Гаплоидный партеногенез in vitro у сахарной свеклы (Beta vulgaris L.): факторы и диагностические признаки
Автор: Жужжалова Т.П., Подвигина О.А., Знаменская В.В., Васильченко Е.Н., Карпеченко Н.А., Землянухина О.А.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Селекция: культура тканей, молекулярный анализ
Статья в выпуске: 5 т.51, 2016 года.
Бесплатный доступ
Традиционное получение инбредных линий и гибридов в селекции сахарной свеклы -трудоемкий процесс, требующий длительного времени из-за 2-летнего цикла развития растений, само- и перекрестной несовместимости, инбредной депрессии. Для индукции генотипического многообразия в исходной популяции перспективны биотехнологии, в том числе гаплоидный партеногенез. Мы показали, что при индуцировании гаплоидов in vitro у сахарной свеклы ( Beta vulgaris L.) эффективна экспресс-диагностика по фенотипическим, эмбриологическим признакам, отражающим периоды развития цветоносных побегов, органов, бутонов, стадии формирования зародышевого мешка семязачатка и пыльцевых зерен. Регенерационная активность наблюдается в семязачатках с 1 по 25 бутоны, расположенных по колосовидному цветоносу плейохазия вверх от раскрывшегося цветка. Ядра и клетки женского гаметофита изолированных семязачатков этих бутонов в условиях in vitro способны к новообразованиям на всех этапах развития, но 8-ядерные или 7-клеточные зародышевые мешки наиболее компетентны к морфогенезу и переключению программы развития с гаметофитного на спорофитный путь. Наступление критического периода развития зародышевых мешков предварительно определяли по сопутствующим эмбриологическим признакам - наличию одноядерных микроспор и двух-трехклеточных пыльцевых зерен пыльников, находящихся с семязачатками в одном бутоне. Полученные нами результаты свидетельствуют, что гормональный состав питательной среды по Гамборгу (В5) служит важным фактором, который эффективно регулирует направление морфогенетического развития у изолированных семязачатков - через прямую регенерацию (эмбриоидогенез) или через каллус (гемморизогенез), что свидетельствует о тотипотентности как половых, так и соматических клеток экспланта. Полученные данные о воспроизведении in vitro гаплоидных регенерантов углубляют имеющиеся научные представления о специфике морфогенетического потенциала у растений сахарной свеклы. Стабилизирующий отбор при создании линий удвоенных гаплоидов способствует выявлению ценных морфологических признаков регенерантов. Определение числа хромосом и хлоропластов в замыкающих клетках устьиц, а также электрофоретическая подвижность изоферментов (по локусам Adh-1, Mdh-1, Mdh-2, Me-1, Idh-1, Idh-2, Gdh-1 ) могут служить маркерами при индуцировании гаплоидии и создании гомозиготных реституционных линий сахарной свеклы. Показана эффективность метода RFLP-анализа с использованием рестриктазы Hind III, позволившего впервые идентифицировать гаплоидные микроклоны по типу цитоплазмы. Молекулярные маркеры свидетельствовали, что регенеранты с нормальной цитоплазмой (N) имели один ПЦР-продукт длиной 800 п.н., у форм (S) с цитоплазматической мужской стерильностью (ЦМС) обнаруживались два продукта рестрикции (320 п.н. и 480 п.н.). Выявление гаплоидных регенерантов со стерильной цитоплазмой из исходных популяций имеет важное теоретическое и прикладное значение для селекции, облегчая задачу создания гомозиготных линий с ЦМС и высокопродуктивных гибридов на стерильной основе.
Сахарная свекла, гаплоидный партеногенез, женский гаметофит, удвоенные гаплоиды, эмбриоидогенез, органогенез, изоферменты, rflp-анализ днк
Короткий адрес: https://sciup.org/142213966
IDR: 142213966 | DOI: 10.15389/agrobiology.2016.5.636rus
Список литературы Гаплоидный партеногенез in vitro у сахарной свеклы (Beta vulgaris L.): факторы и диагностические признаки
- Буренин В.И. Генетические ресурсы рода Beta L. (Свекла). СПб, 2007.
- Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. М., 1999.
- Baenziger P.S., Russell W.K., Groef G.L., Campbell B.T. Improving lives: 50 years of crop breeding genetics and cytology. Crop Sci., 2006, 46: 2230-2244 ( ) DOI: 10.2135/cropsci2005.11.0404gas
- Atanassov A.I. Method for continuous bud for mation in tissne culture of sugar beet (Beta vulgaris L.). Pflazenzuchtg, 1980, 84: 23-29.
- Slavova J. Effective method for sugar beet haploids obtained from unpollinated ovules. Biotechnology & Biotechnological Equipment, 2014, 7(2): 34-35 ( ) DOI: 10.1080/13102818.1993.10818689
- Chen J.F., Cui L., Malik A.A., Mbira K.G. In vitro haploid and diploid production via unfertilized ovule culture. Plant Cell Tiss. Organ Cult., 2011, 104(3): 311-319 ( ) DOI: 10.1007/s11240-010-9874-6
- Murovec J., Bohanec B. Haploids and doubled haploids in Plant breeding. In: Plant breeding/I. Abdurakhmonov (ed.). InTech d.o.o., Croatia, 2012: 87-106 (doi: 10.5772/1389).
- Знаменская В.В., Жужжалова Т.П., Подвигина О.А. Индукция гиногенеза у сахарной свеклы. Мат. Российского симпозиума «Новые методы по биотехнологии растений». Пущино, 1993: 111.
- Подвигина О.А. Морфогенетическое развитие эксплантов сахарной свеклы в условиях in vitro. Сахарная свекла, 2003, 10: 22-24.
- Nagl N., Mezei S., Kovačev L., Vasić D., Čačić N. Induction and micropropagation potential of sugar beet haploids. Genetica, 2004, 36(3): 187-194 ( ) DOI: 10.2298/GENSR0403187N
- Sliwinska E., Pedersen H. Flow cytometric analsis of nuclear replication stages during germination of sugar-beet seeds different in vigour. Electronic Journal of Polish Agricultural Universities, 1999, 2(1).
- Svirshchevskaya A.M., Doležel J. Production and performance of gynogenetic sugarbeet lines. Journal of Sugar Beet Research, 2000, 37(4): 117-133 ( ) DOI: 10.5274/jsbr.37.4.117
- Gürel S., Gürel E., Kaya Z., Erdal M., Güler E. Effects of antimitotic agents on haploid plant production from unpollinated ovules of sugar beet (Beta vulgaris L.). Biotechnology & Biotechnological Equipment, 2003, 17(2): 97-101 ( ) DOI: 10.1080/13102818.2003.10817065
- Klimek-Chodacka M., Baranski R. Comparison of haploid and doubled haploid sugar beet clones in their ability to micropropagate and regenerate. Electron. J. Biotechn., 2013, 16(2): 1-12 ( ) DOI: 10.2225/vol16-issue2-fulltext-3
- Свирщевская А.М. Триплоиды, диплоиды и гаплоиды в селекции сахарной свеклы (Beta vulgaris L.). Весцi нацыянальнай Акадэмii навук Беларусi, 2008, 2: 48-55.
- Землянухин А.А., Землянухин Л.А. Метаболизм органических кислот растений. Воронеж, 1995.
- Левитес Е.В., Свирщевская А.М., Кирикович А.А., Милько Л.В. Удвоенные гаплоиды в изучении эпигенетической изменчивости сахарной свеклы. Информационный вестник ВОГИС, 2005, 9(4): 512-517.
- Beckmann J.S., Soller M. Restriction fragment length polymorphisms in genetic improvement: methodologies, mapping and costs. Theor. Appl. Genet., 1983, 67: 35-43 ( ) DOI: 10.1007/BF00303919
- Зайцев Г.Н. Методика биометрических расчетов. М., 1973.
- Подвигина О.А. Индуцирование гаплоидии из неоплодотворенных семяпочек сахарной свеклы в условиях in vitro. В сб.: Энциклопедия рода Вeta. Биология, генетика и селекция свеклы (науч. тр. Института цитологии и генетики СО РАН). Новосибирск, 2010: 455-465.
- Жужжалова Т.П., Фоменко Н.Р. Возрастные изменения сахарной свеклы в онтогенезе. Сахарная свекла, 2003, 7: 26-27.
- Жужжалова Т.П., Знаменская В.В., Подвигина О.А., Ярмолюк Г.И. Репродуктивная биология сахарной свеклы. Воронеж, 2007.
- Петров Д.Ф. Генетические основы апомиксиса. Новосибирск, 1979.
- Таратонов Н.А. Влияние экзогенных факторов на рост и развитие регенерантов в процессе формирования дигаплоидных форм сахарной свеклы. Канд. дис. Рамонь, 1999.
- Батыгина Т.Б., Круглова Н.Н., Горбунова В.Ю., Титова Г.Е., Сельдимирова О.А. От микроспоры -к сорту. М., 2010.
- Жужжалова Т.П., Подвигина О.А., Знаменская В.В. Пути воспроизведения нового организма сахарной свеклы в культуре in vitro. В сб.: Энциклопедия рода Вeta. Биология, генетика и селекция свеклы (науч. тр. Института цитологии и генетики СО РАН). Новосибирск, 2010: 403-419.
- Знаменская В.В. Микроклонирование in vitro как метод поддержания и размножения линий сахарной свеклы. В сб.: Энциклопедия рода Вeta. Биология, генетика и селекция свеклы (науч. тр. Института цитологии и генетики СО РАН). Новосибирск, 2010: 420-437.
- Васильченко Е.Н., Жужжалова Т.П. Изменчивость морфологических и биохимических признаков межвидовых гибридов свеклы. Сахарная свекла, 2011, 1: 18-21.
- Федулова Т.П. Теоретические и практические аспекты молекулярно-генетического маркирования в селекции сахарной свеклы (Beta vulgaris L.). Докт. дис. Рамонь, 2005.
- Kirikovich S.S., Svirshchevskaya A.M., Levites E.V. Variation at isozyme loci in seed offspring of sugar beet gynogenetic lines. Sugar Tech., 2003, 5(4): 289-292 ( ) DOI: 10.1007/BF02942487
- Levites E.V., Svirshchevskaya A.M., Kirikovich S.S., Mil’ko L.V. Variation at isozyme loci in cultured in vitro sugar beet regenerants of gynogenetic origin. Sugar Tech., 2005, 7(1): 71-75 ( ) DOI: 10.1007/BF02942421
- Nishizawa S., Kubo T., Mikami T. Variable number of tandem repeat loci in the mitochondrial genomes of beets. Curr. Genet., 2000, 37: 34-38 ( ) DOI: 10.1007/s002940050005
- Nishizawa S., Mikami T., Kubo T. Mitochondrial DNA phylogeny of cultivated and wild beets: relationships among cytoplasmic male-sterility-inducing and nonsterilizing cytoplasms. Genetics, 2007, 177: 1703-1712 ( ) DOI: 10.1534/genetics.107.076380
- Cheng D., Kitazaki K., Xu D., Mikami T., Kubo T. The distribution of normal and male-sterile cytoplasms in Chinese sugar-beet germplasm. Euphytica, 2009, 165: 345-354 ( ) DOI: 10.1007/s10681-008-9796-0
- Moritani M., Taguchi K., Kitazaki K., Matsuhira H., Katsuyama T., Mikami T., Kubo T. Identification of the predominant nonrestoring allele for Owen-type cytoplasmic male sterility in sugar beet (Beta vulgaris L.): development of molecular markers for the maintainer genotype. Mol. Breeding, 2013, 32: 91-100 ( ) DOI: 10.1007/s11032-013-9854-8