Фитоплазмозы хвойных
Автор: Богоутдинов Дамир Забихуллович
Журнал: Известия Самарского научного центра Российской академии наук @izvestiya-ssc
Рубрика: Наземные экосистемы
Статья в выпуске: 5-5 т.16, 2014 года.
Бесплатный доступ
Впервые в России в Самарской области выявлены фитоплазмы группы столбура 16SrXII-A ‘ Candidatus Phytoplasma solani’ в можжевельнике казацком ( Juniperus sabina L.) и туе западной ( Thuja occidentals L.), а также неидентифицированные фитоплазмы в сосне обыкновенной (Pinus silvestris L.).
Фитоплазмы группы столбура 16srxii-a 'candidatus phytoplasma solani ', можжевельник казацкий (juniperus sabina l.), туя западная (thuja occidentals l.), сосна обыкновенная (pinus silvestris l.), самарская область России
Короткий адрес: https://sciup.org/148203447
IDR: 148203447
Текст научной статьи Фитоплазмозы хвойных
Х войные относятся к древнейшему отделу растений Pinóphyta или Coníferae . В отдельных регионах северного полушария они занимают доминирующее распространение. В настоящее время известны экземпляры сосен и елей, возраст которых насчитывает 4-8 тысяч лет. Неоценимо их экономическое, экологическое, фитосанитар-ное и эстетическое значение. Многообразие видов и форм делают хвойные растения незаменимыми при конструировании городских ландшафтов.
Несмотря на экологическую пластичность, выносливость и долговечность, многие виды хвойных в урбанистической среде подвержены неблагоприятному антропогенному воздействию, усиливающему аддитивное действие стрессоров биологического и абиотического характера. В связи с этим, ряд заболеваний древесных культур имеют невыясненную этиологию. В России неизвестны причины поражения деревьев желтухами, проявляющихся аномалиями развития. Для них характерно обесцвечивание листьев и хвои или изменение нормальной окраски, деформация вегетативных органов: карликовость, повышенная кустистость (пролиферация, ведьмина мётла), гутаперчивость побегов, проявляющаяся плакучими, стелящимися, извитыми формами. При сильном развитии заболеваний, отмечается отмирание листвы, хвои, отдельных ветвей и всего растения. У цветущих форм проявляются видоизменения цветка: позеленение лепестков (вирес-ценция), изменение интенсивности окраски, превращение элементов цветка в листья (филлодия), или в побеги (пролиферация), что может вызывать стерильность и возвратное цветение в конце вегетации. В древесине отмечается некроз тканей флоэмы. Растения с признаками желтух более интенсивно поражаются в последствие грибами и бактериями, что осложняет диагностику заболеваний. В 2012-2013 гг. в Самарской области впер-
вые в России выявлены фитоплазмы в 34 видах древесных, в том числе в хвойных.
Фитоплазмы (ФП) относятся к бактериям класса Mollicutes, порядка Acholeplasmatales, семейства Acholeplasmataceae. ФП, формально называемые ранее MLO (микоплазмоподобные организмы), - являются плеоморфными, лишёнными клеточной стенки бактериями с минимальным среди клеточных организмов геномом (530 – 1350 kbp), с низким содержанием гуанина и цитозина (23-29%). ФП являются одной из причин заболеваний растений типа желтух, которые к настоящему времени зарегистрированы более чем у 1000 видов растений, принадлежащих к 100 семействам [17, 21]. ФП заселяют ситовидные элементы флоэмы растений, а также различные ткани и органы насекомых-переносчиков, преимущественно цикад и псиллид [8, 24]. ФП нельзя вырастить на искусственных средах, но можно выявить при исследовании срезов тканей растений и насекомых в электронный микроскоп, а также молекулярными методами анализа 16S rRNA генов. Временный таксономический статус « Candidatus » используемый для не полностью охарактеризованных микроорганизмов, также был принят для наименования фитоплазм – ‘ Ca . Phytoplasma species’ [3, 6, 8, 19]. ФП классифицированы в систему групп и подгрупп на основании RFLP анализа 16S rRNA генов (16Sr DNA) [15, 16]. Виды одной группы ФП имеют сходство нуклеотидных последовательностей 16S rRNA генов больше 97,5% [8]. К настоящему времени выделено около 30 групп фитоплазм [15, 16]. В России, где молекулярные исследования фито-плазменных болезней растений начаты сравнительно недавно (2006), фитоплазменная природа заболеваний установлена для 97 видов растений из 35 семейств [2], из них половина выявлены в Самарской области (54 вида из 19 семейств) [1]. В России в растениях определены фитоплазмы 8 таксономических групп.
Из 416 видов растений зарегистрированных нами в условиях России с признаками желтух, около 50 относится к древесным, из них, только
10 видов хвойных. В мире фитоплазменная природа также доказана для ограниченного круга древесных и хвойных растений.
С 1998 по 2011 гг. в Индии, Испании, Италии, Германии, Китае, Литве, Польше, США, Украине, Чехии и Хорватии ФП выявлены в пятнадцати видах трёх семейств хвойных растений. Определены фитоплазмы пяти групп, из них преобладающими являются ФП, принадлежащие к группе 16SrXXI-A ‘Candidatus Phytoplasma pini’, реже вывлялись ФП из групп: 16SrIII 'Candidatus Phytoplasma pruni'., 16SrIX-E ‘Candidatus Phytoplasma phoenicium’, 16SrI-B 'Candidatus Phytoplasma asteris' и 16SrVI ‘Candi-datus phytoplasmas trifolii’ (таблица). Характерными признаками заражения хвойных фитоплазмами является хлороз хвои, повышенная кустистость, образование шаровидных ведьминых мётел на отдельных ветвях.
Таблица. Виды хвойных и виды фитоплазм (литературные данные 1998-2014 гг.)
№ |
Виды растений |
Выявленные группы фитоплазмы |
страна |
Авторы, год |
1 |
Араукария разнолистная – Araucaria heterophylla (Salisb.) Franko. |
16SrVI ‘ Ca. phytoplasmas trifolii’ |
Индия |
Gupta M.K., et. al., 2009 |
2 |
Ель голубая – Picea pungens Engelm. |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Польша, Чехия |
Kaminska, M., et. al., 2011 |
3 |
Кипарис Cupressus L. |
16SrIII ' Ca. Phytoplasma pruni'. |
Италия |
Paltrinieri S., et. al., 1998 |
4 |
Лиственница европейская – Larix decidua M ILL ., |
16SrI-B 'Ca. Phytoplasma asteris' |
Украина |
Jomantiene R., et. al., 2011 |
5 |
Можжевельник западный – Juniperus occidentalis Hook. |
16SrIX-E ‘ Ca. Phytoplasma phoenicium’ |
США |
Davis R.E., et. al., 2010 |
6 |
Пихта высокорослая – Abies procera Rehder . |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Польша, Чехия |
Kaminska, M., et. al., 2011 |
7 |
Сосна алеппская – Pinus hale-pensis Mill. |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Германия, Испания, Польша |
Schneider B., et. al., 2005 |
8 |
Сосна банкса – Pinus banksiana Lamb. |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Польша, Чехия |
Kaminska, M., et. al., 2011 |
9 |
Сосна горная – P. mugo Turra. |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Польша, Чехия |
Kaminska, M., et. al., 2011 |
10 |
Сосна китайская – P. tabuliformis |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Польша, Чехия |
Kaminska, M., et. al., 2011 |
11 |
Сосна красная-китайская – P. tabuliformis Carr., |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Польша, Чехия |
Kaminska, M., et. al., 2011 |
12 |
Сосна обыкновенная – Pinus silvestris L. |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’, |
Германия, Испания, Литва, Польша, Хорватия |
Schneider B., et. al., 2005; Sliwa H., et. al., 2008; Valiunas D., et. al., 2010; Jezic M., et. al., 2012 |
13 |
Сосна чёрная – P. nigra J.F. Arnold. |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Польша, Чехия |
Kaminska, М., et. al., 2011 |
14 |
Тсуга канадская – Tsuga canadensis (L.) Carrierre, |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Польша, Чехия |
Kaminska, М., et. al., 2011 |
15 |
Таксодиум двурядный – Taxodium distichum var. imbri-carium (L.) L . C. Rich. |
16SrXXI-A ‘ Ca. Phytoplasma pini’ |
Китай |
Huang S., et. al., 2011 |
В июле 2012 г. в поселке Усть-Кинельский Самарской области (СГСХА) были отобраны образцы древесных для проведения молекулярного анализа на выявление фитоплазм. Установлено, что в хвойных растениях семейства кипарисовых ( Cupressáceae ): туи западной ( Thuja occidentals L.) и можжевельника казацкого ( Juniperus sabina L.) с признаками хлороза, повышенной кустистости, отмиранием верхушек побегов и отдельных нижних ветвей выявлены ФП группы столбура
16SrXII-A ‘Candidatus Phytoplasma solani’. В конце мая 2013 г. образцы сосны обыкновенной, лиственницы европейской с признаками шаровидных ведьминых метел и хлороза хвои, а также можжевельника обыкновенного, ели голубой, ели обыкновенной и туи западной (пирамидальная форма) с признаками повышенной кустистости проанализированы ПЦР во ВНИИФ. Только в 2 образцах сосны с ведьминой метлой была обнаружена фитоплазма, но не удалось установить её таксономическую принадлежность (предположительно группы летального хлороза кокоса -16SrIV). Отсутствие фитоплазм в большинстве проанализированных образцов в мае 2013 г. согласуется с результатами зарубежных исследований. Отмечается, что фитоплазмы выявляются не во всех экземплярах древесных растений, даже при наличие типичных признаков или при обнаружения ФП в анализируемых растениях в прежние годы. И наоборот, ФП выявлялись в растениях без явных признаков фитоплазменного поражения. Исследователи высказываются о возможном существовании других неизвестных факторов, влияющих на проявление подобных признаков, или влияющих на концентрацию ФП и создающих трудности при их выявлении [22].
По нашему мнению, в данном случае имеет место более простые причины. Установлено, что ФП в растениях северного полушария способны сохранятся в сосудах корней многолетних растений. В период вегетации они пассивно мигрируют во вновь образуемые побеги и листья, достигая там максимальных концентраций, удобных для определения в середине и конце вегетации. Концентрация ФП также зависит от условий окружающей среды. К примеру, фитоплазмы стол-бура достигают максимальных концентраций, вызывающих патологические изменения у травянистых видов в июле-августе. В эти месяцы обычна жаркая погода и минимальное количество осадков, что способствует повышенной транспирации и более интенсивному подъёму ФП из корней в верхушки побегов. Вместе с тем, условия засухи снижают влагообеспеченность растений, что повышает концентрацию как ФП, так и обусловленной их воздействием повышенной концентрации эндогормонов. Последние, обуславливают деформацию органов растений. На многолетних растениях типичные признаки фи-топлазменного поражения могут быть обусловлены критическим уровнем концентрации ФП в предшествующие сезоны, несмотря на то, что в текущем сезоне патогены не выявлялись. Признаки фитоплазменного поражения хвойных встречаются на всей территории России. В условиях Самарской области в урбанистических условиях признаки желтух отмечались более чем на 70% разных видов хвойных растений, а в природной среде на 25% деревьев сосны обыкновенной. Патологическое действие ФП не ограничивается деформацией органов растений, они могли быть одним из главных факторов суховершинности и отмирания многих видов древесных после острозасушливых 2010-2011 гг.
Полученные данные по обнаружению ФП в хвойных многолетних растениях пополнили список растений многолетних резерваторов фитоплазм групп столбура и позволяют объяснить причины патологий типа желтух хвойных растений с невыясненной этиологией. Фитоплазмозы могут быть одним из главных факторов, вызывающих усыхание древесных и их слабое развитие после пересадки, а также усыхание листьев и хвои в засушливый период вегетации. По нашему убеждению, многие формы кустарниковых и древесных видов растений, в том числе хвойных, широко используемые при озеленении в своей основе имеют фитоплазмоносительство. Пирамидальные, карликовые, стелящиеся, пендульные и извитые формы, а также растения, успешно подвергающиеся стрижке-формировке и обладающие изменчивой окраской хвои и листвы, - главным образом размножающиеся вегетативным укоренением или прививкой, - свидетельствуют в пользу данного факта.
Автор выражает благодарность сотрудникам группы вирусологии Всероссийского НИИ фитопатологии за проведение молекулярногенетических анализов.
Список литературы Фитоплазмозы хвойных
- Богоутдинов Д.З. Фитоплазмозы в Самарской области//Материалы третьего Всероссийского съезда по защите растений, Санкт-Петербург, 2013, Т. 1. С. 208-209.
- Можаева К.А., Гирсова Н.В., Кастальева Т.Б., Богоутдинов Д.З., Инг-Минг Ли. Результаты и перспективы изучения фитоплазменных болезней растений//Материала третьего Всероссийского съезда по защите растений, Санкт-Петербург, 2013, Т. 1. С. 260-262.
- Davis R.E., Dally E.L., Zhao E.L., Lee I.-M., Jomantene R., Detweiler A.J., Putman M.L. First report of a new subgroup 16SrIX-E Сandidatus Phytoplasmas phoenicum’ -related phytoplasma, associated with Juniper witches’ broom disease in Oregon USA//Plant pathology, 2010, 59, p. 1161.
- Davis R., Zhao Y., Dally E.L., Lee I.-M., Jomantiene R., Douglas S.M. Candidatus Phytoplasma pruni’, a novel taxon associated with X-diseases of stone fruits, Prunus spp.:multilocus characterization based on 16S rRNA, secY, and ribosomal protein genes//International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2013. 63. P. 766-776.
- Gupta M.K., Samad A., Shasany A.K., Ajayakumar P.V., Alam M. First report of a 16SrVI ‘Candidatus phytoplasmas trifolii’ isolate infecting Norfolk Island pine (Araucaria heterophylla) in India//New disease reports, 2009, N 19, p. 39.
- Harrison N.A., Gundersen-Rindal D., Davis R.E. Genus I. “Candidatus Phytoplasama” gen. nov. IRPCM, 2011.
- Huang S., Tiwari A.K., Rao G.P. ‘Candidatus Phytoplasma pini’ affecting Taxodium distichum var. imbricarium in China (Abstract)//Phytopathogenic Mollicutes, 2011. 1(2). P. 91-94.
- IRPCM Phytoplasma/Spiroplasma Working Team -phytoplasma Taxonomy Group (IRPCM). ‘Candidatus Phytoplasama’, a taxon for wall-less, non-helical procariotes that colonize plant phloem and insects/International Journal of Systemic and Evolutionary Microbiology, 2004. 54. P. 1243-1255.
- Jezic M., Poljak I., Idzojtic M., Curcovic-Perica M. First report of ‘Candidatus Phytoplasma pini’ in Croatia (Abstract). In Citti et. al. (Eds.). Book of abstracts of the 19th Congress of international Organization for Mycoplasmology, 2012. P. 158-159.
- Jomantiene R., Valiunas D., Ivanauscas A., Ursanaviciene L., Staniulis J., Davis R.E. Larch is a new host for a group 16SrI, subgroup -B phytoplasma in Ukraine//Bulletin of insectology, 2011, n. 64, p.101-102.
- Kaminska, M., Berniak H. detection and identification of three ‘Candidatus Phytoplasma’ species in Picea spp. trees in Poland//Journal of Phytopathology, 2011. 159. P. 796-798.
- Kaminska, M., Berniak H. and Obdrzalek J. New natural host plants of ‘Candidatus Phytoplasma pini’ in Poland and the Czech Republic//Plant Pathology, 2011, vol. 60: 1023-1029.
- Lee I.M., Gundersen-Rindal D.E., Davis R.E., Bartoszyk I.M. Revised classification scheme of phytoplasmas on RFLP analyses of 16SrRNA and ribosomal protein gene sequences.//International Journal of Systematic bacteriology, 1998. 48(4). P. 1153-1169.
- Lee I.M., Davis R.E., Gundersen-Rindal D.E. Phytoplasma: Mollicutes. Annual Review Microbiology, 2000. 54. P. 221-255.
- McCoy R.E., Caudwell A., Chang C.J., Chen T.A., Chykowski L.N., Cousin M.T., Dale J.L., de Leeuw G.T.N., Golino D.A., Hackett K.J., Kirkpatrick B.C., Marwitz R., Petzold H., Sinha R.C., Whitcomb R.F., Yang I.L., Zhu B.M., Seemüller E. Plant diseases associated with mycoplasma-like organisms. In The Mycoplasmas, 1989. vol. 5. Whitcomb R.F., Tully J.G. (ed.) Academic Press, New York.
- Paltrinieri S., Pondrelli M., Bertaccini A. X-disease-related phytoplasmas in ornamental trees and shrubs with witches’ broom and malformation symptoms.//J. plant pathology, 1998, v. 80, p. 261.
- Quaglino F., Zhao Y., Casati P., Bulgari D., Bianco P.A., Wei W., Davis R.E. ‘Candidatus Phytoplasma solani’, a novel taxon associated with stolbur and bois noir related diseases of plants//International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2013 DOI: 1099/ijs.0.044750-0
- Schneider B, E. Torres, M.P. Martin, M. Schroder, H-D. Behnke В., Seemuller Е. ‘Candidatus Phytoplasma pini’, a novel taxon from Pinus silvestris and Pinus halepensis.//International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology, 2005, vol. 55: 303-307.
- Seemüller E., Garnier M., Schneider B. Mycoplasmas of plants and insects. In Mollecular Biology and Pathogenicity of Mycoplasmas. Razin S., Hermann R. eds. Kluwer Academic Pienum Publishers, Dordecht, Netherlands P. 91-116.
- Sliwa H., Kaminska M., Korszun S., Adler P. Detection of ‘Candidatus Phytoplasma pini’ in Pinus sylvestris trees in Poland/Journal of Phytopathology, 2008. 156 (2). P. 88-92.
- Valiunas D., Jomantiene R., Ivanauskas A., Schneideris D., Staniulis J., Davis R.E. A possible threat to the timber industry ‘Candidatus phytoplasma pini’ in scotch pine (Pinus silvestris l.) in Lithuania. In book: Current status and perspectives in phytoplasmas diseases and management. Sitges, Spain, 2010, p. 38.
- Weintraub P.G., Beanland L. Insect vector of phytoplasma//Annual Review of Entomology, 2006. 51. P. 91-111.