Флавоноиды Russowia sogdiana (Bunge) B. Fedtsch

Тожибоев М.М. Кодиров Р.Ш.

Журнал: Мировая наука @science-j

Рубрика: Основной раздел

Статья в выпуске: 10 (19), 2018 года.

Бесплатный доступ

Статья посвящена изучению флавоноидов надземной части Russowia sogdiana (Bunge) B. Fedtsch. (руссовия согдийская) семейства Asteraceae.

флавоны \ флавонолы \ о- и с-гликозиды

Похожие статьи в разделе Систематика растений

Материалы к флоре Волгоградской области
Материалы к флоре Волгоградской области

С.А. Сенатор, В.М. Васюков, Е.Г. Зибзеев, А.Ю. Королюк, С.В. Саксонов

Природные флавоноиды russowia sogdiana (bge). Fedsch
Природные флавоноиды russowia sogdiana (bge). Fedsch

Тожибоев М.М., Кодиров Р.Ш., Махаммаджонов Т.А.

Флавоноиды Russowia sogdiana (Bge). Fedsch
Флавоноиды Russowia sogdiana (Bge). Fedsch

Одиров Р.Ш., Мамазулунов Н.Х., Ботиров Э.Х., Юсупов М.М.

Короткий адрес: https://sciup.org/140263100

IDS: 140263100

Flavonoids of Russowia sogdiana (Bge). Fedsch

Flavonoids are important and even the most active principles of plants and herbal preparations used in folk and scientific medicine as bile, anti-inflammatory, antispasmodic, antiallergic and vasodilating agents.

Текст научной статьи Флавоноиды Russowia sogdiana (Bunge) B. Fedtsch

В настоящее время ученые всего мира проявляют большой интерес к флавоноидам лекарственных растений, что обусловлено их высокой биологической активностью, широтой терапевтического эффекта и малой токсичностью [1-4]. За последние 15-20 лет число фармакопейных лекарственных растений, содержащих флавоноиды, выросло в Российской Федерации до 30 наименований. Флавоноиды привлекают внимание исследователей как физиологически активные вещества с разносторонним спектром действия. Они являются важными и даже наиболее активными действующими началами растений и растительных препаратов, используемых в народной и научной медицине в качестве желчегонных, противовоспалительных, спазмолитических, противоаллергических и сосудорасширяющих средств [1,4]. В результате проведенных в последнее время исследований получены препараты гипоазотемического, гипогликемического и антивирусного действия [4]. Однако препаратов, содержащих флавоноиды, пока имеется немного. Чаще эти соединения находятся в растениях в комплексе с другими БАВ и используются суммарно. Следовательно, поиск новых источников флавоноидов с целью их практического исполь- зования относится к актуальным задачам.

Из литературных данных известно, что многие представители растений семейства Asteraceae богаты биологически активными флавоноидами [4,5]. С целью поиска новых источников биологически активных флавоноидов нами изучено растение Russowia sogdiana (Bunge) B. Fedtsch. (руссовия согдийская) относящийся к вышеуказанному семейству. Руссовия согдийская представляет собой однолетнее травянистое растение, встречающийся на выходах пестроцветных пород в нижнем поясе гор Средней Азии, долины рек Зеравшан, Сырдарья, Кызылкум, Каракум, Памиро-Алай (хребты Зеравшанский, Гиссарский, Кугитанг, Копет-Даг) [6]. В доступной нам литературе сведения о биологической активности флавоноидов руссовии согдийской не обнаружены.

Экспериментальная часть

Растительное сырье (надземная часть Russowia sogdiana ) для исследования заготовлено в середине мая 2016 г. в период цветения в окрестностях г. Ферганы Республики Узбекистан. Высушенную и измельченную надземную часть (0,8 кг) экстрагировали при комнатной температуре 5 раз 96%-ным этанолом. Объединенный экстракт сгущали в вакууме до 1,0 литра, разбавляли водой в соотношении 1:1 и последовательно подвергали жидкость-жидкостной экстракции петролейным эфиром, хлороформом, этилацетатом и н -бутанолом. Отогнав растворители, получили 8,7 г петролейно-эфирной, 28,3 г хлороформной 21,5 г этилацетатной и 22,6 г н -бутанольной фракции.

Этилацетатное извлечение (21,0г) хроматографировали на колонке (180 х 3,5 см) с силикалегем (430 г) с использованием ступенчатого градиента хлороформ-пропанола-2. Собирали фракции по 400 мл. При элюировании колонки смесью хлороформ-пропанол-2 в соотношении (92:8) из отдельных фракций после рехроматографирования на колонке с сефадексом LH-20 и перекристаллизации из этанола выделили 0,39 г вещества № 1, 0,28 г вещества № 2 и 0,14 г вещества № 3. При дальнейшем элюировании колонки смесью хлороформ-пропанол-2 в соотношении (86:14) выделили 0,27 г вещества № 4 и 0,17 г вещества № 5. Продолжая промывание колонки смесью хлороформ-пропанол-2 в соотно- шении (82:18) выделили и 0, 21 г вещества № 6 и 0,55 г вещества № 7.

Полученные вещества очищены дробной перекристаллизацией из водного этанола и ацетона, а также рехроматографированием на полиамиде в градиентой системе раствори- телей этанол-вода.

УФ-спектры регистрировали на спектрофотометре Hitachi EPS-3T в этаноле, масс- спектры получали на приборе MS 25RF (Kratos) с системой обработки информации DS 90. ИК-спектры зарегистрировали на ИК-Фурье-спектрометре Perkin Elmer Spectrum. Спектры ПМР снимали на приборе Bruker AVACE AV300 с рабочей частотой 300 МГц. Химические сдвиги приведены в миллионных долях (м.д.) в δ-шкале. Температуры плавления определяли на приборе типа “Boetius” с визуальным устройством РНМК 0,5.

Тонкослойную хроматографию (ТСХ) проводили на пластинках Silufol UV-254. Пятна флавоноидов при ТСХ наблюдали в УФ свете, обнаруживали обработкой пластинок парами аммиака, 0,5% спиртовым раствором NaOH и 1% раствором ванилина в серной кислоте. Колоночную хроматографию проводили на силикагеле марки КСК 100/160 мкм. D-Глюкозу кислоту обнаруживали методом бумажной хроматографии (Filtrak №11) в системе н-бутанол-пиридин-вода (6:4:3). Хроматограммы опрыскивали кислым анилинфталатом с последующим нагреванием в течение 3-5 минут при 90-100 0С.

Обсуждение результатов

На основании изучения спектральных данных соединения № 1, № 6 и № 7 отнесены к производным флавона, а вещества № 2-5 - к производным флавонола [6,7]. Флавоноиды идентифицировали на основании результатов кислотного гидролиза, изучением спек- тральных данных и сравнением физико-химических констант с литературным сведениями.

Апигенин (№ 1). Кристаллы светло-желтого цвета состава C15H10O5, т.пл. 346-347 °С (с разл.), Х тах 270, 340 нм. 1H-ЯMР (ДМСО-d s , 5, м.д.): 6.19 (д, 2.0 Гц, H-6), 6.49 (д, 2.0 Гц, H-8), 6.80 (с, H-3), 6.93 (д, 8.8 Гц, H-3', 5'), 7.94 (д, 8.8 Гц, H-2', 6'), 12.98 (с, 5-OH). Спектр ЯМР 13C (DMSO-d 6 , 5, м.д.): 93.9 (C-8), 98.8 (C-6), 102.8 (C-3), 103.7 (C-10), 115.9 (C-3',5'), 121.1 (C-1'), 128.5 (C-2',6'), 157.3 (C-9), 161.2 (C-4'),161.4 (C-5), 163.7 (C-7), 164.1 (C-2), 181.7 (C-4).

Данные 1H- и 13C-ЯMР спектров соответствуют опубликованным параметрам [5,7].

Кверцетин (№ 2). Кристаллы желтого цвета состава С15Н10О7 + 302) с т.пл. 313-314 °С, X max 257, 268, 372 нм. 1Н-ЯМР (DMSO- d 6 , 5 , м.д.): 6.19 (д, 2.3 Гц, H-6), 6.41 (д, 2.3 Гц, H-8), 6.89 (д, 8.2 Гц, H-5‘),7.55 (дд, 2.1 и 8.2 Гц, H-6’), 7.68 (д, 2.1 Гц, H-2’), 9.27 (с, 3‘-OH), 9.31 (с, 4‘-OH), 9.55 (с, 3-OH), 10.75 (с, 7-OH), 12.48 (с, 5-OH). Спектр ЯМР 13C (CD 3 OD, 5 , м.д.): 148.0 (C-2), 137.2 (C-3), 177.3 (C-4), 162.5 (C-5), 99.2 (C-6), 165.6 (C-7), 94.4 (C-8), 15 8.2 (C-9), 104.5 (C-10), 124.1 (C-1'), 116.0 (C-2'), 146.2 (C-3'), 148.7 (C-4'), 116.2 (C-5'), 121.7 (C-6').

Данные 1H- и 13C-ЯMР спектров соответствуют опубликованным сведениям [5,7].

Изорамнетин (№ 3). Кристаллы желтого цвета состава С16Н12О7, М + 316 (100%), т. пл. 294-297 °С (водный спирт), X max EtOH 257, 270 пл., 371 нм. 1Н-ЯМР спектр (ДМСО^, 5, м.д.): 3.85 (с, 3Н, -ОСН 3 ), 6.35 (д, 2,0 Гц,

Н-6), 6.68 (д, 2,0 Гц, Н-8), 6.83 (д, 9,0 Гц, Н-5') 7.69 (дд, 2,0 и 9,0 Гц, Н-6'), 7.58 (д, 2,0 Гц, Н-2'), 12.56 (c, 5-ОН) [5,7].

Кверцетин-7-0-β-D-глюкопиранозид (№ 4) - кристаллы желтого цвета состава С 21 Н 20 О 12 с т. пл. 245-247 ºС, λ max 257, 266, 374 нм; +NaOAc 273, 390. 1H ЯMР-спектр (Py-d 5 δ, м.д.): 3.87-4.60 (протоны глюкозы), 5.73 (д, 6,5 Гц, Н-1''), 6.69 (д, 2,5 Гц, Н-6), 6.91 (д, 2,5 Гц Н-8), 7.25 (д, 8,5 Гц, Н-5'), 7.96 (дд, 2,5 и 8,5 Гц, Н-6') и 8.50 (д, 2,5 Гц, Н-2) T[8,9].. T

В результате кислотного гидролиза вещества № 4 5%-ным раствором HCl получили кверцетин и D-глюкозу.

Изорамнетин-7-0-β-D-глюкопиранозид (5) - кристаллы светложелтого цвета состава С 22 Н 22 О 12 , с т. пл. 250-252 ºС, λ max 255, 271, 327, 376 нм; +NaOAc 273, 390. 1H ЯMР-спектр (Py-d 5 , δ, м.д.) содержит сигналы при 3.77 (с, -ОСН 3 ), 3.90-4.57 (протоны глюкозы), 5.70 (д, 6,5 Гц, Н-1''), 6.72 (д, 2,5 Гц, Н-6), 7.02 (д, 2,5 Гц, Н-8), 7.24 (д, 8,0 Гц, Н-5'), 8.08 (дд, 2,5 и 8,0 Гц, Н-6'), 8.14 (с, Н-2'), 13.08 (уш. с, 5-ОН) [7,8].

В результате кислотного гидролиза вещества № 5 5%-ным раствором HCl получили кверцетин и D-глюкозу.

Сапонаретин (апигенин-6-С-β-D-глюкопиранозид) (№ 6) - кристаллы светло-желтого цвета состава С 21 Н 20 О 10 с т.пл. 222-224 ºС, λ max 272, 294, 339 нм. Спектр 13С-ЯМР (DMCO-d 6 , δ, м.д.): 61.4 (С-6''), 70.2 (С2''), 70.5 (С-4''), 73.2 (С-1''), 78.9 (С-3''), 81.3 (С-5''), 93.8 (С-8), 102.9 (С-3), 103.5 (С-10), 108.9 (С-6), 116.1 (С-3',5'), 121.3 (С-1'), 128.3 (С-2',6'), 156.4 (С-5), 160.6 (С-4'), 161.2 (С-9), 163.3 (С-2), 163.7 (С-7), 182.0 (С-4) [10,11].

При окислении гликозида 6 раствором FeCl 3 получили апигенин и D-глюкозу [7,9].

Витексин (апигенин-8-С-β-D-глюкопиранозид) (№ 7) - кристаллы желтого цвета состава С 21 Н 20 О 10 с т.пл. 247-249 ºС, λ max 285, 337 нм. 1H ЯMР-спектр (Py-d5, δ, м.д.): 4.05-4.55 (протоны углеводной части), 4.75 (т,

8,0 Гц, Н-2''), 5.79 (д, 8,0 Гц, Н-1''), 6.76 (с, Н-3), 7.07 (д, 9,0 Гц, Н-3',5'), 7.35 (с, Н-6), 7.74 (д, 9,0 Гц, Н-2',6') [7,11].

Выводы

Из надземной части Russowia sogdiana впервые выделены флавоноиды апигенин, кверцетин, изорамнетин, кверцетин-7-0-β-D-глюкопиранозид, изорамнетин-7-0-β-D-глюко- пиранозид, сапонаретин и витексин. Полученные флавоноиды идентифицированы на основании результатов кислотного гидролиза и данных УФ-, 1Н-, 13С-ЯМР-спектров.

Список литературы Флавоноиды Russowia sogdiana (Bunge) B. Fedtsch

  • Тараховский Ю.С., Ким Ю.А., Абдрасилов Б.С., Музафаров Е.Н. Флавоноиды: биохимия, биофизика, медицина. Пущино: Synchrobook. 2013. 310 с.
  • Middleton E., Kandaswami C., Theoharis C.T. The Effects of Plant Flavonoids on Mammalian Cells: Implications for Inflammation, Heart Disease, and Cancer. //Pharmacol. Rev. 2000. V. 52. Pp. 673-751.
  • Flavonoids in Health and Disease. /Ed. by Catherine A. Rice-Evans, Lester Packer. New York: Marcel Dekker Inc. 2003. 458 p.
  • Литвиненко В.И. Флавоноиды и лекарственные препараты на их основе. //Фармация Казахстана. 2004. Спец. выпуск. С.16-19.
  • Корулькин Д.Ю., Абилов Ж.А., Музычкина Р.А., Толстиков Г.А. Природные флавоноиды. Новосибирск: Академическое изд-во 'Тео". 2007. 232 с.
  • Флора Узбекистана. Ташкент. 1961. Т.6. С. 386.
  • Mabry T.T., Markham K.R., Thomas M.B. The systematic identification of flavonoids. New York-Heidelberg-Berlin. 1970. 354 p.
  • Чумбалов Т.К., Фадеева О.В., Никищенко Т.К. Флавоноиды Senecio subdentatus //Химия природных соединений. 1974. С. 89-90.
  • Movsumov I.S, Garaev E.A., Isaev M.I. Flavonoids from Cephalaria grossheimii //Chem. Natur. Compounds. 2009. V. 45. № 3. Pp. 422-423.
  • Otsuca H., Kijima K. An Iridoid Gentiobioside, a Benzophenone Glucoside and Acylated Flavone C-Glycosides from Tripterospermum japonicum (Sieb. et Zucc.) Maxim. //Chem. Pharm. Bull. 2001. V. 49. № 6. Pp. 699-702.
Еще