Генетическая паспортизация штамма Aspergillus niger Л-4 - промышленного продуцента лимонной кислоты с помощью геномного AFLP-фингерпринтинга
Автор: Шарова Н.Ю., Сафронова В.И.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Кормопроизводство, кормовые добавки
Статья в выпуске: 2 т.51, 2016 года.
Бесплатный доступ
Лимонная кислота играет важную роль в системе биохимических реакций клеточного дыхания, участвует в окислительных процессах в качестве природного антиоксиданта и синергиста антиокислителей, ингибируя, вместе с аскорбиновой кислотой, ферментативное действие оксидоредуктаз в растительных тканях. Лимонная кислота служит эффективным средством контроля заражения дрожжевыми и бактериальными патогенными культурами, что используется, например, при силосовании. По свойствам лимонная кислота составляет эффективную альтернативу антимикробным средствам с иным механизмом действия, в частности кормовым антибиотикам, применение которых в Европе запрещено. При этом продукты превращения лимонной кислоты в организме не оказывают отрицательного влияния. Распространенный продуцент лимонной кислоты - микромицет Aspergillus niger. В производственном цикле необходим контроль подлинности штаммов-продуцентов, однако идентификация по культурально-морфологическим характеристикам не в полной мере обеспечивает определение индивидуального статуса штамма, в связи с чем для аутентификации выделенных элитных линий этого микромицета мы применили генетическую паспортизацию. Следует отметить, что в 2015 году при масштабном изучении генетического разнообразия штаммов Aspergillus flavus было отмечено формирование уникальных AFLP-профилей, однако аспекты практического использования этого феномена не обсуждались (D. Singh с соавт., 2015). Объектом нашего исследования был осмофильный промышленный штамм - продуцент лимонной кислоты Aspergillus niger Л-4, полученный с использованием химических мутагенов и УФ-облучения в сочетании с отбором спонтанных вариантов. Целью работы было проведение геномного AFLP-фингерпринтинга этого штамма с использованием 12 различных комбинаций праймеров и создание уникального генетического паспорта культуры. В результате нами впервые для молекулярно-генетической паспортизации промышленного штамма микромицета A. niger Л-4 был оптимизирован метод AFLP-фингерпринтинга. Получены AFLP-профили для аутентификации осмофильного промышленного штамма - продуцента лимонной кислоты A. niger Л-4. Отобрана оптимальная пара праймеров Mse_cc GATGAGTCCTGAGTAACC и Eco_ас (FAM) GACTGCGTACCAATTAC, которая не зависит от объема вносимой пробы и обеспечивает максимальное количество фрагментов ДНК в диапазоне 33,68-593,78 п.н. (89 фрагментов) при соблюдении описанной методики проведения фингерпринтинга и параметров компьютерной обработки результатов. Полученные профили можно использовать для аутентификации штамма Aspergillus niger Л-4, взятого из разных источников.
Продуцент лимонной кислоты aspergillus niger, генетическая паспортизация, aflp-фингерпринтинг
Короткий адрес: https://sciup.org/142213930
IDR: 142213930 | DOI: 10.15389/agrobiology.2016.2.204rus
Список литературы Генетическая паспортизация штамма Aspergillus niger Л-4 - промышленного продуцента лимонной кислоты с помощью геномного AFLP-фингерпринтинга
- Sapers G.M., Miller R. Heated ascorbic/citric acid solution as browning inhibitor for pre-peeled potatoes. J. Food Sci., 1995, 63: 762-766 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2621.1995.tb06223.x
- Limbo S., Pierglovanni L. Shelf life of minimally processed potatoes. Part 1. Effects of high oxygen partial pressures in combination with ascorbic and citric acids on enzymatic browning. Postharvest Biology and Technology, 2006, 39(3): 254.
- Wichrowska D., Rogozińska I., Pawelzik E. Concentrations of some organic acids in potato tubers depending on weed control method, cultivar and storage conditions. Polish J. of Environ. Stud., 2009, 18(3): 487-491.
- Ananou S., Maqueda M., Martinez-Bueno M., Gálvez A., Valdivia E. Bactericidal synergism through enterocin AS-48 and chemical preservatives against Staphylococcus aureus. Letters in Applied Microbiology, 2007, 45: 19-23.
- Nielsen M.K., Arneborg N. The effect of citric acid and pH on growth and metabolism of anaerobic Saccharomyces cerevisiae and Zygosaccharomyces bailii cultures. Food Microbiology, 2007, 24: 101-105 ( ) DOI: 10.1016/j.fm.2006.03.005
- Пермитина Г.В., Верёвкин Е.Л. Способ получения концентрированного раствора хелата железа и хелат железа. Патент 2278868 РФ, МПК 51 C07F15/02, C07C229/16, C07C227/16, C05D9/02. Заявл. 18.02.2005. Опубл. 27.06.2006.
- Никифорова Т.А., Мушникова Л.Н., Львова Е.Б. Основы микробного синтеза лимонной кислоты. СПб, 2005.
- Willems A., Doignon-Bourcier F., Coopman R., Hoste B., de Lajudie P., Gillis M. AFLP fingerprint analysis of Bradyrhizobium strains isolated from Faidherbia albida and Aeschynomene species. System. Appl. Microbiol., 2000, 23: 137-147 ( ) DOI: 10.1016/S0723-2020(00)80055-7
- Wdowiak-Wróbel S., Małek W. Genomic diversity of Astragalus cicer microsymbionts revealed by AFLP fingerprinting. J. Gen. Appl. Microbiol., 2005, 51: 369-378.
- Safronova V., Chizhevskaya E., Bullitta S., Andronov E., Belimov A., Charles T.C., Lindström K. Presence of a novel 16S-23S rRNA gene intergenic spacer insert in Bradyrhizobium canariense strains. FEMS Microbiol. Letters, 2007, 269: 207-212.
- Aserse A.A., Räsänen L.A., Assefa F., Hailemariam A., Lindström K. Phylogeny and genetic diversity of native rhizobia nodulating common bean (Phaseolus vulgaris L.) in Ethiopia. Syst. Appl. Microbiol., 2012, 35: 120-131 ( ) DOI: 10.1016/j.syapm.2011.11.005
- Safronova V.I., Kimeklis A.K., Chizhevskaya E.P., Belimov A.A., Andronov E.E., Pinaev A.G., Pukhaev A.R., Popov K.P., Tikhonovich I.A. Genetic diversity of rhizobia isolated from nodules of the relic species Vavilovia formosa (Stev.) Fed. Antonie van Leeuwenhoek, 2014, 105: 389-399 ( ) DOI: 10.1007/s10482-013-0089-9
- Mahmood T., Masud T., Imran M., Ahmed I., Khalid N. Selection and characterization of probiotic culture of Streptococcus thermophilus from Dahi. Int. J. Food Sci. Nutr., 2013, 64(4): 494-501 ( ) DOI: 10.3109/09637486.2012.749840
- Li Y., Canchaya C., Fang F., Raftis E., Ryan K.A., van Pijkeren J.-P., van Sinderen D., O'Toole P.W. Distribution of megaplasmids in Lactobacillus salivarius and other lactobacilli. J. Bacteriol., 2007, 189(1): 6128-6139 ( ) DOI: 10.1128/JB.00447-07
- Kudo Y., Oki K., Watanabe K. Lactobacillus delbrueckii subsp. sunkii subsp. nov., isolated from sunki, a traditional Japanese pickle. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2012, 62: 2643-2649 ( ) DOI: 10.1099/ijs.0.037051-0
- Martínez-Peña M.D., Castro-Escarpulli G., Aguilera-Arreola M.G. Lactobacillus species isolated from vaginal secretions of healthy and bacterial vaginosis-intermediate Mexican women: a prospective study. BMC Infect. Dis., 2013, 13: 189-197 ( ) DOI: 10.1186/1471-2334-13-189
- Kathuria S., Sharma C., Singh P.K., Agarwal P., Agarwal K., Hagen F., Meis J.F., Chowdhary A. Molecular epidemiology and in-vitro antifungal susceptibility of Aspergillus terreus species complex isolates in Delhi, India: Evidence of genetic diversity by amplified fragment length polymorphism and microsatellite typing. PLoS One, 2015, 10(3): e0118997 ( ) DOI: 10.1371/journal.pone.0118997
- Chiotta M.L., Reynoso M.M., Torres A.M., Combina M., Chulze S.N. Molecular characterization and toxigenic profile of Aspergillus section Nigri populations isolated from the main grape-growing regions in Argentina. J. Appl. Microbiol., 2011, 110(2): 445-454 ( ) DOI: 10.1111/j.1365-2672.2010.04898.x
- Xia X., Lie T.K., Qian X., Zheng Z., Huang Y., Shen Y. Species diversity, distribution, and genetic structure of endophytic and epiphytic Trichoderma associated with banana roots. Microb. Ecol., 2011, 61(3): 619-625 ( ) DOI: 10.1007/s00248-010-9770-y
- Larralde-Corona C.P., Santiago-Mena M.R., Sifuentes-Rincón A.M., Rodríguez-Luna I.C., Rodríguez-Pérez M.A., Shirai K., Narváez-Zapata J.A. Biocontrol potential and polyphasic characterization of novel native Trichoderma strains against Macrophomina phaseolina isolated from sorghum and common bean. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2008, 80(1): 167-177 ( ) DOI: 10.1007/s00253-008-1532-0
- Paun O., Schönswetter P. Amplified fragment length polymorphism: an invaluable fingerprinting technique for genomic, transcriptomic, and epigenetic studies. Methods Mol. Biol., 2012, 862: 75-87 ( ) DOI: 10.1007/978-1-61779-609-8_7
- Сафронова В.И., Чижевская Е.П., Андронов Е.Е. Разработка методики молекулярно-генетической паспортизации штаммов сельскохозяйственных микроорганизмов с помощью AFLP-фингерпринтинга. Сельскохозяйственная биология, 2012, 6: 116-121.
- Ермакова В.П., Щербакова Е.Я., Василинец И.М., Финько В.М., Шушкевич Т.Н. Патент 975799 РФ, МКИ С12N 15/00, С 12Р 7/48 Штамм гриба Aspergillus niger Л-4 -продуцент лимонной кислоты. Заявл. 13.06.80. Опубл. 23.11.82.
- Safronova V., Tikhonovich I. Automated cryobank of microorganisms: Unique possibilities for long-term authorized depositing of commercial microbial strains. In: Microbes in applied research: current advances and challenges/A. Mendez-Vilas (ed.). World Scientific Publishing Co., Singapore, 2012: 331-334 ( ) DOI: 10.1142/9789814405041_0066
- Singh D., Radhakrishnan T., Kumar V., Bagwan N.B., Basu M.S., Dobaria J.R., Mishra G.P., Chanda S.V. Molecular characterisation of Aspergillus flavus isolates from peanut fields in India using AFLP. Braz. J. Microbiol., 2015, 46(3): 673-682 ( ) DOI: 10.1590/S1517-838246320131115