайджана, Ирана, Ирака, Сирии и Турции, а ее произрастание ограничено условиями среды обитания. Единственное филогенетическое исследование изолятов ризобий из клубеньков вавиловии Североосетинской популяции показало достаточно широкое видовое и генетическое разнообразие как быстрорастущих, так и медленнорастущих микросимбионтов (V.I. Safronova с соавт., 2014). Было установлено, что все быстрорастущие изоляты, принадлежащие к виду Rhizobium leguminosarum, служат носителями гена nodX. Вавиловию прекрасную и ее микросимбионтов можно рассматривать как перспективные модельные объекты для исследования механизмов эволюции специфичности бобово-ризобиального симбиоза. В результате трех экспедиций в горные регионы Армении, Дагестана и Северной Осетии были найдены и собраны образцы эндемичного бобового растения Vavilovia formosa (Stev.) Fed. с клубеньками, из которых впоследствии получены изоляты клубеньковых бактерий (ризобий). Мы выбрали 19 штаммов быстрорастущих ризобий, выделенных из клубеньков 10 растений, чтобы определить их видовую принадлежность, выявить географическую изоляцию, а также охарактеризовать генетическую обособленность выделенных штаммов по отношению к ризобиям, имеющим других растений-хозяев из трибы Fabeae. Для этого были просеквенированы один из фрагментов ITS (internally transcribed spacer) длиной 1000-1300 п.н. и фрагмент гена nodA длиной 666 п.н., а также проведен скрининг штаммов на наличие гена nodX, контролирующего хозяйскую специфичность ризобий. На основании полученных последовательностей были рассчитаны генетические расстояния между группами ризобий: изолятами из разных регионов (Армения, Дагестан, Северная Осетия) и от разных растений-хозяев (вавиловия, горох, клевер). Результаты секвенирования фрагмента ITS показали, что все изученные штаммы принадлежат к виду Rhizobium leguminosarum (биовар viciae ). ITS-дендрограмма выявила относительно высокую гетерогенность внутри группы изолятов, однако на nodA -дендрограмме они, напротив, формировали очень компактную группу. Несовпадение этих дендрограмм позволяет предположить, что ген nodA, сцепленный с генами хозяйской специфичности у ризобий, может активно переноситься в популяциях R. leguminosarum, обеспечивая свободное комбинирование специфичности к вавиловии с различными вариантами бактериальной хромосомы. Сравнение генетических расстояний по ITS для изолятов из трех регионов указывает на дивергенцию микросимбионтов вавиловии, связанную с географической изоляцией. Данные по генетическим расстояниям для гена nodA, а также присутствие гена nodX у всех изученных штаммов R. leguminosarum указывают на наличие хозяйской обособленности изученных штаммов внутри биовара viciae. Полученные корреляции происхождения штаммов со структурой гена nodA, по всей видимости, отражают наличие высокоспецифичных взаимодействий каждой группы штаммов R. leguminosarum со своими растениями-хозяевами, тогда как корреляции со структурой локуса ITS свидетельствуют об адаптации ризобий к почвенной среде обитания.

Еще

Бобово-ризобиаль-ный симбиоз

Короткий адрес: https://sciup.org/142133629

IDR: 142133629   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.5.655rus

Список литературы Филогенетический анализ штаммов рода Rhizobium, выделенных из клубеньков Vavilovia formosa (Stev.) Fed

  • Ljuština M., Miki A. Archaeological evidence for the domestication of lentil (Lens culinaris) and its distribution in Europe. J. Lentil Res., 2010, 4: 26-29.
  • Габриелян Е.Т. Род Vavilovia Fed. В кн.: Флора Армении. Т. 4/Под ред. А.Л. Тахтаджяна. АН ССР Армения, Ереван, 1962.
  • Дзюбенко Н.И., Дзюбенко Е.А. Vavilovia formosa (Stev.) An. Fed. Агроэкологический атлас России и сопредельных стран: экономически значимые растения, их вредители, болезни и сорные растения/Под ред. А.Н. Афонина, С.Л. Грина, Н.И. Дзюбенко, А.Н. Фролова. 2008 (online http://www.agroatlas.ru/ru/content/related/Vavilovia_formosa/).
  • Карягин И.И. Флора Азербайджана. Т. 5. Баку, 1954.
  • Maxted N., Ambrose M. Peas (Pisum L.). In: Plant genetic resources of legumes in the Mediterranean/N. Maxted, S.J. Bennett (eds.). Kluwer, Dordrecht, 2001.
  • Makasheva R.K., Drozd A.M., Adamova O.P., Golubev A.A. Perennial pea. Bull. Appl. Bot. Gen. Plant Breed., 1973, 51: 44-56.
  • Kenicer G., Smýkal P., Vishyakova M., Mikić A. Vavilovia formosa, an intriguing Pisum relative. Grain Legumes, 2009, 51: 8-12.
  • Safronova V.I., Kimeklis A.K., Chizhevskaya E.P., Belimov A.A., Andronov E.E., Pinaev A.G., Pukhaev A.R., Popov K.P., Tikhonovich I.A. Genetic diversity of rhizobia isolated from nodules of the relic species Vavilovia formosa (Stev.) Fed. Antonie van Leeuwenhoek, 2014, 105: 389-399 ( ) DOI: 10.1007/s10482-013-0089-9
  • Ma S.W., Iyer V.N. New field isolates of Rhizobium leguminosarum biovar viciae that nodulate the primitive pea cultivar Afghanistan in addition to modern cultivars. Appl. Environ. Microbiol., 1990, 56: 2206-2212.
  • Kozik A., Heidstra R., Horvath B., Kulikova O., Tikhonovich I., Ellis T.H.N., van Kammen A., Lie T.A., Bisseling T. Pea lines carrying syml or sym2 can be nodulated by Rhizobium strains containing nodX; sym1 and sym2 are allelic. Plant Sci., 1995, 108: 41-49 ( ) DOI: 10.1016/0168-9452(95)04123-C
  • Zhukov V., Radutoiu S., Madsen L.H., Rychagova T., Ovchinnikova E., Borisov A., Tikhonovich I., Stougaard J. The pea Sym37 receptor kinase gene controls infection-thread initiation and nodule development. MPMI, 2008, 21(12): 1600-1608 ( ) DOI: 10.1094/MPMI-21-12-1600
  • Novikova N., Safronova V. Transconjugants of Agrobacterium radiobacter harbouring sym genes of Rhizobium galegae can form an effective symbiosis with Medicago sativa. FEMS Microbiol Lett., 1992, 93: 261-268 ( ) DOI: 10.1111/j.1574-6968.1992.tb05107.x
  • Allen O.N. Experiments in soil bacteriology. Burgess Publishing Co., Minneapolis, 3d ed., 1959: 117.
  • Safronova V.I., Tikhonovich I.A. Automated cryobank of microorganisms: Unique possibilities for long-term authorized depositing of commercial microbial strains. In: Microbes in applied research: current advances and challenges/A. Mendez-Vilas (ed.). World Scientific Publishing Co., 2012: 331-334 ( ) DOI: 10.1142/9789814405041_0066
  • Румянцева М.Л., Симаров Б.В., Онищук О.П., Андронов Е.Е., Чижевская Е.П., Белова В.С., Курчак О.Н. Биологическое разнообразие клубеньковых бактерий в экосистемах и агроценозах: теоретические основы и методы. СПб-Пушкин, 2011.
  • Normand P., Ponsonnet C., Nesme X., Neyra M., Simonet P. ITS analysis of prokaryotes. In: Molecular microbial ecology manual/A.D.L. Akkermans, J.D. van Elsas, F.J. de Bruijn (eds.). Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, Netherlands, 1996: 1-12.
  • Ponsonnet C., Nesme X. Identification of Agrobacterium strains by PCR-RFLP analysis of pTi and chromosomal regions. Arch. Microbiol., 1994, 161: 300-309 ( ) DOI: 10.1007/BF00303584
  • Haukka K., Lindstrom K., Young J.P. Three phylogenetic groups of nodA and nifH genes in Sinorhizobium and Mesorhizobium isolates from leguminous trees growing in Africa and Latin America. Appl. Environ. Microbiol., 1998, 64: 419-426.
  • Андронов Е.Е., Пинаев А.Г., Першина Е.В., Чижевская Е.П. Научно-методические рекомендации по выделению высокоочищенных препаратов ДНК из объектов окружающей среды. СПб, 2011.
  • Okonechnikov K., Golosova O., Fursov M., the UGENE team. Unipro UGENE: a unified Bioinformatics toolkit. Bioinformatics, 2012, 28: 1166-1167 ( ) DOI: 10.1093/bioinformatics/bts091
  • Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M., Kumar S. MEGA5: Molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol. Biol. Evol., 2011, 28: 2731-2739 ( ) DOI: 10.1093/molbev/msr121
  • Ovtsyna A.O., Rademaker G.-J., Esser E., Weinman J., Rolfe B.G., Tikhonovich I.A., Lugtenberg B.J.J., Thomas-Oates J.E., Spaink H.P. Comparison of characteristics of the nodX genes from various Rhizobium leguminosarum strains. MPMI, 1999, 12: 252-258 ( ) DOI: 10.1094/MPMI.1999.12.3.252
  • Laguerre G., Nour S.M., Macheret V., Sanjuan J., Drouin P., Amarger N. Classification of rhizobia based on nodC and nifH gene analysis reveals a close phylogenetic relationship among Phaseolus vulgaris symbionts. Microbiology, 2001, 147: 981-993 ( ) DOI: 10.1099/00221287-147-4-981
Еще
Статья научная