Габитус и продуктивность люцерны (Medicago sativa L.) в зависимости от инокуляции штаммами Sinorhizobium meliloti, различающимися по солеустойчивости
Автор: Проворов Н.А., Онищук О.П., Курчак О.Н.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Растительно-микробные взаимодействия в биологизированных агротехнологиях
Статья в выпуске: 3 т.51, 2016 года.
Бесплатный доступ
Симбиотическая эффективность (СЭ) клубеньковых бактерий (ризобий) характеризует их адаптивный потенциал и практическую значимость. Этот признак связан в первую очередь с фиксацией молекулярного азота (N2), которая осуществляется ризобиями в корневых клубеньках и контролируется генотипами обоих партнеров. Наибольшая интенсивность N2-фиксации характерна для быстрорастущих ризобий ( Rhizobium, Sinorhizobium ). Однако СЭ (влияние инокуляции ризобиями на биомассу растений) определяется многими генными системами ризобий, в том числе не участвующими в работе нитрогеназы, в связи с чем N2-фиксирующую активность и СЭ следует рассматривать как два разных симбиотических признака. Так, ризобии способны синтезировать биологически активные вещества (фитогормоны, витамины, люмихром), которые влияют на развитие растений-хозяев. Нашей целью было изучение влияния штаммов ризобий Sinorhizobium meliloti, активно фиксирующих N2, но контрастно различающихся по солеустойчивости, на показатели габитуса (соотношения различных морфометрических показателей) и продуктивности у многолетней тетраплоидной люцерны ( Medicago sativa L.) при действии солевого стресса, а также при мутациях микросимбионтов, снижающих СЭ. В работе использовали штаммы S. meliloti : 1021 (стандартный лабораторный штамм), СХМ1-188 (УФ-индуцированный мутант штамма СХМ1, обладающий повышенной СЭ) и СА67 (штамм, выделенный из почвы в Таджикистане). Кроме того, исследовали Tn5-индуцированные мутанты с пониженной СЭ - F (получен от штамма СА67 в настоящей работе) и GL1 (получен от штамма 1021 в университете г. Дальхаус, Канада). Семена люцерны посевной сорта Агния, устойчивого к эдафическим стрессам, были получены во Всероссийском НИИ кормов им. В.Р. Вильямса (г. Лобня, Московская обл.). Бобово-ризобиальный симбиоз изучали в микровегетационных опытах, анализируя различные морфометрические показатели (масса и длина побегов и корней) и их соотношения. Для анализа действия на СЭ солевого стресса люцерну выращивали на среде с добавлением 0,6 % NaCl. Показано, что в отсутствие стресса инокуляция всеми штаммами S. meliloti вызывала увеличение массы и длины побегов, однако длина корней люцерны снижалась. Это приводило к резкому изменению габитуса растений (соотношение длин побегов и корней возрастало в 2-3 раза), которое, по-видимому, обеспечивало высокую интенсивность их симбиотрофного развития. В условиях солевого стресса существенного изменения в соотношении длин побегов и корней при инокуляции ризобиями выявлено не было, однако соотношение массы побегов к их длине возрастало от 0,16-0,34 мг/мм до 0,52-0,68 мг/мм. У растений люцерны, инокулированных солечувствительным штаммом S. meliloti СА67 (не способен расти в присутствии 3 % NaCl), утрата СЭ сопровождалась удлинением побегов и корней соответственно на 36 и 79 %, хотя их масса не изменялась по сравнению с таковой у неинокулированных растений. У растений, инокулированных солеустойчивыми штаммами СХМ1-188 и 1021, при воздействии стресса СЭ сохранялась, однако стимулирующего действия ризобий на рост побегов и корней не обнаружили. Tn5-мутанты F и GL1, несмотря на сниженную СЭ, оказывали такое же влияние на габитус растений, как и родительские штаммы. В настоящей работе мы впервые показали, что проявление СЭ зависит от факторов двух типов - трофических (определяются интенсивностью симбиотической N2-фиксации) и регуляторных (предположительно связаны с модификациями гормонального статуса растений, влияющими на активность корневых и побеговых меристем). Генетические модификации регуляторной (ростстимулирующей) активности ризобий могут быть важным подходом для оптимизации симбиотрофного питания бобовых культур азотом, а также для их адаптации к эдафическим (осмотическим) стрессам.
Клубеньковые бактерии (ризобии), габитус растений, бобовые растения, азотфиксация, ростстимулирующая активность, симбиотическая эффективность, солевой стресс
Короткий адрес: https://sciup.org/142213943
IDR: 142213943 | DOI: 10.15389/agrobiology.2016.3.343rus
Список литературы Габитус и продуктивность люцерны (Medicago sativa L.) в зависимости от инокуляции штаммами Sinorhizobium meliloti, различающимися по солеустойчивости
- Доросинский Л.М. Клубеньковые бактерии и нитрагин. Л., 1970.
- Мишустин Е.Н., Шильникова В.К. Клубеньковые бактерии и инокуляционный процесс. М., 1973.
- Terpolilli J.J., Hood G.A., Poole P.S. What determines the efficiency of N2-fixing Rhizobium-legume symbioses? Adv. Microb. Physiol., 2012, 60: 325-389 ( ) DOI: 10.1016/B978-0-12-398264-3.00005-X
- Haag A.F., Arnold M.F., Myka K.K., Kerscher B., Dall'Angelo S., Zanda M., Mergaert P., Ferguson G.P. Molecular insights into bacteroid development during Rhizobium-legume symbiosis. FEMS Microbiol. Rev., 2013, 37(3): 364-383 ( ) DOI: 10.1111/1574-6976.12003
- Sharypova L.A., Onishchuk O.P., Chesnokova O.N., Fomina-Eshenko J.G., Simarov B.V. Isolation and characterization of Rhizobium meliloti Tn5 mutants showing enhanced symbiotic effectiveness. Microbiology, 1994, 140: 463-470.
- Проворов Н.А., Онищук О.П., Юргель С.Н., Курчак О.Н., Чижевская Е.П., Воробьев Н.И., Затовская Т.В., Симаров Б.В. Конструирование высокоэффективных симбиотических штаммов бактерий: эволюционные модели и генетические подходы. Генетика, 2014, 50(11): 1273-1285 ( ) DOI: 10.7868/S0016675814110113
- Затовская Т.В. Получение и анализ Tn5-мутантов Sinorhizobium meliloti с измененными поверхностными полисахаридами. Автореф. канд. дис. СПб, 2012.
- Phillips D.A., Joseph C.M., Yang G.P., Martinez-Romero E., Sanborn J.R., Volpin H. Identification of lumichrome as a Sinorhizobium enhancer of alfalfa root respiration and shoot growth. PNAS USA, 1999, 96(22): 12275-12280 ( ) DOI: 10.1073/pnas.96.22.12275
- Gouws L.M., Botes E., Wiese A.J., Trenkamp S., Torres-Jerez I., Tang Y., Hills P.N., Usadel B., Lloyd J.R., Fernie A.R., Kossmann J., van der Merwe M. The plant growth promoting substance, lumichrome, mimics starch, and ethylene-associated symbiotic responses in lotus and tomato roots. Front. Plant Sci., 2012 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2012.00120
- Khan W., Prithiviraj B., Smith D.L. Nod factor and lumichrome enhance photosynthesis and growth of corn and soybean. J. Plant Physiol., 2008, 165: 1342-1351 ( ) DOI: 10.1016/j.jplph.2007.11.001
- Phillips D.A., Torrey J.G. Studies on cytokinin production by Rhizobium. Plant Physiol., 1972, 49(1): 11-15 ( ) DOI: 10.1104/pp.49.1.11
- Palacios O.A., Bashan Y., de-Bashan L.E. Proven and potential involvement of vitamins in interactions of plants with plant growth-promoting bacteria -an overview. Biol. Fertil. Soils, 2014, 50: 415-432 ( ) DOI: 10.1007/s00374-013-0894-3
- Kanu S.A., Matiru Y.N., Dakora F.D. Strain and species differences in rhizobial secretion of lumichrome and riboflavin, measured using thin-layer chromatography. Symbiosis, 2007, 43: 37-43.
- Sierra S., Rodelas B., Martinez-Toledo M.V., Pozo C., Gonzalez-Lope J. Production of B-group vitamins by two Rhizobium strains in chemically-defined media. J. Appl. Microbiol., 1999, 86: 851-858 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-2672.1999.00765.x
- Streit W.R., Joseph C.M., Phillips D.A. Biotin and other water-soluble vitamins are key growth factors for alfalfa root colonization by Rhizobium meliloti 1021. Mol. Plant-Microbe Interact., 1996, 5: 330-338.
- Ferguson B., Mathesius U. Phytohormone regulation of legume-rhizobia interactions. J. Chem. Ecol., 2014, 40: 770-790 ( ) DOI: 10.1007/s10886-014-0472-7
- Ogutcu H., Kasimogly C., Elkoca E. Effect of Rhizobium strains isolated from wild chickpeas on the growth and symbiotic performance of chickpeas (Cicer arietinum L.) under salt stress. Turkish J. Agric. Res., 2010, 34: 361-371 ( ) DOI: 10.3960/tar-0940-34
- Курчак О.Н., Проворов Н.А., Онищук О.П., Воробьев Н.И., Румянцева М.Л., Симаров Б.В. Воздействие солевого стресса на генетически полиморфную систему Sinorhizobium meliloti-Medicago truncatula. Генетика, 2014, 50(7): 777-786 ( ) DOI: 10.7868/S001667581406006X
- Meade H.M., Long S.R., Ruvkun G.B., Brown S.E., Ausubel F.M. Physical and genetic characterization of symbiotic and auxotrophic mutants of Rhizobium meliloti induced by transposon Tn5 mutagenesis. J. Bacteriol., 1982, 149: 114-122.
- Федоров С.Н., Симаров Б.В. Получение мутантов с измененными симбиотическими свойствами у Rhizobium meliloti под действием УФ-лучей. Сельскохозяйственная биология, 1987, 9: 44-49.
- Roumiantseva M.L., Andronov E.E., Sharypova L.A., Damman-Kalinovski T., Keller M., Young J.P.W., Simarov B.V. Diversity of Sinorhizobium meliloti from the Central Asian alfalfa gene center. Appl. Environ. Microbiol., 2002, 68(9): 4694-4697 ( ) DOI: 10.1128/AEM.68.9.4694-4697.200
- Лакин Г.Ф. Биометрия. М., 1980.
- Драговоз И.В., Леонова Н.О., Иутинская Г.А. Синтез фитогормонов штаммами Bradyrhizobium iaponicum различной симбиотической эффективности. Мiкробiол. журн., 2011, 3: 29-35.
- Okamoto S., Ohnishi E., Sato S., Takahashi H., Nakazono M., Tabata S., Kawaguchi M. Nod factor/nitrate-induced CLE genes that drive HAR1-mediated systemic regulation of nodulation. Plant Cell Physiol., 2009, 50: 67-77 ( ) DOI: 10.1093/pcp/pcn194
- Theunis M., Kobayashi H., Broughton W., Prinsen E. Flavonoids, NodD1, NodD2, and nod-box NB15 modulate expression of the y4wEFG locus that is required for indole-3-acetic acid synthesis in Rhizobium sp. strain NGR234. Mol. Plant-Microbe Interact., 2004, 17(10): 1153-1161 ( ) DOI: 10.1094/MPMI.2004.17.10.1153
- Hamayun M., Khan S.A., Khan A.L., Shinwari Z.K., Hussain J., Song E.Y., Kang S.M., Kim Y.H., Khan M.A., Lee I.J. Effect of salt stress on growth attributes and endogenous growth hormones of soybean cultivar Hwangkeumkong. Pakist. J. Bot., 2010, 42(5): 3103-3112.
- Ryu H., Cho Y.G. Plant hormones and salt stress tolerance. J. Plant Biol., 2015, 58: 147-155 ( ) DOI: 10.1007/s12374-015-0103-z
- Проворов Н.А., Воробьев Н.И. Генетические основы эволюции растительно-микробного симбиоза/Под ред. И.А. Тихоновича. СПб, 2012.
- Yang J., Kloepper J.W., Ryu C.M. Rhizosphere bacteria help plants tolerate abiotic stress. Trends in Plant Sci., 2009, 14(1): 1-4.