Физиолого-биохимические характеристики микропобегов чая (Camellia sinensis L.) в условиях in vitro: норма, осмотический стресс, влияние кальция

Автор: Малюкова Л.С., Нечаева Т.Л., Зубова М.Ю., Гвасалия М.В., Конинская Н.Г., Загоскина Н.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Физиология, биохимия

Статья в выпуске: 5 т.55, 2020 года.

Бесплатный доступ

К важным факторам, определяющим продуктивность растений, относится их устойчивость к стрессовым воздействиям, в том числе к засухе, гипотермии, минеральной недостаточности и засолению. Решению этих проблем, актуальных в связи со всеобщей аридизацией климата, посвящена серия исследований на различных сельскохозяйственных культурах (J.K. Zhu, 2016; E. Fleta-Soriano, S. Munné-Bosch, 2016), в том числе на чае (Camellia sinensis L.) (T.K. Maritim с соавт., 2015; Л.С. Самарина с соавт., 2019). При достаточно детальном изучении физиолого-биохимических и молекулярных механизмов устойчивости чая к засухе практически не охвачена тема их экзогенной регуляции на основе использования химических и биологических веществ. При этом на многих культурах показана важная роль ионов кальция (Ca2+) в распознавании клеткой внешнего стрессорного воздействия и запуске системы трансдукции ответного сигнала (M.C. Kim, 2009; Е.Г Рихванов с соавт., 2014). При исследовании этих аспектов достаточно часто в качестве «моделей засухи» используют агаризованные питательные среды с добавлением в них осмотически активных веществ (R.M. Pérez-Clemente с соавт., 2012; M.K. Rai с соавт., 2011) и модельные биосистемы (микропобеги и ткани in vitro), позволяющие раскрыть клеточные механизмы адаптации. Однако в отношении растений чая число подобных исследований невелико (Л.С. Самарина с соавт., 2018; М.В. Гвасалия с соавт., 2019), и они направлены на расшифровку биохимических и молекулярных ответов растений на стрессы. В настоящем сообщении мы впервые на основе отечественных методик получения микропобегов чая в культуре in vitro (М.В. Гвасалия, 2013) и протоколов моделирования осмотического стресса исследовали роль кальция в адаптации растений к стрессовым условиям, вызванным длительным культивированием и осмотическим стрессом, а также продемонстрировали перспективу изучения роли экзогенных индукторов в повышении устойчивости растений на такого рода «моделях засухи». Целью работы было выявление особенностей функционального состояния культивируемых in vitro микропобегов чая, выращиваемых в оптимальных условиях и при моделировании слабого осмотического стресса, обусловленного действием маннита, на фоне разных концентраций кальция (Ca2+) в питательной среде. Оценивали морфофизиологическое состояние листьев, их оводненность, проницаемость мембран растительных клеток, содержание малонового диальдегида, пролина и фотосинтетических пигментов. Установлено, что при повышении концентрации Ca2+ в питательной среде (с 440 до 880 мг/л) при длительном культивировании микропобегов чая in vitro (4 мес) происходит замедление формирования и развития их листьев, а также достоверное снижение содержания малонового диальдегида и проницаемости мембран растительных клеток (в среднем на 50 %, р ≤ 0,05), свидетельствующее о менее выраженном развитии процессов липопероксидации. Добавление в питательную среду маннита (40 г/л) снижало оводненность побегов (в среднем на 2 %, р ≤ 0,05), формируя тем самым незначительный осмотический стресс, что приводило к накоплению пролина (увеличение на 30-40 %, р ≤ 0,05), а также к структурно-функциональной перестройке фотосинтетического аппарата (уменьшение количества фотосинтетических пигментов в среднем на 35-40 %). При этом отмечали достоверное снижение содержания малонового альдегида (на 50-70 %, р ≤ 0,05) и интенсивности выхода электролитов из тканей листьев (в среднем на 50 %, р ≤ 0,05), что указывало на менее выраженный окислительный стресс в сравнении с контролем (без добавления маннита). Повышение концентрации Ca2+ в питательной среде (с 440 до 880 мг/л) (на фоне добавления маннита) не оказывало достоверного влияния на оводненность тканей и структуру фотосинтетического аппарата (содержание и соотношение хлорофиллов/каротиноидов). Незначительное воздействие кальция (на фоне маннита) проявилось в достоверном уменьшении содержания малонового диальдегида на 20 мкмоль/г сухой массы. Следовательно, добавление в питательную среду повышенной концентрации кальция (660-880 мг/л) обеспечивает улучшение функционального состояния длительно культивируемых микропобегов чая in vitro (4 мес) за счет снижения активности липопероксидации в мембранах и повышения их стабильности. Выявленные закономерности доказывают положительную роль ионов кальция в снижении комбинированного окислительного стресса, вызванного длительным культивированием растений in vitro в сочетании с осмотическим стрессом.

Еще

Чай, camellia sinensis l, микропобеги in vitro, кальций, маннит, осмотический стресс, пигменты, пролин, малоновый диальдегид

Короткий адрес: https://sciup.org/142229439

IDR: 142229439   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2020.5.970rus

Список литературы Физиолого-биохимические характеристики микропобегов чая (Camellia sinensis L.) в условиях in vitro: норма, осмотический стресс, влияние кальция

  • Zhu J.K. Abiotic stress signaling and responses in plants. Cell, 2016, 167(2): 313-324 (doi: 10.1016/j.cell.2016.08.029).
  • Fleta-Soriano E., Munne-Bosch S. Stress memory and the inevitable effects of drought: a physiological perspective. Frontiers in Plant Science, 2016, 7: 143 (doi: 10.3389/fpls.2016.00143).
  • Marcinska I., Czyczylo-Mysza I., Skrzypek E., Filek M., Grzesiak S., Grzesiak M.T., Jan-owiak F., Hura T., Dziurka M., Dziurka K., Nowakowska A., Quarrie S.A. Impact of osmotic stress on physiological and biochemical characteristics in drought-susceptible and drought-resistant wheat genotypes. Acta Physiologiae Plantarum, 2013, 35(2): 451-461 (doi: 10.1007/s11738-012-1088-6).
  • Самарина Л.С., Рындин А.В., Малюкова Л.С., Гвасалия М.В., Маляровская В.И. Физиологические и генетические механизмы ответа чайного растения Camellia sinensis (L.) Kuntze на засуху. Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(3): 458-468 (doi: 10.15389/agrobiol-ogy.2019.3.458rus).
  • Fayez K.A., Bazaid S.A. Improving drought and salinity tolerance in barley by application of salicylic acid and potassium nitrate. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 2014, 13(1): 45-55 (doi: 10.1016/j.jssas.2013.01.001).
  • Yang Y., Guo Y. Unraveling salt stress signaling in plants. Journal of Integrative Plant Biology, 2018, 60(9): 796-804 (doi: 10.1111/jipb.12689).
  • Медведев С.С. Кальциевая сигнальная система растений. Физиология растений, 2005, 52(2): 282-305.
  • Song W.Y., Zhang Z.B., Shao H.B., Guo X.L., Cao H.X., Zhao H.B., Fu Z.Y., Hu X.J. Relationship between calcium decoding elements and plant abiotic-stress resistance. International Journal of Biological Sciences, 2008, 4(2): 116-125 (doi: 10.7150/ijbs.4.116).
  • Maritim T.K., Kamunya S.M., Mireji P., Wendia C.M., Muoki R.C., Cheruiyot E.K., Wachira F.N. Physiological and biochemical response of tea (Camellia sinensis (L.) O. Kuntze) to water-deficit stress. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 2015, 90(4): 395400 (doi: 10.1080/14620316.2015.11513200. 0.4236/ajps.2012.34054).
  • Hetherington A.M., Brownlee C. The generation of Ca2+ signals in plants. Annual Review of Plant Biology, 2004, 55: 401-427 (doi: 10.1146/annurev.arplant.55.031903.141624).
  • Kim M.C. Calcium and calmodulin-mediated regulation of gene expression in plant. Molecular Plant, 2009, 2(1): 13-21 (doi: 10.1093/mp/ssn091).
  • Saidi Y., Finka A., Muriset M., Bromberg Z., Weiss Y. G., Maathuis F.J., Goloubinoff P. The heat shock response in moss plants is regulated by specific calcium-permeable channels in the plasma membrane. Plant Cell, 2009, 21: 2829-2843 (doi: 10.1105/tpc.108.065318).
  • Рихванов Е.Г., Федосеева И.В., Пятрикас Д.В., Боровский Г.Б., Войников В.К. Механизм функционирования кальциевой сигнальной системы у растений при действии теплового стресса. Роль митохондрий в этом процессе. Физиология растений, 2014, 61(2): 155-169 (doi: 10.7868/S0015330314020134).
  • Shu M.Y., Fan M.Q. Effect of osmotic stress and calcium on membrane-lipid peroxidation and the activity of defense enzymes in fir seedling. Forest Research, 2000, 4: 391-396.
  • Upadhyaya H., Panda S.K., Dutta B.K. CaCl2 improves post-drought recovery potential in Camellia sinensis (l) O. Kuntze. Plant Cell Reports, 2011, 30(4): 495-503 (doi: 10.1007/s00299-010-0958-x).
  • Bhagat R.M., Baruah R.D., Cacigue S. Climate and tea [Camellia sinensis (L.) O. Kuntze] production with special reference to north eastern India: a review. Journal of Environmental Research and Development, 2010, 4(4): 1017-1028.
  • Малюкова Л.С., Козлова Н.В., Рогожина Е.В., Струкова Д.В., Керимзаде В.В., Великий А.В. Возделывание субтропических культур на Черноморском побережье России: эколого-агрохимические аспекты. Сельскохозяйственная биология, 2014, 3: 24-31 (doi: 10.15389/agrobiology.2014.3.24rus).
  • Baruah R.D., Bhagat R.M. Climate trends of Northeastern India: a longterm pragmatic analysis for tea production. Two and a Bud, 2012, 59(2): 46-49.
  • Osmolovskaya N., Shumilina J., Kim A., Didio A., Grishina T., Bilova T., Frolov A. Methodology of drought stress research: experimental setup and physiological characterization. International Journal of Molecular Sciences, 2018, 19(12): 4089-4114 (doi: 10.3390/ijms19124089).
  • Rai M.K., Kalia R.K., Singh R., Gangola M.P., Dhawan A.K. Developing stress tolerant plants through in vitro selection — an overview of the recent progress. Environmental and Experimental Botany, 2011, 71(1): 89-98 (doi: 10.1016/j.envexpbot.2010.10.021).
  • Pérez-Clemente R.M., Gómez-Cadenas A. In vitro tissue culture, a tool for the study and breeding of plants subjected to abiotic stress conditions. In: Recent advances in plant in vitro culture /A. Leva, L.M.R. Rinaldi (eds.). IntechOpen Limited, London, 2012: 91-108 (doi: 10.5772/50671).
  • Sunaina N.A., Singh N.B. PEG imposed water deficit and physiological alterations in hydroponic cabbage. Iranian Journal of Plant Physiology, 2016, 6(2): 1651-1658.
  • Gelmesa D., Dechassa N., Mohammed W., Gebre E., Monneveux P., Bьndig C., Winkelmann T. In vitro screening of potato genotypes for osmotic stress tolerance. Open Agriculture, 2017, 2(1): 308-316 (doi: 10.1515/opag-2017-0035).
  • Piwowarczyk B., Kami ska I., Rybi ski W. Influence of PEG generated osmotic stress on shoot regeneration and some biochemical parameters in Lathyrus culture. Czech Journal of Genetics and Plant Breeding, 2014, 50(2): 77-83 (doi: 10.17221/110/2013-cjgpb).
  • Abu-Romman S., Suwwan M., Al-Shadiadeh A., Hasan H. Effects of osmotic stress on cucumber (Cucumis sativus l.) microshoots cultured on proliferation medium. World Applied Sciences Journal, 2012, 20(2): 177-181 (doi: 10.5829/idosi.wasj.2012.20.02.2817).
  • Tejavathi D.H., Devaraj V.R., Murthy S.M., Nijagunaiah R., Shobha K. Effect of PEG induced osmotic stress on proline, protein and relative water content in vitro plants of Macrotyloma uni-florum (Lam.) Verdc. Acta Hortic., 2010, 865: 87-93 (doi: 10.17660/ActaHortic.2010.865.10).
  • Гвасалия М.В., Самарина Л.С., Малюкова Л.С., Маляровская В.И., Рахмангулов Р.С., Конинская Н.Г., Платонова Н.Б., Пащенко О.И. Влияние маннита на рост и физиологические параметры микропобегов чая (Camellia sinensis (L) O. Kuntze) в культуре in vitro. Вестник Мичуринского государственного аграрного университета, 2019, 4(59): 49-53.
  • Гвасалия М.В. Отбор на засухоустойчивость соматических клонов растений чая (Camellia sinensis (L) O. Kuntze) в культуре in vitro. Новые технологии, 2020, 3: 117-124 (doi: 10.24411/2072-0920-2020-10313).
  • Гвасалия М.В. Клональное микроразмножение растений чая (Thea sinensis L.) в культуре in vitro. Садоводство и виноградарство, 2013, 4: 20-22.
  • Зубова М.Ю., Николаева Т.Н., Нечаева Т.Л., Малюкова Л.С., Загоскина Н.В. О содержании пигментов, фенольных соединений и антирадикальной активности молодых побегов чая (Сamellia sinensis L.). Химия растительного сырья, 2019, 4: 249-257 (doi: 10.14258/jcprm2019046065).
  • Yoshida К., Matsuo К. A simple method of evaluating the freezing resistance of tea plants (Camellia sinensis (L.) Kuntze) by measuring electrolyte leakage from low-temperature-treated overwintering buds and leaves. Chagyo Kenkyu Hokoku (Tea Research Journal), 2012, 113: 63-69 (doi: 10.5979/cha.2012.113-63).
  • Цыпурская Е.В., Казанцева В.В., Фесенко А.Н., Загоскина Н.В. Рост проростков гречихи обыкновенной (Fagopyrum esculentum) и накопление первичных и вторичных метаболитов при различных условиях минерального питания. Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(5): 946-957 (doi: 10.15389/agrobiology.2019.5.946rus).
  • Шлык А. А. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев. В сб.: Биохимические методы в физиологии растений. М., 1971: 154-170.
  • Tholakalabavi A., Zwiazek J.J., Thorpe T.A. Effect of mannitol and glucose-induced osmotic stress on growth, water relations, and solute composition of cell suspension cultures of poplar (Populus deltoides var. occidentalis) in relation to anthocyanin accumulation. In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 1994, 30(3): 164-170 (doi: 10.1007/bf02632208).
  • Xu C., Li X., Zhang L. The effect of calcium chloride on growth, photosynthesis, and antioxidant responses of Zoysia japonica under drought conditions. PloS ONE, 2013, 8(7): e68214 (doi: 10.1371/journal.pone.0068214).
  • Li Z., Tan X.F., Lu K., Liu Z.M., Wu L.L. The effect of CaCl2 on calcium content, photosynthesis, and chlorophyll fluorescence of tung tree seedlings under drought conditions. Photosyn-thetica, 2017, 55(3): 553-560 (doi: 10.1007/s11099-016-0676-x).
  • Kaczmarek M., Fedorowicz-Stronska O., Glowacka K., Waskiewicz A., Sadowski J. CaCl2 treatment im-proves drought stress tolerance in barley (Hordeum vulgare L.). Acta Physiologiae Planta-rum, 2017, 39(1): 41-52 (doi: 10.1007/s11738-016-2336-y).
  • Farmer E.E., Mueller M.J. ROS-mediated lipid peroxidation and RES-activated signaling. Annual Review of Plant Biology, 2013, 64: 429-450 (doi: 10.1146/annurev-arplant-050312-120132).
  • Noctor G., Mhamdi A., Foyer C.H. The roles of reactive oxygen metabolism in drought: not so cut and dried. Plant Physiology, 2014, 164(4): 1636-1648 (doi: 10.1104/pp.113.233478).
  • Madany M., Khalil R. Seed priming with ascorbic acid or calcium chloride mitigates the adverse effects of drought stress in sunflower (Helianthus annuus L.) seedlings. The Egyptian Journal of Experimental Biology (Botany), 2017, 13(1): 119-133 (doi: 10.5455/egyjebb.20170409090612).
  • Demidchik V., Straltsova D., Medvedev S.S., Pozhvanov G.A., Sokolik A., Yurin V. Stress-induced electrolyte leakage: the role of K+-permeable channels and involvement in programmed cell death and metabolic adjustment. Journal of Experimental Botany, 2014, 65(5): 1259-1270 (doi: 10.1093/jxb/eru004).
  • Hu W., Tian S.B., Di Q., Duan S.H., Dai K. Effects of exogenous calcium on mesophyll cell ultrastructure, gas exchange, and photosystem II in tobacco (Nicotiana tabacum Linn.) under drought stress. Photosynthetica, 2018, 56(4): 1204-1211 (doi: 10.1007/s11099-018-0822-8).
  • Софронова В.Е., Чепалов В.А., Дымова O.B., Головко Т.К. Роль пигментной системы вечнозеленого кустарничка Ephedra monosperma в адаптации к климату Центральной Якутии. Физиология растений, 2014, 61(2): 266-274 (doi: 10.7868/s001533031401014x).
  • Fathi A., Tari D.B. Effect of drought stress and its mechanism in plant. International Journal of Life Sciences, 2016, 10(1): 1-6 (doi: 10.3126/ijls.v10i1.14509).
  • Sun T., Yuan H., Cao H., Yazdani M., Tadmor Y., Li L. Carotenoid metabolism in plants: the role of plastids. Molecular Plant, 2018, 11(1): 58-74 (doi: 10.1016/j.molp.2017.09.010).
Еще
Статья научная