Гидрофобные свойства и пленкообразующая способность штаммов рода Pseudomonas, изолированных из разных экологических ниш

Демаков В.А. Кузнецова М.В. Карпунина Т.И. Николаева Н.В.

Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio

Рубрика: Экология

Статья в выпуске: 1, 2010 года.

Бесплатный доступ

Обнаружено, что большинство почвенных и клинических культур были пленкообразующими. Как гидрофильные по BATH-тесту штаммы (из водной фазы в фазу гексадекана экстрагировалось не более 5-8% клеток), так и более гидрофобные псевдомонады (экстрагировалось до 24,2%) проявляли высокую пленкообразующую способность, т.е. не было обнаружено четкого взаимного соответствия между гидрофильно-гидрофобными свойствами клеточной стенки бактерий и степенью пленкообразования. У клинических штаммов гетерогенность популяции по обоим признакам более выражена.

почвенные бактерии \ клинические штаммы \ гидрофобность \ специфическая и не- специфическая адгезия \ пленкообразующая способность

Похожие статьи в разделе Классификация и систематика микроорганизмов

Биопленки углеводородокисляющих бактерий антропогенно нарушенных почв г. Когалыма
Биопленки углеводородокисляющих бактерий антропогенно нарушенных почв г. Когалыма

Коробейникова А.С., Голубев Д.М., Тарасюк А.К., Уткин Д.В., Нечаева О.В., Глинская Е.В.

Короткий адрес: https://sciup.org/147204880

IDS: 147204880   |   УДК: 579.841.11:

Текст научной статьи Гидрофобные свойства и пленкообразующая способность штаммов рода Pseudomonas, изолированных из разных экологических ниш

В природных экотопах основная часть микроорганизмов существует в виде ассоциаций, определяемых общим термином «биопленки»: пространственно и метаболически структурированных сообществ, расположенных на границе раздела фаз и заключенных во внеклеточный полимерный матрикс (Николаев, Плакунов, 2007). Развитие прикрепленных сообществ – одна из основных стратегий выживания бактерий не только в окружающей среде, но и в организмах инфицируемых хозяев (Ильина и др., 2006). Установлено, что многие хронические инфекции вызываются бактериями, растущими в виде биопленок (Радионович и др., 2006; Costerton et al., 1999).

Формирование микробных сообществ проходит несколько стадий развития. На первом этапе перехода от планктонной формы к прикрепленному состоянию происходит сначала обратимая, а затем необратимая адгезия к поверхности (Сидоренко, 2004). На этапе обратимого прикрепления действуют неспецифические физико-химические силы взаимодействия между молекулами и структурами на поверхностях микроорганизма и твердого субстрата (Николаев, Плакунов, 2009). Показатель гидрофобности является одной из ключевых характеристик клеточной поверхности, определяющий адсорбционную иммобилизацию микроорганизмов. Вместе с тем, диссоциативные варианты бактерий, отражающие различия/изменения в клеточной оболочке, могут значительно отличаться по гидрофобности и адгезивным свойствам (Милько, Егоров,

  • 1996) . Ответить на вопрос, является ли гидрофобность свойством, определяющим исход неспецифического взаимодействия, представляется возможным по конечному результату – эффективности формирования биопленок разными штаммами.

Цель данной работы – изучение гидрофобности и пленкообразующей способности различных представителей рода Pseudomonas .

Материалы и методы исследования

В работе использовали 16 штаммов почвенных бактерий рода Pseudomonas (I группа) и 11 изоля-тов Pseudomonas aeruginosa (II группа) , выделенных из различного клинического материала.

Гидрофобность клеток оценивали по относительному распределению между водной фазой и фазой органического растворителя гексадекана (Коваленко и др., 1998; Rosenberg et al., 1980). Для этого к суспензии клеток (3 мл), термостатированной в течение 15 мин при 35°С, добавляли гексадекан (0.2 мл, 0.5 мл), интенсивно встряхивали в течение 1 мин, затем снова термостатировали в аналогичном режиме и регистрировали изменение оптической плотности в водной фазе при λ = 590 нм. Среднее значение относительного изменения (в %) оптической плотности клеточной суспензии в водной фазе по сравнению с ее первоначальной величиной служило мерой гидрофобности бактериальных клеток. Расчет осуществляли по форму-

ле: % гидрофобности = (А с – A г ) / А с х 100, где А с – ОП 590 суспензии до обработки гексадеканом, A г – ОП 590 суспензии после обработки гексадеканом.

Образование биопленок изучали на поверхности 96-луночной полистироловой планшеты согласно И.А. Шагиняну (Шагинян и др., 2007). Суточные бульонные культуры в разведении 1/100 инокулировали в лунки по 150 мкл в 4-х повторах. После 24-часовой инкубации при 37°C содержимое лунок (планктонную культуру) аккуратно удаляли, пленки окрашивали 0.1% раствором генци-анвиолета (170 мкл в лунку) в течение 45 мин. Затем после 3-кратного промывания в лунки для экстрагирования краски добавляли по 200 мкл 96% этанола. Уровень экстракции (абсорбции) генци-анвиолета этанолом измеряли на спектрофотометре Ultrоspec 3300 при длине волны 580 нм в единицах оптической плотности (Ед, ОП 580 ). Степень пленкообразования соответствовала интенсивности окрашивания содержимого лунок красителем. Пленкообразующими считали культуры, если значение ОП превышало контроль в 3 и более раз (ОП 580 ≥1.0), склонными к адгезии – в 2–3 раза (0.6≥ОП 580 <1.0), остальные оценивали как непленкообразующие. Контролем служили лунки с LB-бульоном (Луриа-Бертани) (ОП 580 ≤0.3).

Результаты и их обсуждение

Показатель гидрофобности клеточной поверхности псевдомонад из различных экологических ниш не превышал 25%, M±σ составила 5.9±3.2% – для «почвенной» группы и 9.5±7.2% – для «клинической». Этот показатель варьировал у разных штаммов в обеих группах, причем более значительно во II группе.

При сравнении показателя пленкообразования в обеих группах выявлено следующее. Высокую пленкообразующую способность чаще проявляли клинические изоляты (81.8%). Основную часть почвенных бактерий составили штаммы, «склонные к адгезии» (таблица).

Биопленка, образованная штаммом P. aeruginosa 3–4 (в инвертированном варианте, увеличение 1×1500)

Отмечено, что как гидрофильные по BATH-тесту штаммы P. aeruginosa (в фазу гексадекана из водной фазы экстрагировалось не более 5–8% клеток), так и более гидрофобные псевдомонады (экстрагировалось до 24.2%) проявляли высокую пленкообразующую способность, т.е. не было обнаружено четкого взаимного соответствия между гидрофильно-гидрофобными свойствами клеточной стенки бактерий и степенью пленкообразова-ния. Учитывая, что псевдомонады разных видов подвергаются расщеплению на диссоцианты R-, S- и M-типов (Милько, Мартынкина, 1996), изучаемые штаммы были разделены по доминирую-щиму морфотипу колоний при росте на LB-агаре. Различные представители рода Pseudomonas формировали колонии преимущественно S-типа. Среди почвенных штаммов выявлены все три варианта, в то время как R-штаммы в группе клинических изолятов отсутствовали.

Прослежена взаимосвязь анализируемых показателей среди штаммов с разными морфотипами колоний. Оказалось, что гидрофобность клеток S-штаммов варьировала в широких пределах: выявлены как максимальные для данной выборки, так и нулевые показатели коэффициента гидрофобности. Клетки М-вариантов практически не переходили из суспензии в гексадекан (M±σ – 3.6±2.5%). Бактерии R-типа, изолированные из почвы, устойчиво проявляли гидрофобные свойства с минимальным разбросом показателей коэффициента гидрофобности. Важно подчеркнуть, что только для R-штаммов отмечена прямая зависимость между показателем гидрофобности и пленкообразо-ванием. В то же время, клинические штаммы с М-морфотипом колоний и низким коэффициентом гидрофобности все были отнесены к пленкообразующим. Как почвенные, так и клинические S-изоляты были вариабельны по обоим признакам.

Заключение

Псевдомонады относятся к убиквитарным микроорганизмам, которые отличает популяционная гетерогенность, обусловливающая возможность вида выжить практически в любых местах обитания. Такая вариабельность выявлена и по гидрофобности клеточной поверхности, и по пленкообразующей способности в обеих изученных группах, хотя у почвенных изолятов средние отклонения этих показателей были минимальными. По-видимому, это связано с относительно более постоянными условиями обитания бактерий в природных экосистемах, где отсутствуют агрессивные факторы, имеющие место в условиях ЛПУ (антибиотики, дезинфектанты, смена хозяина и др.).

Как показали наши исследования, закрепление этих микроорганизмов на поверхности и ее дальнейшая колонизация далеко не всегда детерминируется гидрофобностью клеток. Очевидно, что относительно низкую гидрофобность клеточной по- верхности у псевдомонад могут компенсировать P. aeruginosa и т.п. Это объясняет высокую плен-другие факторы адгезии, в том числе пили, жгути- кообразующую способность М- и S-вариантов. ки, альгинат, гемагглютинин, экзоэнзим S – для

Гидрофобные свойства и пленкообразующая способность штаммов рода Pseudomonas

Группа

Штамм

Морфотип колонии

Показатель гидрофобности, % М±m

Пленкообразующая способность, ОП 580 М±m

Место и год выделения

I

А51

S

9.2±1.2

0.728 ± 0.116

Солонец, Троицк, Челябинская обл., 2009

А59

S

10.5 ± 0.5

0.593 ± 0.096

Там же

А60

R

10.3 ± 1.1

1.120 ± 0.088

Там же

А61

S

4.5 ± 0.8

1.401 ± 0.303

Там же

А66

M

5.7 ± 0.6

0.898 ± 0.061

Там же

H7

R

13.7 ± 1.5

1.031 ± 0.075

Каштановая почва, Саратовская обл.

H8

S

2.7 ± 1.1

0.974 ± 0.078

Там же

H12

M

2.9 ± 0.6

0.473 ± 0.078

Там же

H13

M

2.0 ± 0.5

0.532 ± 0.069

Там же

H15

S

6.0 ± 0.9

0.464 ± 0.069

Там же

H16

S

4.4 ± 0.4

0.654 ± 0.080

Там же

Н17

R

10.0 ± 1.2

1.004 ± 0.098

Там же

Н18

S

4.1 ± 0.4

0.700 ± 0.046

Там же

Н19

S

0.0 ± 0

0.691 ± 0.084

Там же

Н20

М

6.6 ± 0.7

1.056 ± 0.126

Там же

Н31

М

1.2 ± 0.3

1.037 ± 0.275

Там же

II

3-4

M

0.0 ± 0

2.269 ± 0.106

ГКБ, Пермь, 2009

3-19

M

0.6 ± 0.3

1.916 ± 0.087

Там же

3-24

S

0.0 ± 0

0.642 ± 0.059

Там же

8-4

M

5.3 ± 0.5

1.199 ± 0.044

Там же

2пл

S

5.7 ± 0.8

0.992 ± 0.129

ЦРБ, п. Лобаново, 2010

31пл

S

7.5 ± 0.8

0.381 ± 0.015

Там же

60пл

S

14.8 ± 1.6

1.739 ± 0.089

Там же

9

S

21.2 ± 1.9

1.113 ± 0.087

ГКБ, Чайковский, 2010

17

M

8.2 ± 0.7

0.904 ± 0.093

Там же

18

S

17.3 ± 2.7

1.108 ± 0.074

Там же

К-7

S

24.2 ± 1.8

1.171 ± 0.104

ККБ, Пермь, 2009

Штаммоспецифичность показателя гидрофобности и независимо от этого высокая пленкообразующая способность клинических штаммов (особенно М-типа) еще раз указывает на высочайшую пластичность P. aeruginosae, способных устойчиво сохранять наиболее выгодный в конкретной экологической нише признак. Вместе с тем, можно полагать, что у природных штаммов доминируют механизмы неспецифической адгезии, а у клинических – фактором, определяющим колонизацию и пленкообразование в биотопах макроорганизма, служит специфическая адгезия. Сочетание этих двух механизмов обеспечивает выживание псевдомонад в нозокомиальных условиях.

Список литературы Гидрофобные свойства и пленкообразующая способность штаммов рода Pseudomonas, изолированных из разных экологических ниш

  • Бухарин, О.В., Механизмы выживания бактерий/О.В. Бухарин, А.Л. Гинцбург, Ю.М. Романова [и др.]. М.: Медицина, 2005. 367 с.
  • Ильина, Т.С. Системы коммуникаций у бактерий и их роль в патогенности/Т.С. Ильина, Ю.М. Романова, А.Л Гинцбург//Микробиология. 2006. № 3. С. 22-29.
  • Коваленко, Г.А. Углеродминеральные носители для адсорбционной иммобилизации нерастущих бактериальных клеток/Г.А. Коваленко Е.В. Кузнецова, В.М Ленская//Биотехнология. 1998. № 1. С. 47-56.
  • Милько, Е.С. Гидрофильно-гидрофобные и адгезивные свойства диссоциантов Rhodococcus rubropertinctus/Е.С. Милько, Н.С. Егоров//Микробиология. 1994. Т. 64, Вып. 2. С. 382-284.
  • Милько, Е.С. Морфологические и физиолого-биохимические особенности диссоциантов Pseudomonas aeruginosae/Е.С. Милько, Л.П. Мартынкина//Микробиология. 1996. Т. 65, № 3. С. 352-356.
  • Николаев, Ю.А. Биопленка -«город микробов» или аналог многоклеточного организма?/Ю.А. Николаев, В.К. Плакунов//Микробиология. 2007. Т. 76, № 2. С. 149-163.
  • Радионович, А.М. Биофильм и его потенциальная роль в патогенезе хронического бронхолегочного процесса у больных муковисцедозом, инфицированных Pseudomonas aeruginosae/А.М. Радионович, Н.Ю. Каширская, Н.И. Капранов//Пульмонология. Прил. по муковисцидозу. 2006. С. 106-112.
  • Сидоренко, С.В. Роль бактериальных биопленок в патологии человека//Инф. хир. 2004. Т. 2, № 3. С. 16-20.
  • Шагинян, И.А., Формирование биопленок клиническими штаммами бактерий комплекса Burkholderia cepacia в зависимости от их фенотипических и генотипических характеристик/И.А. Шагинян, Г.А. Данилина, М.Ю. Чернуха [и др.]//Журн. микробиол. 2007. № 1. С. 3-9.
  • Costerton, J.W. Bacterial biofilms: a common cause of persistent infections/J.W. Costerton, P.S. Stewart, E.P. Greenberg//Science. 1999. Vol. 284. P. 1318-1322.
  • Rosenberg, M. Adherence of bacteria to hydrocarbons: A simple method for measuring cell surface hydrophobicity/M. Rosenberg, D. Gutnik, E. Rosenberg//FEMS Microbiol. Lett. 1980. Vol. 9. P. 29-33.
Еще