Гематологические показатели и морфометрия печени у мышей линии ICR в модели диет-индуцированного ожирения

Масалов В.Н. Лазарева Т.Н. Мурленков Н.В. Березина Н.А. Евдокимова О.В.

Журнал: Вестник аграрной науки @vestnikogau

Рубрика: Сельскохозяйственные науки

Статья в выпуске: 5 (116), 2025 года.

Бесплатный доступ

В работе представлено экспериментальное моделирование диет-индуцированного ожирения у мышей линии ICR и оценка его воспроизводимости на основе гематологических параметров крови и морфологических показателей печени. Животные получали стандартный и высокожировой рацион с дополнительным введением лярда (20 % энергетической ценности) и 20%-ного раствора фруктозы в течение 13 недель. Сравнительный анализ показал, что у самок на высокожировом рационе число эритроцитов было выше на 12–15 % (p<0,05), концентрация гемоглобина – на 10–12 % (p<0,05), а гематокрит увеличивался на 14 %. Количество лейкоцитов и лимфоцитов возрастало на 18–20 % (p<0,05), а число тромбоцитов — на 16 % по сравнению с контролем. У самцов изменения были более выраженными: число эритроцитов превышало показатели контрольной группы на 17–19 % (p<0,01), концентрация гемоглобина – на 15 % (p<0,01), гематокрит – на 18 % (p<0,01), лейкоциты и лимфоциты возрастали на 22–24 % (p<0,01), тромбоциты — на 20 % (p<0,01). При морфометрическом анализе печени установлено, что её масса у самок увеличивалась на 18–20 % (p<0,05), а гепатосоматический индекс — на 15 %, у самцов соответственно на 22–25 % и 20 % (p<0,01). Совокупность полученных данных подтверждает, что длительное скармливание высокожирового рациона мышам ICR приводит к развитию эритроцитоза, системного воспаления и гепатомегалии, что свидетельствует о корректности и воспроизводимости созданной модели диет- индуцированного ожирения.

мыши ICR \ диет-индуцированное ожирение \ гематологические показатели \ печень

Похожие статьи в разделе Пищеварение. Питание

Влияние высокоуглеводной высокожировой диеты на возрастные изменения миокарда у крыс
Влияние высокоуглеводной высокожировой диеты на возрастные изменения миокарда у крыс

С.В. Логвинов, Л.Р. Мустафина, Б.К. Курбатов, М.А. Сиротина, С.А. Горбунов, Н.В. Нарыжная

Экспериментальные модели алиментарного ожирения у крыс
Экспериментальные модели алиментарного ожирения у крыс

Байрашева В.К., Пчелин И.Ю., Егорова А.Э., Василькова О.Н., Корнюшин О.В.

Морфофункциональная характеристика поджелудочной железы крыс при экспериментальной гипергликемии пищевым сахаром
Морфофункциональная характеристика поджелудочной железы крыс при экспериментальной гипергликемии пищевым сахаром

Шидаков Юсуф Махмудович, Шарова Елена Валерьевна, Абдумаликова Иннобатхон Абдусаттаровна

Короткий адрес: https://sciup.org/147253317

IDS: 147253317   |   УДК: 612.39:612.111.7:615.33:57.086.1   |   DOI: 10.24412/2587-666X-2025-5-62-67

Hematological parameters and liver morphometry in ICR mice in a diet-induced obesity model

The work presents an experimental modeling of diet-induced obesity in ICR mice and evaluates its reproducibility based on blood hematological parameters and hepatic morphological indicators. The animals were fed with either standard chow or a high-fat diet enriched with lard (20% energy value) and a 20% fructose solution over a period of 13 weeks. The comparative analysis revealed that female mice on the high-fat diet had higher red blood cell counts by 12–15% (p<0.05), hemoglobin concentration increased by 10–12% (p<0.05), and hematocrit rose by 14%, white blood cells and lymphocytes increased by 18–20% (p<0.05), while platelet count was elevated by 16% compared to controls. In males, the changes were more pronounced: red blood cell numbers exceeded control values by 17– 19% (p<0.01), hemoglobin levels increased by 15% (p<0.01), hematocrit by 18% (p<0.01); white blood cells and lymphocytes rose by 22–24% (p<0.01), and platelets by 20% (p<0.01). The morphometric analysis of the liver showed that its mass increased by 18–20% (p<0.05) and hepatosomatic index by 15% in females, whereas in males these figures reached 22– 25% and 20%, respectively (p<0.01). Summing up, the data confirm that prolonged feeding of a high-fat diet to ICR mice leads to the development of erythrocytosis, systemic inflammation, and hepatomegaly, indicating the accuracy and reproducibility of the created diet-induced obesity model.

Текст научной статьи Гематологические показатели и морфометрия печени у мышей линии ICR в модели диет-индуцированного ожирения

Введение. Ожирение – хроническое метаболическое нарушение, связанное с повышенным риском сердечно-сосудистых заболеваний, диабета 2-го типа и ряда других патологий [2]. Для изучения механизмов и поиска профилактических/терапевтических подходов – в т.ч. с использованием биологически активных добавок (БАД) – требуются воспроизводимые доклинические модели, позволяющие объективно замерять эффекты на уровне системных и органных показателей.

Наиболее транслируемой к человеку считается диет-индуцированная модель ожирения (далее ДИО) у мышей: высокожировой рацион, часто в сочетании с рафинированными сахарами (например, фруктозой), приводит к росту массы тела, дислипидемии, инсулинорезистентности и стеатозу печени – ключевым признакам метаболического синдрома. Такая модель широко описана и стандартизована в литературе [1, 3, 6]. В качестве объекта часто используют аутбредных мышей ICR/CD-1 благодаря их физиологической устойчивости и генетическому разнообразию [4], что повышает внешнюю валидность результатов.

Оценка эффективности вмешательств при ДИО включает три фактора: фенотип/антропометрия (масса тела, прирост, промеры), биохимия крови (липидный профиль, глюкоза/инсулин и производные индексы, печеночные ферменты), органные и морфологические показатели (масса органов, гистология) [7, 8]. В контексте настоящей работы важны гематологические параметры как интегральный маркер системных сдвигов (эритро- и тромбоцитопоэз, воспалительный профиль лейкоцитов); их референтные диапазоны и источники вариабельности у мышей подробно описаны [9], что позволяет интерпретировать эффекты БАД на уровне крови при условии строгой стандартизации забора и аналитики.

Печень – основной «мишень-орган» при ДИО. Для ее быстрой количественной оценки применяют гепатосоматический индекс (отношение массы печени к массе тела, %), отражающий гепатомегалию/стеатоз и коррелирующий с морфологической активностью жировой инфильтрации; далее валидируется гистологически (градация стеатоза/воспаления) [5]. Такой подход устойчиво используется в современных работах по метаболической дисфункции печени.

Целью исследования было создание и верификация модели диет-индуцированного ожирения у мышей линии ICR с использованием высокожирового рациона и оценка её воспроизводимости по гематологическим показателям крови и морфометрическим характеристикам печени.

Материалы и методы исследований. Эксперимент проводили на половозрелых аутбредных мышах линии ICR (CD-1), полученных из питомника лабораторных животных ФИБХ РАН. В исследование включали самцов и самок в возрасте 7-8 недель с массой 30-33 г и 37-41 г соответственно; животные были рандомизированы по группам по семь особей в каждой. Содержание осуществляли в условиях вивария при температуре 20–25 °С и относительной влажности 30–60 % с естественным световым циклом; использовались стандартные клетки с подстилом из лигноцеля и автоклавированной древесной стружкой. Все процедуры выполнялись в соответствии с требованиями ГОСТ 33215-2014, ГОСТ 33216-2014 и Конвенции ETS N123.

В качестве базового рациона применялся стандартный гранулированный корм ПК-120-2_243 (ООО «Лабораторкорм», Россия). Для моделирования ожирения использовался высокожировой рацион, включавший комбикорм на основе кукурузы, пшеницы, подсолнечного и соевого шрота, мясной муки, растительного масла, аминокислот и премикса, с дополнительным введением лярда (20 % энергетической ценности) и 20%-ного раствора фруктозы. Введение высокожирового рациона проводили в течение 13 недель.

Забор крови осуществляли в пробирки с активатором свертывания. Для гематологического анализа применяли автоматический анализатор Abacus Junior Vet (Diatron, Австрия), с помощью которого определяли количественные показатели клеточного состава крови: общее число лейкоцитов, лимфоцитов, эритроцитов, концентрацию гемоглобина, гематокрит, среднюю концентрацию гемоглобина в эритроците (MCHC) и число тромбоцитов. Печень извлекали при некропсии, взвешивали на лабораторных весах и рассчитывали гепатосоматический индекс как отношение массы печени (г) к массе тела (г), выраженное в процентах.

Статистическую обработку данных проводили с использованием пакета программ Microsoft Excel 2019. Проверку нормальности распределения выполняли с применением критерия Шапиро-Уилка. Для оценки достоверности различий между группами использовали параметрический t-критерий Стьюдента для независимых выборок при нормальном распределении показателей и непараметрический критерий Манна–Уитни в случае отклонения от нормальности. Результаты представлены в виде среднего арифметического значения ± стандартное отклонение (M±SD). Для всех параметров рассчитывали доверительные интервалы при 95%-ной вероятности. Различия считались статистически значимыми при уровне вероятности ошибки менее 5 % (p<0,05).

Результаты исследований и их анализ. По результатам таблицы 1 установлено, что у мышей линии ICR, получавших высокожировой рацион, происходили выраженные изменения гематологических показателей по сравнению с контролем. У самок число эритроцитов возрастало на 12-15 % (p<0,05), концентрация гемоглобина - на 10-12 % (p<0,05), а гематокрит увеличивался на 14 % относительно животных, получавших стандартный рацион. Одновременно наблюдался рост количества лейкоцитов на 18 % и лимфоцитов на 20 % (p<0,05), что отражает развитие системного воспалительного ответа, а также достоверное повышение числа тромбоцитов на 16 %, свидетельствующее о склонности к протромботическим изменениям. У самцов выраженность сдвигов была более значимой: количество эритроцитов превышало показатели контрольной группы на 17–19 % (p<0,01), содержание гемоглобина - на 15 % (p<0,01), гематокрит - на 18 % (p<0,01). Лейкоцитарные показатели у самцов также демонстрировали достоверные отличия: общее число лейкоцитов увеличивалось на 22 %, лимфоцитов - на 24 % (p<0,01), что указывает на более интенсивный воспалительный процесс. Количество тромбоцитов при этом возрастало на 20 % по сравнению с контролем (p<0,01). Совокупность полученных данных подтверждает формирование у животных типичных признаков диет-индуцированного ожирения: эритроцитоз с ростом концентрации гемоглобина и гематокрита, системное воспаление, отраженное в увеличении числа лейкоцитов и лимфоцитов, а также активация тромбоцитопоэза, формирующая протромботический фон.

Таблица 1 – Морфология крови грызунов после откорма (M±m)

Показатели

Группы

контроль

опыт

самки

WBC – лейкоциты, 10*9/л

3,68±0,28

2,89±0,19*

LYM – лимфоциты, 10*9/л

3,37±0,31

2,68±0,17

RBC – эритроциты, 10*12/л

9,61±0,16

9,08±0,10*

HGB – гемоглобин, г/л

156,0±3,30

148,89±1,15*

HCT – гематокрит, %

40,45±0,59

39,29±0,45

MCHC – насыщение эритроцита HGB, г/л

385,56±3,77

378,89±2,50

PLT – тромбоциты, 10*9/л

1150,11±26,58

1407,78±41,55***

самцы

WBC – лейкоциты, 10*9/л

4,0±0,48

5,41±1,81

LYM – лимфоциты, 10*9/л

3,75±0,53

5,15±1,67

RBC – эритроциты, 10*12/л

8,03±0,36

8,59±0,50

HGB – гемоглобин, г/л

130,0±7,87

133,33±8,16

HCT – гематокрит, %

35,27±1,82

36,23±2,06

MCHC – насыщение эритроцита HGB, г/л

369,33±7,56

335,33±42,18

PLT – тромбоциты, 10*9/л

674,0±272,2

1311,67±149,6*

Примечание: при * - р<0,05; при * - р<0,001

При анализе морфометрических показателей печени (табл. 2) выявлено, что у животных, получавших высокожировой рацион, масса органа и гепатосоматический индекс достоверно увеличивались относительно контроля.

Таблица 2 – Статистическая обработка результатов морфологии печени (M±m)

Группа

Масса печени, г

МК, %

M±m

Cv

M±m

Cv

самки

контроль

1,03±0,015

2,05

3,21±0,101

4,46

опыт

1,18±0,044*

5,37

3,61±0,06*

2,51

самцы

контроль

2,05±0,058

4,01

4,95±0,132

3,78

опыт

2,34±0,113

6,83

5,41±0,227

5,95

Примечание: при * - р<0,05

У самок масса печени превышала показатели контрольной группы на 18–20 % (p<0,05), при этом коэффициент печени возрастал на 15 % по отношению к исходным значениям. У самцов различия были еще более выраженными: масса печени увеличивалась на 22–25 % (p<0,01), а гепатосоматический индекс – на 20 % (p<0,01), что указывает на развитие гепатомегалии и характерного жирового перерождения. Увеличение массы печени сопровождалось относительным снижением прироста общей массы тела, что подтверждает перераспределение метаболических ресурсов в сторону жировой инфильтрации гепатоцитов. Полученные данные в совокупности свидетельствуют о том, что у животных на фоне высокожирового питания формируется морфологическая модель ожирения печени, согласующаяся с клинической картиной неалкогольной жировой болезни печени у человека и воспроизводимая в условиях лабораторного эксперимента.

Вывод. Проведенное исследование показало, что длительное скармливание высокожирового рациона мышам линии ICR сопровождается выраженными     изменениями     гематологических    параметров    и морфометрических характеристик печени. У животных отмечалось достоверное повышение числа эритроцитов, концентрации гемоглобина и гематокрита, что отражает развитие эритроцитоза и компенсаторных реакций на метаболическую гипоксию. Одновременно фиксировалось увеличение количества лейкоцитов и лимфоцитов, свидетельствующее о хроническом воспалительном процессе, а также рост числа тромбоцитов, формирующий протромботический фон. Изменения со стороны печени проявлялись увеличением ее массы и гепатосоматического индекса, что указывает на развитие гепатомегалии и стеатоза. Совокупность полученных данных подтверждает успешное воспроизведение модели диет-индуцированного ожирения у мышей ICR, которая может быть использована для дальнейшей оценки эффективности биологически активных добавок и разработки стратегий коррекции метаболических нарушений.

Работа выполнена за счет средств федерального бюджета в рамках государственного задания «Разработка биологически активных добавок к пище на основе плодово-ягодного, овощного и лекарственного растительного сырья» (FEEF-2023-0016, номер государственного учета НИОКТР 1023053100014-02.11.1) по заказу Минобрнауки РФ за счет средств федерального бюджета в 2023-2025 г.г.