Гипотеза о специфической взаимосвязи пероксисомальных, митохондриальных и цитоплазматических процессов в регуляции обмена веществ у высокопродуктивных жвачных

Автор: Галочкина В.П., Агафонова А.В., Галочкин В.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 2 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

Авторы считают, что объяснение накопленных данных об обменных процессах у высокопродуктивных жвачных животных, которое пока что остается в рамках существующей физиолого-биохимической парадигмы, требует углубленной интерпретации на принципиально новой экспериментальной и концептуальной основе, предполагающей анализ комплексных взаимосвязей совокупности объектов и их функций, которые ранее не рассматривались. Во-первых, под иным углом зрения надлежит подходить к биохимизму внутриклеточной компартментализации, учитывая строгую взаимную комплементарность функционирования митохондриального цикла Кребса и цитоплазматических процессов гликолиза и глюконеогенеза с пероксисомальным глиоксилатным циклом. Принципиальную возможность функционирования цикла двууглеродных кислот (глиоксилатного цикла) у высокопродуктивных жвачных авторы впервые постулировали, получив экспериментальные данные о проявлении каталитической активности его ключевых ферментов - изоцитратлиазы (КФ 4.1.3.1) и малатсинтазы (КФ 4.1.3.2) (В.П. Галочкина с соавт., 2012). Наличие этих ферментов позволяет синтезировать дефицитную глюкозу из уксусной кислоты, поступающей в больших количествах из содержимого рубца. Жвачные считаются физиологически гипогликемичными животными. Филогенетически сложилось, что их основной корм - грубая растительная пища, увеличивающая долю ацетата в содержимом рубца. Легкогидролизуемые углеводы в содержимом рубца снижают процент ацетата и повышают долю пропионата и бутирата, что результируется в понижении рН (M. Oba с соавт., 2015). При перманентном дефиците глюкозы повышается соотношение соматотропина и инсулина, что свидетельствует об активизации метаболически неэффективного процесса глюконеогенеза. Одновременно в крови возрастает концентрация неэтерифицированных жирных кислот, указывающая на рост липолиза в жировых депо. Отмечается низкое отношение количества инсулина и глюкагона при увеличении концентрации мочевины. Снижается жирность молока (F. Piccioli-Cappelli с соавт., 2014). Пероксисомы частично способны осуществлять β-окисление жирных кислот до 13-го углеродного атома, что снимает напряженность с цикла Кребса и потенцирует изменения его метаболической направленности. Авторы рассматривают глиоксилатный цикл в организме животного как возможность форсифицировать обмен веществ и продуктивность. Путь окисления двууглеродных кислот энергетически более экономичен и эффективен, чем окисление в цикле трикарбоновых кислот, поскольку глиоксилатный цикл представляет собой укороченный цикл трикарбоновых кислот, способный функционировать, исключая лимитирующие реакции с участием изоцитратдегидрогеназы и α-кетоглутаратдегидрогеназы (В.П. Галочкина с соавт., 2011). Во-вторых, обязательному рассмотрению подлежат новые гипотетические положения о ведущей роли в регуляции обмена веществ многофакторных взаимосвязей между моно- и мультимолекулярными констелляциями (как временно образующимися, так и постоянно действующими) моно- и полимерных биологически активных веществ, гормонов и ферментов. В эту обширную специфическую группу входят инсулин, пероксисомальный цистеамин, глиоксилевая кислота, кислород, гидропероксид и оксидазы D-аминокислот. Излагаемые в статье теоретические положения прошли первичную валидацию в модельных экспериментах на интенсивно откармливаемых бычках с применением агониста β-адренэргических рецепторов кленбутерола.

Еще

Регуляция метаболизма, пероксисомы, глиоксилатный цикл, оксидаза d-аминокислот, глиоксилат, цистеамин, инсулин, гидропероксид, кислород

Короткий адрес: https://sciup.org/142213905

IDR: 142213905   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.2.223rus

Список литературы Гипотеза о специфической взаимосвязи пероксисомальных, митохондриальных и цитоплазматических процессов в регуляции обмена веществ у высокопродуктивных жвачных

  • Галочкина В.П., Солодкова А.В., Галочкин В.А. Разработка научных основ новых подходов направленной регуляции обмена веществ жвачных животных с целью повышения их здоровья и продуктивности. Труды регионального конкурса проектов фундаментальных научных исследований, 2012, 17: 205-214.
  • Oba M., Mewis J. L., Zhining Z. Effects of ruminal doses of sucrose, lactose, and cornstarch on ruminal fermentation and expression of genes in ruminal epithelial cells. J. Daire Sci., 2015, 98(1): 586-594 ( ) DOI: 10.3168/jds.2014-8697
  • Piccioli-Cappelli F., Loor J.J., Seal C.J., Minuti A., Trevisi E. Effect of dietary starch level and high rumen-undegrаdable protein on endocrine-metabolic status, milk yield, and milk composition in dairy cows during early and late lactation. J. Dairy Sci., 2014, 97(12): 7788-80 ( ) DOI: 0.3168/jds.2014-8336
  • Галочкина В.П., Солодкова А.В., Галочкин В.А. О специфике взаимосвязей в метаболизме три-и дикарбоновых кислот у высокопродуктивных жвачных животных (гипотеза). Проблемы биологии продуктивных животных, 2011, 4: 5-18.
  • Галочкин В.А., Агафонова А.В., Галочкина В.П., Черепанов Г.Г. Метаболические и регуляторные функции пероксисом. Проблемы биологии продуктивных животных, 2015, 1: 5-25.
  • Sandalio L.M., Romero-Puertas M.C. Peroxisomes sense and respond to environmental cues by regulating ROS and RNS signalling networks. Ann. Bot., 2015, 116(4): 475-485 ( ) DOI: 10.1093/aob/mcv074
  • Pascual-Ahuir A., Manzanares-Estreder S., Proft M. Pro-and antioxidant functions of the peroxisome-mitochondria connection and its impact on aging and disease. Oxid. Med. Cell Longev., 2017, 2017: 9860841 ( ) DOI: 10.1155/2017/9860841
  • Del Río L.A., López-Huertas E. ROS generation in peroxisomes and its role in cell signaling. Subcell. Biochem., 2013, 69: 231-55 ( ) DOI: 10.1007/978-94-007-6889-5_13
  • Santillo A., Falvo S., Chieffi P., Burrone L., Chieffe Baccari G., Longobardi S., Di Fiore M.M. D-aspartate affects NMDA receptor-extracellular signal-regulated kinase pathway and upregulates androgen receptor expression in the rat testis. Theriogenology, 2014, 81(5): 744-751 ( ) DOI: 10.1016/j.theriogenology.2013.12.009
  • De Duve C., Baudhuin P. Peroxisomes (microbodies and related particles). Physiol. Rev., 1966, 46: 323-357 ( ) DOI: 10.1152/physrev.1966.46.2.323
  • Schrader M., Yoon Y. Mitochondria and peroxisomes: are the ‘Big Brother’ and the ‘Little Sister’ closer than assumed? Bioassays, 2007, 29: 1105-1114 ( ) DOI: 10.1002/bies.20659
  • Camoes F., Bonekamp N.A., Delille H.K., Schrader M. Organelle dynamics and dysfunction: a closer link between peroxisomes and mitochondria. J. Inherit. Metab. Dis., 2009, 32: 163-180 ( ) DOI: 10.1007/s10545-008-1018-3
  • Ohide H., Miyoshi Y., Maruyama R., Hamase K., Konno R. D-Amino acid metabolism in mammals: biosynthesis, degradation and analytical aspects of the metabolic study. Journal of Chromatography B: Biomedical Sciences and Applications, 2011, 879(29): 3162-3168 ( ) DOI: 10.1016/j.jchromb.2011.06.028
  • He L., He T., Farrar S., Ji L., Liu T., Ma X. Antioxidants maintain cellular redox homeostasis by elimination of reactive oxygen species. Cell Physiol. Biochem., 2017, 44(2): 532-553 ( ) DOI: 10.1159/000485089
  • Tripathi D.N., Walker C.L. The peroxisome as a cell signaling organelle. Curr. Opin. Cell Biol., 2016, 39: 109-12 ( ) DOI: 10.1016/j.ceb.2016.02.017
  • Trompier D., Vejux A., Gondcaille C., Geillon F., Nury T., Savary S., Lizard G. Brain peroxisomes. Biochimie, 2014, 98: 102-110 ( ) DOI: 10.1016/j.biochi.2013.09.009
  • Yamanaka M., Miyoshi Y., Ohide H., Hamase K., Konno R. D-Amino Acids in the brain and mutant rodents lacking D-amino acid oxidase activity. Amino Acids, 2012, 43(5): 1811-1821 ( ) DOI: 10.1007/s00726-012-1384-x
  • Haruta N., Iizuka H., Ishii K., Yoshihara S., Ichiba H. Alteration in the plasma concentration of a DAAO inhibitor, 3-methylpyrazole-5-carboxylic acid, in the ketamine-treated rats and the influence on the pharmacokinetics of plasma D-tryptophan. Proc. Jpn. Acad. Ser. B. Phys. Biol. Sci., 2011, 87(10): 641-648 ( ) DOI: 10.2183/pjab.87.641
  • Sasabe J., Suzuki M., Imanishi N. Activity of D-amino acid oxidase is widespread in the human central nervous system. Front. Synaptic Neurosci., 2014, 6: 14 ( ) DOI: 10.3389/fnsyn.2014.00014
  • Zhao W.J., Yin M. Advances in the study of D-amino acid oxidase in the central nervous system. Sheng Li Ko Hsueh Chin Chan , 2008, 39(1): 64-66 (in Chinese) (PMID: 18357693).
  • Hayes G.R., Lockwood D.N. Role of insulin receptor phosphorylation in the insulinomimetic effects of hydrogen peroxide. PNAS USA, 1987, 84(22): 8115-8119 ( ) DOI: 10.1073/pnas.84.22.8115
  • Hamilton G.A. Peroxisomal oxidases and suggestions for the mechanism of action of insulin and other hormones. In: Advances in enzymology and related areas of molecular biology/A. Meister (ed.). John Wiley & Sons, 1985, V. 57: 85-178 ( ) DOI: 10.1002/9780470123034.ch2
  • Hamilton G.A., Buckthal D.J., Mortensen R.M., Zerby K.W. Reactions of cysteamine and other amine metabolites with glyoxylate and oxygen catalyzed by mammalian D-amino acid oxidase. PNAS USA, 1979, 76(6): 2625-2629 (PMCID: PMC383660 PMID: 37501).
  • Farias R.N. Insulin-membrane interaction and membrane fluidity changes. Biochim. Biophys. Аcta, 1987, 906(3): 459-468 ( ) DOI: 10.1016/0304-4157(87)90020-7
  • Nishina Y. Structure and reaction mechanism of D-amino acid oxidase. SEIKAGAKU , 2008, 80(6): 569-578 (in Japanese) (PMID: 18634432).
  • Haruta N., Iizuka H., Ishii K., Yoshihara S., Ichiba H., Fukushima T. Alteration in the plasma concentration of a DAAO inhibitor, 3-methylpyrazole-5-carboxylic acid, in the ketamine-treated rats and the influence on the pharmacokinetics of plasma D-tryptophan. Proceedings of the Japan Academy. Series B, Physical and biological sciences, 2011, 87(10): 641-648 ( ) DOI: 10.2183/pjab.87.641
  • Hawkins J., Mahony D., Maetschke S., Wakabayashi M., Teasdale R.D., Bodén M. Identifying novel peroxisomal Proteins. Proteins, 2007, 69: 606-616 ( ) DOI: 10.1002/prot.21420
  • Salido E., Pey A.L., Rodriguez R., Lorenzo V. Primary hyperoxalurias: disorders of glyoxylate detoxification. Biochim. Biophys. Acta, 2012, 1822(9): 1453-1464 ( ) DOI: 10.1016/j.bbadis.2012.03.004
  • Lu J.M., Gong N., Wang Y.C., Wang Y.X. D-Amino acid oxidase-mediated increase in spinal hydrogen peroxide is mainly responsible for formalin-induced tonic pain. Br. J. Pharmacol., 2012, 165(6): 1941-1955 ( ) DOI: 10.1111/j.1476-5381.2011.01680.x
  • Gustafson E.C., Morgans C.W., Tekmen M., Sullivan S.J., Esguerra M., Konno R., Miller R.F. Retinal NMDA receptor function and expression are altered in a mouse lacking D-amino acid oxidase. J. Neurphysiol., 2013, 110(12): 2718-2726 ( ) DOI: 10.1152/jn.00310.2013
  • Khoronenkova S.V., Tishkov V.I. D-amino acid oxidase: physiological role and applications. Biochemistry, 2008, 73(13): 1511-1518 ( ) DOI: 10.1134/S0006297908130105
  • Kawazoe T., Park H.K., Iwana S., Tsuge H., Fukui K. Human D-amino acid oxidase: an update and review. Chem. Rec., 2007, 7(5): 305-315 () DOI: 10.1002/tcr.20129
  • Bonekamp N.A., Volkl A., Fahimi H.D., Schrader M. Reactive oxygen species and peroxisomes: struggling for balance. BioFactors, 2009, 35: 346-355 ( ) DOI: 10.1002/biof.48
  • Saam J., Rosini E., Molla G., Schulten K., Pollegioni L., Ghisla S. O2 reactivity of flavoproteins dynamic access of dioxygen to the active site and role of H+ relay system in D-amino acid oxidase. J. Biol. Chem., 2010, 285(32): 24439-24446 ( ) DOI: 10.1074/jbc.M110.131193
  • Галочкина В.П., Галочкин В.А. Роль ферментов и интермедиатов цикла Kребса в повышении продуктивности и стрессустойчивости бычков, выращиваемых на мясо. Проблемы биологии продуктивных животных, 2007, 2: 84-93.
  • Галочкина В.П., Галочкин В.А. Возможная роль пероксисом и глиоксилатного цикла в регуляции обмена веществ в организме жвачных животных. Успехи физиологических наук, 2009, 49(1): 66-76.
  • Фомичев Ю.П., Левантин Д.Л., Дзюба Н.Ф., Радченков В.П., Бутров Е.В., Голенкевич Е.К. Системное применение биологически активных веществ при откорме животных. Вестник сельскохозяйственной науки, 1977, 2(245): 85-92.
  • Islinger M., Grille S., Fahimi D.H., Schrader M. The peroxisome: an update on mysteries. Histochem. Cell Biol., 2012, 137(5): 547-574 ( ) DOI: 10.1007/s00418-012-0941-4
  • Yang T., Poovaiah B.W. Hydrogen peroxide homeostasis: activation of plant catalase by calcium/calmodulin. PNAS USA, 2002, 99(6): 4097-4102 ( ) DOI: 10.1073/pnas.052564899
  • Tsai S.C., Lu C.C., Lin C.S., Wang P.S. Antisteroidogenic actions of hydrogen peroxide on rat Leydig cells. J. Cell. Biochem., 2003, 90: 1276-1286 ( ) DOI: 10.1002/jcb.10738
  • Волвенкин С.В., Попов В.Н., Епринцев А.Т. Субклеточная локализация и свойства ферментов глиоксилатного цикла в печени крыс с аллоксановым диабетом. Биохимия, 1999, 64(9): 1185-1191.
  • Popov V.N., Volvenkin S.V., Eprintsev A.T., Igamberdiev A.U. Glyoxylate cycle enzymes are present in liver peroxisomes of alloxan-treated rats. FEBS Lett., 1998, 440(1-2): 55-58 ( ) DOI: 10.1016/S0014-5793(98)01422-7
  • Кондрашова М.Н., Родионова М.А. Реализация глиоксилевого цикла в митохондриях ткани животных. Доклады АН СССР, 1971, 196(5): 1225-1227.
  • Попов В.Н., Волвенкин С.В., Епринцев А.Т., Игамбердиев А.У. Индукция ферментов глиоксилатного цикла в различных тканях голодающих крыс. Известия РАН, Серия биологическая, 2000, 6: 672-678.
Еще
Статья обзорная