Гены-мишени для получения сортов картофеля (Solanum tuberosum L.) с заданными свойствами крахмала
Автор: Хлесткин В.К., Пельтек С.Е., Колчанов Н.А.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Картофелеводство: наука и технологии
Статья в выпуске: 1 т.52, 2017 года.
Бесплатный доступ
Крахмал - важное сырье органического происхождения, легкодоступное в промышленных масштабах для хозяйственной деятельности человека. Оптимальный набор физико-химических свойств молекул амилозы и амилопектина, составляющих крахмал, значительно варьирует в зависимости от области применения. Молекулярный, надмолекулярный состав и строение этих молекул регулируются генами биосинтеза и могут рассматриваться как фенотипические признаки, по которым возможна селекция. Комбинируя определенные варианты генов, можно запрограммировать растения картофеля на производство крахмала с заданной структурой и свойствами. Цель представленного обзора - обсуждение вариантов генов или их сочетаний, программирующих биосинтез крахмала в той или иной модификации, в зависимости от планируемого практического результата при последовательной постановке задачи на этапах «промышленное применение крахмала®свойства крахмала®белки (ферменты)®кодирующие гены». Для изменения генотипа растений может использоваться как классическая или маркер-опосредованная комбинационная селекция, так и методы генетической инженерии, в том числе получение нетрансгенных растений с заданными свойствами на основе технологий геномного редактирования. Биосинтез крахмала в клетках мякоти клубня картофеля происходит в цитозоле и пластидах с участием семи основных ферментов и завершается в крахмальной грануле (на ее поверхности или внутри) с привлечением еще около десятка ферментов. Так, нокаут гена GBSS кардинально повышает содержание амилопектина в крахмале, достигающее более 98 %, поэтому именно генотипы с нокаутом по указанному гену были получены раньше других генетически модифицированных форм картофеля с измененным крахмалом и протестированы в полевых условиях в качестве технической культуры. Крахмал с высоким содержанием амилопектина дает гели повышенной оптической прозрачности, устойчивости при центрифугировании, а также демонстрирует повышение максимальной и конечной температуры желатинизации и измененные реологические свойства. Если кроме гена GBSS ингибировать гены крахмалсинтаз SSII и SSIII, то крахмал образует гели, которые значительно стабильнее получаемых из обычного крахмала в условиях длительной заморозки и в циклах «замораживание-оттаивание». Ингибирование гена SBEI, кодирующего основной разветвляющий фермент, на практике не приводит к повышению количества амилозы в модифицированном картофеле. Однако совместное подавление экспрессии генов SBEI и SBEII позволяет получать крахмал с высоким содержанием амилозы (60-89 %) с примесью небольшого количества амилопектина. При усилении экспрессии фермента SBEII образуется крахмал с повышенной степенью разветвленности молекул амилопектина и укороченными цепями. При подавлении экспрессии SBEII, наоборот, степень разветвленности амилопектина снижается и возрастает количество удлиненных цепей. Нокаут гена GWD приводит к синтезу амилопектина со сниженным содержанием фосфатных групп и, соответственно, к уменьшению вязкости гелей на основе такого крахмала. Кроме того, скорость биокаталитического гидролиза крахмала с пониженным содержанием фосфатных групп уменьшается. Повышенный уровень экспрессии SSIV приводит к увеличению содержания крахмала в клубнях трансгенных растений как в теплице, так и в полевых условиях. На генетическом уровне можно также корректировать морфологию и кристалличность гранул крахмала. Как правило, морфологические признаки, в том числе физико-хими-ческие свойства крахмала, регулируются не одним-двумя генами, а генной сетью. Поэтому выявление локусов количественных признаков и идентификация диагностических маркеров на их основе позволяет применять методы маркер-ориентированной селекции (marker-assistant selection - MAS) для получения сортов картофеля, продуцирующих крахмал с заданными свойствами, который будет представлять собой оптимальное сырье для тех или иных отраслей промышленности.
Картофель, крахмал, гены биосинтеза, крахмалсинтаза, амилоза, амилопектин, разветвляющий фермент, физико-химические свойства
Короткий адрес: https://sciup.org/142213766
IDR: 142213766 | DOI: 10.15389/agrobiology.2017.1.25rus
Список литературы Гены-мишени для получения сортов картофеля (Solanum tuberosum L.) с заданными свойствами крахмала
- Murphy P. Starch. In: Handbook of hydrocolloids. Woodhead Publishing Series in Food Science, Technology and Nutrition/G.O. Phillips, P.A. Williams (eds.). CRC Press, Boca Raton, 2009.
- Singh J. Potato starch and its modification. In: Advances in potato chemistry and technology/J. Singh, L. Kaur (eds.). Academic Press, Burlington-San Diego-London-NY, 2016.
- Кряжев В.Н., Романов В.В., Широков В.А. Последние достижения химии и технологии производных крахмала. Химия растительного сырья, 2010, 1: 5-12.
- Wang T.L., Bogracheva T.Ya., Hedley C.L. Starch: as simple as A, B, C? J. Exp. Bot., 1998, 49(320): 481-502 ( ) DOI: 10.1093/jxb/49.320.481
- Schwall G.P., Safford R., Westcott R.J., Jeffcoat R., Tayal A., Shi Y.-Ch., Gidley M.J., Jobling S.A. Production of very-high-amylose potatostarch by inhibition of SBE A and B. Nat. Biotechnol., 2000, 18: 551-554 ( ) DOI: 10.1038/75427
- Исследовательская компания «ID-Marketing». А жизнь-то налаживается… Обзор российского рынка натуральных крахмалов. Российский продуктовый рынок, 2016, 1. Режим доступа: http://www.foodmarket.spb.ru/archive.php?year=2016&number=155&article=2236. Без даты.
- Jobling S. Improving starch for food and industrial applications. Curr. Opin. Plant Biol., 2004, 7: 210-218 (doi 10.1016/j.pbi.2003.12.001).
- Comparot-Moss S., Denyer K. The evolution of the starch biosynthetic pathway in cereals and other grasses. J. Exp. Bot., 2009, 60(9): 2481-2492 (doi 10.1093/jxb/erp141).
- Хлесткина Е.К., Шумный В.К. Перспективы использования прорывных технологий в селекции: система CRISPR/Cas9 для редактирования генома растений. Генетика, 2016, 52(7): 774-787 ( ) DOI: 10.7868/S0016675816070055
- Хлесткина Е.К., Шумный В.К., Колчанов Н.А. Маркер-ориентированная селекция и примеры ее использования в мировом картофелеводстве. Достижения науки и техники АПК, 2016, 30(10): 5-8.
- Кочетов А.В., Шумный В.К. Трансгенные растения как генетические модели для изучения функций генов растений. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2016, 20(4): 475-481 ( ) DOI: 10.18699/VJ16.17
- Wandelt C. Quality traits: altered starch composition in potato (BASF Plant Science Company GmbH, Meeting on «Genetic basis of unintended effects in modified plants», 14-15 January 2014, Canada). Ottawa, 2014. Available http://hesiglobal.org/hesi//wp-content/uploads/si-tes/11/2015/12/Quality-traits-altered-starch-composition-in-potato.pdf. No date.
- Ryffel G.U. Making the most of GM potatoes. Nat. Biotechnol., 2010, 28(4): 318 ( ) DOI: 10.1038/nbt0410-318
- Holme I.B., Wendt T., Holm P.B. Intragenesis and cisgenesis as alternatives to transgenic crop development. Plant Biotechnol. J., 2013, 11(4): 395-407 ( ) DOI: 10.1111/pbi.12055
- Andersson M., Turesson H., Nicolia A., Falt A-S., Samuelsson M., Hofvander P. Efficient targeted multiallelic mutagenesis in tetraploid potato (Solanum tuberosum) by transient CRISPR-Cas9 expression in protoplasts. Plant Cell Rep., 2017, 36: 117-128 ( ) DOI: 10.1007/s00299-016-2062-3
- Ortega-Ojeda F.E., Larsson H., Eliasson A.-Ch. Gel formation in mixtures of hydrophobically modified potato and high amylopectin potato starch. Carbohyd. Polym., 2005, 59: 313-327 ( ) DOI: 10.1016/j.carbpol.2004.10.011
- Ortega-Ojeda F.E., Larsson H., Eliasson A.-Ch. Gel formation in mixtures of amylose and high amylopectin potato starch. Carbohyd. Polym., 2004, 57: 55-66 ( ) DOI: 10.1016/j.carbpol.2004.03.024
- Sanchez T., Dufour D., Moreno I.X., Ceballos H. Comparison of pasting and gel stabilities of waxy and normal starches from potato, maize, and rice with those of a novel waxy cassava starch under thermal, chemical, and mechanical stress. J. Agric. Food Chem., 2010, 58: 5093-5099 ( ) DOI: 10.1021/Jf1001606
- Šimkova D., Lachman J., Hamouz K., Vokal B. Effect of cultivar, location and year on total starch, amylose, phosphorus content and starch grain size of high starch potato cultivars for food and industrial processing. Food Chem., 2013, 141: 3872-3880 ( ) DOI: 10.1016/j.foodchem.2013.06.080
- Safford R., Jobling S.A., Sidebottom C.M., Westcott R.J., Cooke D., Tober K.J., Strongitharm B.H., Russell A.L., Gidley M.J. Consequences of antisense RNA inhibition of starch branching enzyme activity on properties of potato starch. Carbohyd. Polym., 1998, 35: 155-168 ( ) DOI: 10.1016/S0144-8617(97)00249-X
- Jobling S.A., Schwall G.P., Westcott R.J., Sidebottom C.M., Debet M., Gidley M.J., Jeffcoat R., Safford R. A minor form of starch branching enzyme in potato (Solanum tuberosum L.) tubers has a major effect on starch structure: cloning and characterization of multiple forms of SBE A. Plant J., 1999, 18(2): 163-171 ( ) DOI: 10.1046/j.1365-313X.1999.00441.x
- Andersson M., Melander M., Pojmark P., Larsson H., Bulow L., Hofvander P. Targeted gene suppression by RNA interference: An efficient method for production of high-amylose potato lines. J. Biotechnol., 2006, 123: 137-148 ( ) DOI: 10.1016/j.jbiotec.2005.11.001
- Hofvander P., Andersson M., Larsson C.-T., Larsson H. Field performance and starch characteristics of high amylose potatoes obtained by antisense gene targeting of two branching enzymes. Plant Biotechnol. J., 2004, 2: 311-320 ( ) DOI: 10.1111/j.1467-7652.2004.00073.x
- Brummell D.A., Watson L.M., Zhou J., McKenzie M.J., Hallett I.C., Simmons L., Carpenter M., Timmerman-Vaughan G.M. Overexpression of STARCH BRANCHING ENZYME II increases short-chain branching of amylopectin and alters the physicochemical properties of starch from potato tuber. BMC Biotechnol., 2015, 15: 28 ( ) DOI: 10.1186/s12896-015-0143-y
- Wikman J., Larsen F.H., Motawiac M.S., Blennow A., Bertoft E. Phosphate esters in amylopectin clusters of potato tuber starch. Int. J. Biol. Macromol., 2011, 48: 639-649 ( ) DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2011.02.005
- Bertoft E., Blennow A. Structure of potato starch. In: Advances in potato chemistry and technology/J. Singh, L. Kaur (eds.). Academic Press, Burlington-San Diego-London-NY, 2016.
- Lorberth R., Ritte G., Willmitzer L., Kossmann J. Inhibition of a starch-granule-bound protein leads to modified starch and repression of cold sweetening. Nat. Biotechnol., 1998, 16: 473-477 ( ) DOI: 10.1038/nbt0598-473
- Ritte G., Lloyd J.R., Eckermann N., Rottmann A., Kossmann J., Steup M. The starch-related R1 protein is an alpha -glucan, water dikinase. PNAS, 2002, 99(10): 7166-7171 ( ) DOI: 10.1073/pnas.062053099
- Anders Viksø-Nielsen A., Blennow A., Jørgensen K., Kristensen K.H., Jensen A., Møller B.L. Structural, physicochemical, and pasting properties of starches from potato plants with repressed r1-gene. Biomacromolecules, 2001, 2: 836-843.
- Ritte G., Scharf A., Eckermann N., Haebel S., Steup M. Phosphorylation of transitory starch is increased during degradation. Plant Physiol., 2004, 135: 2068-2077 ( ) DOI: 10.1104/pp.104.041301
- Ritte G., Heydenreich M., Mahlowa S., Haebel S., Koёtting O., Steup M. Phosphorylation of C6-and C3-positions of glucosyl residues in starch is catalysed by distinct dikinases. FEBS Lett., 2006, 580: 4872-4876 ( ) DOI: 10.1016/j.febslet.2006.07.085
- Carpenter M.A., Joyce N., Genet R.A., Cooper R.D., Murray S.R., Noble A.D., Butler R.C., Timmerman-Vaughan G.M. Starch phosphorylation in potato tubers is influenced by allelic variation in the genes encoding glucan water dikinase, starch branching enzymes I and II, and starch synthase III. Front. Plant Sci., 2015, 6: 143 ( ) DOI: 10.3389/fpls.2015.00143
- Stark D.M., Timmerman K.P., Barry G.F., Preiss J., Kishore G.M. Regulation of the amount of starch in plant tissues by ADP glucose pyrophosphorylase. Science, 1992, 258: 287-292 ( ) DOI: 10.1126/science.258.5080.287
- Zhang H., Liu J., Hou J., Yao Y., Lin Y., Ou Y., Song B., Xie C. The potato amylase inhibitor gene SbAI regulates cold-induced sweetening in potato tubers by modulating amylase activity. Plant Biotechnol. J., 2014, 12: 984-993 ( ) DOI: 10.1111/pbi.12221
- Gamez-Arjona F.M., Li J., Raynaud S., Baroja-Fernadez E., Munoz F.J., Ovecka M., Ragel P., Bahaji B., Pozueta-Romero J., Merida A. Enhancing the expression of starch synthase class IV results in increased levels of both transitory and long-term storage starch. Plant Biotechnol. J., 2011, 9: 1049-1060 ( ) DOI: 10.1111/j.1467-7652.2011.00626.x
- Zhang Y., Sun F., Fettke J., Schottler M.A., Ramsden L., Fernie A.R., Lim B.L. Heterologous expression of AtPAP2 in transgenic potato influences carbon metabolism and tuber development. FEBS Lett., 2014, 588: 3726-3731 ( ) DOI: 10.1016/j.febslet.2014.08.019
- van Soest J.J.G., Tournois H., de Wit D., Vliegenthart J.F.G. Short-range structure in (partially) crystalline potato starch determined with attenuated total reflectance Fourier-trans-form IR spectroscopy. Carbohyd. Res., 1995, 279: 201-214 ( ) DOI: 10.1016/0008-6215(95)00270-7
- Manners D.J. Recent developments in our understanding of amylopectin structure. Carbohyd. Polym., 1989, 11(2): 87-112 ( ) DOI: 10.1016/0144-8617(89)90018-0
- Jane J., Wong K.-S., McPherson A.E. Branch-structure difference in starches of A-and B-type X-ray patterns revealed by their Naegeli dextrins. Carbohyd. Res., 1997, 300: 219-227 ( ) DOI: 10.1016/S0008-6215(97)00056-6
- Kozlov S.S., Blennow A., Krivandin A.V., Yuryev V.P. Structural and thermodynamic properties of starches extracted from GBSS and GWD suppressed potato lines. Int. J. Biol. Macromol., 2007, 40: 449-460 ( ) DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2006.11.001
- Fan X.Y., Guo M., Li R.D., Yang Y.H., Liu M., Zhu Q., Tang S.Z., Gu M.H., Xu R.G., Yan C.J. Allelic variations in the soluble starch synthase II gene family result in changes of grain quality and starch properties in rice (Oryza sativa L.). J. Agr. Sci., 2017, 155(1): 129-140 ( ) DOI: 10.1017/S0021859615001331
- Wattebled F., Buleon A., Bouchet B., Ral J.-P., Lienard L., Delvalle D., Binderup K., Dauvillee D., Ball S., D’Hulst C. Granule-bound starch synthase I. A major enzyme involved in the biogenesis of B-crystallites in starch granules. Eur. J. Biochem., 2002, 269: 3810-3820 ( ) DOI: 10.1046/j.1432-1033.2002.03072.x
- Yamamori M., Fujita S., Hayakawa K., Matsuki J., Yasui T. Genetic elimination of a starch granule protein, SGP-1, of wheat generates an altered starch with apparent high amylose. Theor. Appl. Genet., 2000, 101: 21-29 ( ) DOI: 10.1007/s001220051444
- Huang X.-F., Nazarian-Firouzabadi F., Vincken J.-P., Ji Q., Suurs L.C.J.M., Visser R.G.F., Trindade L.M. Expression of an engineered granule-bound Escherichia coli glycogen branching enzyme in potato results in severe morphological changes in starch granules. Plant Biotechnol. J., 2013, 11: 470-479 ( ) DOI: 10.1111/pbi.12033
- Werij J.S., Furrer H., van Eck H.J., Visser R.G.F., Bachem C.W.B. A limited set of starch related genes explain several interrelated traits in potato. Euphytica, 2012, 186: 501-516 ( ) DOI: 10.1007/s10681-012-0651-y
- Sliwka J., Sołtys-Kalina D., Szajko K., Wasilewicz-Flis I., Strzelczyk-Zyta D., Zimnoch-Guzowska E., Jakuczun H., Marczewski W. Mapping of quantitative trait loci for tuber starch and leaf sucrose contents in diploid potato. Theor. Appl. Genet., 2016, 129: 131-140 ( ) DOI: 10.1007/s00122-015-2615-9
- Li L., Paulo M.-J., Strahwald J., Lubeck J., Hofferbert H.-R., Tacke E., Junghans H., Wunder J., Draffehn A., van Eeuwijk F., Gebhardt C. Natural DNA variation at candidate loci is associated with potato chip color, tuber starch content, yield and starch yield. Theor. Appl. Genet., 2008, 116: 1167-1181 ( ) DOI: 10.1007/s00122-008-0746-y
- Li L., Tacke E., Hofferbert H.R., Lübeck J., Strahwald J., Draffehn A.M., Walkemeier B., Gebhardt C. Validation of candidate gene markers for marker-assisted selection of potato cultivars with improved tuber quality. Theor. Appl. Genet., 2013, 126(4): 1039-1052 ( ) DOI: 10.1007/s00122-012-2035-z
- Schonhals E.M., Ortega F., Barandalla L., Aragones A., Ruiz de Galarreta J.I., Liao J.-C., Sanetomo R., Walkemeier B., Tacke E., Ritter E., Gebhardt C. Identification and reproducibility of diagnostic DNA markers for tuber starch and yield optimization in a novel association mapping population of potato (Solanum tuberos-um L.). Theor. Appl. Genet., 2016, 129: 767-785 ( ) DOI: 10.1007/s00122-016-2665-7
- Sanetomo R., Gebhardt C. Cytoplasmic genome types of European potatoes and their effects on complex agronomic traits. BMC Plant Biol., 2015, 15: 162 ( ) DOI: 10.1186/s12870-015-0545-y
- Keeling P.L., Myers A.M. Biochemistry and genetic of starch synthesis. Annu. Rev. Food Sci. Technol., 2010, 1: 271-303 ( ) DOI: 10.1146/annurev.food.102308.124214
- Chen X., Salamini F., Gebhardt C. A potato molecular-function map for carbohydrate metabolism and transport. Theor. Appl. Genet., 2001, 102: 284-295 ( ) DOI: 10.1007/s001220051645