Характеристика генетической структуры аквакультурной и дикой популяций стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) на основе анализа микросателлитов

Автор: Харзинова В.Р., Волкова В.В., Никипелов В.И., Доцев А.В., Барминцева А.Е., Бардуков Н.В., Никипелова А.К., Абдельманова А.С., Мюге Н.С., Зиновьева Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Геномика, генофонд, репродуктивные биотехнологии: к 95-летию Федерального исследовательского центра животноводства - ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста

Статья в выпуске: 4 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

Стерлядь (Acipenser ruthenus L. 1758) - один из наиболее мелких и короткоцикловых видов среди рыб семейства Acipenseridae с самым широким ареалом. Одно из ключевых условий, обеспечивающих эффективность мероприятий по сохранению и рациональному использованию генетических ресурсов этого в недавнем прошлом важного промыслового вида, находящегося сейчас в депрессивном состоянии, - изучение и оценка генетического разнообразия популяций стерляди. В настоящей работе на основе анализа полиморфизма 12 микросателлитных локусов (STR, short tandem reapets) представлены сведения о генетической изменчивости нескольких как заводских, так и естественных популяций, относящихся к бассейнам Белого, Каспийского, Карского, Азовского и Черного морей. Исследования проводили в 2023-2024 годах, ДНК выделяли из тканей грудных плавников стерляди (n = 191). Выборка состояла из двух групп рыб. Первая группа включала аквакультурные образцы от трех предприятий, на которых стада сформированы из особей стерляди окского (OK, n = 50, Можайский производственно-экспериментальный рыбоводный завод, д. Горетово, Можайский городской округ, Московская обл.), нижневолжского (NV, n = 34, аквакомплекс Астраханского государственного технического университета - АГТУ, г. Астрахань, Астраханская обл.) и сухонского (SX, n = 35, ООО Рыботоварная фирма «Диана», р. Кадуй, Кадуйский р-н, Вологодская обл.) происхождения. Во вторую группу были включены образцы от рыб из пяти природных популяций: куйбышевской (KV, n = 16, р. Волга, Республика Татарстан), саратовской (SV, n = 16, р. Волга, Саратовская обл.), донской (DN, n = 14, р. Дон, Ростовская обл.), вятской (VT, n = 16, р. Вятка, Республика Татарстан) и енисейской (EN, n = 10, р. Енисей, Красноярский край). Полиморфизм 12 STR микросателлитов (Aru13, Spl-163, An20, LS-68, AoxD161, AfuG 41, Afu 68 b, AfuG 51, LS-39, AfuG 63, AfuG 112, Aru18) определяли на генетических анализаторах ABI3130xl («Applied Biosystems», США) и НАНОФОР 05 (НПК «Синтол», Россия). Для оценки генетического разнообразия рассчитывали показатели аллельного разнообразия (AR), скорректированного на размер выборки, наблюдаемой (HO), несмещенной ожидаемой гетерозиготности (UHE) и коэффициента инбридинга (UFIS), основанного на несмещенной ожидаемой гетерозиготности. Для оценки происхождения, дисперсии и родства, характеристики генетической структуры и генетических связей между исследованными выборками стерляди использовали анализ главных компонент (Principal Component Analysis, PCA) и рассчитывали значения матрицы попарных генетических дистанций F ST и Jost’s D с последующим построением дендрограмм «сеть соседей» в программе SplitsTree 4.14.5. По результатам генетического анализа группа аквакультурных образцов из АГТУ (NV) имела наименьшие значения HO (0,566±0,098) и UHE (0,573±0,089). Во всех остальных семи популяциях стерляди величина HO варьировалась от 0,569 у SX до 0,708 у EN, а значения показателя UHE были выше 0,6. В семи исследованных выборках стерляди отмечались невысокие положительные значения коэффициента инбридинга (FIS), область доверительного интервала (CI 95 %) которого перекрывала нулевое значение, указывая на недостоверные отклонения числа гетерозигот от теоретически ожидаемого в указанных выборках. Исключение составила енисейская популяция стерляди, у которой детектировали отрицательные значения коэффициента инбридинга, что свидетельствует об избытке гетерозигот (UFIS(EN) = -0,1). Применение нескольких статистических подходов для оценки генетической структуры выявило, что наиболее обособлена енисейская популяция. При этом между группами рыб, относящимися к Волго-Каспийскому (окского, куйбышевского, саратовского и вятского происхождения) и Азово-Черноморскому (донская популяция) бассейнам было обнаружено сходство по частоте общих аллелей, общность генетической структуры и низкий уровень генетической дифференциации. Полученные в нашей работе данные о состоянии генетического разнообразия, генетическом сходстве и различиях между заводскими стадами стерляди, а также дикими популяциями Каспийского, Карского, Азово-Черноморского бассейнов могут быть востребованы при планировании управления маточными стадами и мер по сохранению уникального генофонда вида A. ruthenus . Для расширения представлений о генетической структуре генофонда российской стерляди эти исследования будут продолжены на выборках большего размера и с привлечением образцов из других стад аквакультуры и природных популяций.

Еще

Acipenser ruthenus, стерлядь, аквакультура, природные популяции, генетическое разнообразие, генетическая структура, str

Короткий адрес: https://sciup.org/142243762

IDR: 142243762   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.4.666rus

Список литературы Характеристика генетической структуры аквакультурной и дикой популяций стерляди (Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758) на основе анализа микросателлитов

  • Макеева А.П., Павлов Д.С., Павлов Д.А. Атлас молоди пресноводных рыб России. М., 2011.
  • Волосников Г.И. Обзор данных по биологии стерляди Acipenserruthenus (Linnaeus, 1758). Вестник Астраханского государственного технического университета, 2017, 2(64): 67-72.
  • Рубан Г.И., Ходоревская Р.П., Кошелев В.Н. О состоянии осетровых в России. Астраханский вестник экологического образования, 2015, 1(31): 42-50.
  • Niu X., Wang X., Zhang Y., Zhao Z., Fan E. Integration and application of sturgeon identification methods. Biodiversity Science, 2022, 30(6): 22034 (doi: 10.17520/biods.2022034).
  • IUCN Biodiversity Assessment & Knowledge Team: Red List Unit. The IUCN Red List of Threatened Species. Режим доступа: https://www.iucnredlist.org/search?query=Sturgeon&searchType=species. Дата обращения: 01.05.2024.
  • Быков А.Д., Бражник С.Ю. Современное состояние запасов и искусственного воспроизводства стерляди в России. Вопросы рыболовства, 2022, 23(3): 5-30 (doi: 10.36038/0234-2774-2022-23-3-5-30).
  • Чебанов М.С., Галич Е.В. Руководство по искусственному воспроизводству осетровых рыб. Технические доклады ФАО по рыбному хозяйству и аквакультуре. № 558. Анкара, 2013.
  • ФГБУ «Главрыбвод». Деятельность. Режим доступа: https://glavrybvod.ru/. Дата обращения: 01.05.2024.
  • Бугаев Л.А., Небесихина Н.А., Алимова А.Ш., Гайдамаченко В.Н. Генетическое разнообразие производителей русского осетра из ремонтно-маточного стада Донского осетрового завода ФГБУ «Главрыбвод» в 2018-2023 гг. Рациональная эксплуатация водных биологических ресурсов. Материалы Международной научно-технической конференции, Владивосток, 26-27 октября 2023 года. Владивосток, 2023: 140-146.
  • Щербакова В.Д., Барминцева А.Е., Сафронов А.С. Оценка генетического разнообразия стад русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii Brandt, 1833) каспийской популяции семи осетровых рыбоводных заводов ФГБУ «Главрыбвод». Современные проблемы и перспективы развития рыбохозяйственного комплекса. Материалы XI Международной научно-практической конференции молодых ученых и специалистов, СПб, 25-26 сентября 2023 года. М., 2023: 243-245.
  • Судакова Н.В., Эльхетави А., Васильева Л.М., Анохина А.З. Оценка экономической эффективности выращивания русского осетра товарной массы в бассейнах УЗВ, садках и прудах. Технологии пищевой и перерабатывающей промышленности АПК — продукты здорового питания, 2019, 2(28): 40-45.
  • ГК «Агриконсалт». Рынок осетровых: состояние и перспективы. Режим доступа: https://agri-cons.ru/publikatsii/nashi-publikatsii/rynok-osetrovykh-sostoyanie-i-perspektivy/ . Дата обращения: 02.05.2024.
  • Павлюк А.А., Горбенко Е.В. Современные проблемы искусственного воспроизводства осетровых видов рыб в азовском бассейне. Сборник тезисов докладов участников пула научно-практических конференций, Сочи, 23-27 января 2020 года. Керчь, 2020: 220-222.
  • Васильева Л.М. Проблемы и перспективы развития аквакультуры осетровых рыб в современных условиях. Сборник статей Международной научно-практической конференции «Аквакультура осетровых рыб: проблемы и перспективы», Астрахань, 10-12 октября 2017 года. Астрахань, 2017: 7-10.
  • Wenne R. Microsatellites as molecular markers with applications in exploitation and conservation of aquatic animal populations. Genes (Basel), 2023, 14(4): 808 (doi: 10.3390/genes14040808).
  • Hauser L., Baird M., Hilborn R., Seeb L.W., Seeb J.E. An empirical comparison of SNPs and microsatellites for parentage and kinship assignment in a wild sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) population. Mol. Ecol. Resour., 2011, 11: 150-161 (doi: 10.1111/j.1755-0998.2010.02961.x).
  • Wilson A.B., Ashe J., Padron M., Hamilton H. Comprehensive genus-wide screening of seahorse microsatellite loci identifies priority species for conservation assessment. Conserv. Genet. Resour., 2021, 13: 221-230. (doi: 10.1007/s12686-021-01198-4).
  • Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers. Nucleic Acids Research, 1989, 17: 6463-6471 (doi: 10.1093/nar/17.16.6463).
  • Edwards A., Civitello A., Hammond H.A., Caskey C.T. DNA typing and genetic mapping with trimeric and tetrameric tandem repeats. The American Journal of Human Genetics, 1991, 49(4): 746-775.
  • Baron E.E., Mário L.M., Verneque R.S., Coutinho L.L. Parentage testing and effect of misidentification on the estimation of breeding value in Gir cattle. Genet. Mol Biol., 2002, 25(4): 389-394 (doi: 10.1590/S1415-47572002000400006).
  • Kuleung C., Baenziger P.S., Dweikat I. Transferability of SSR markers among wheat, rye and triticale. Theor. Appl .Genet., 2004, 108(6) :1147-1150 (doi: 10.1007/s00122-003-1532-5).
  • Yang W., Kang X., Yang Q., Lin Y., Fang M. Review on the development of genotyping methods for assessing farm animal diversity. Anim. Sci. Biotechnol., 2013, 4(1): 2 (doi: 10.1186/2049-1891-4-2).
  • Козлова Н., Базелюк Н., Файзулина Д., Стоногина Е. Применение молекулярно-генетических исследований в аквакультуре осетровых рыб. Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство, 2013, 3: 113-117.
  • Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Использование микросателлитных локусов для установления видовой принадлежности осетровых (Acipenseridae) и выявления особей гибридного происхождения. Генетика, 2013, 49(9): 1093 (doi: 10.7868/S0016675813090038).
  • Игнашев А.А., Щербакова В.Д., Борисов М.Я., Барминцева А.Е., Думнич Н.В., Мюге Н.С. Популяционно-генетическая структура стерляди Acipenser ruthenus L., 1758 реки Молога (Вологодская область) в условиях ее реакклиматизации. Трансформация экосистем, 2023, 6(4): 79-95 (doi: 10.23859/estr-230810).
  • Fazekas G., Kovács G., Sándor Z.J., Bogár K., Géczi A., Kovács B. Genetic characterization of endangered Sterlet (Acipenser ruthenus, Linnaeus 1758) Gene Bank Broodstock, natural and cultured populations in Hungary. Fishes, 2024, 9: 201 (doi: 10.3390/fishes9060201).
  • Алимова А.Ш., Небесихина Н.А., Абросимова Е.Б. Исследование генетического разнообразия белуги (Huso huso Linnaeus, 1758) в ремонтно-маточном стаде Донского осетрового завода на основе микросателлитных локусов. Материалы Всероссийской (национальной) научно-практической конференции «Актуальные проблемы науки и техники», Ростов-на-Дону, 16-18 марта 2022 года. Ростов-на-Дону, 2022: 133-134.
  • Hu Y., Liu X., Yang J., Xiao K., Wang B., Du H. Development and characterization of a duplex PCR assay in Chinese sturgeon (Acipenser sinensis) for genetic analysis. Sci. Rep., 2020, 10(1): 3451 (doi: 10.1038/s41598-020-60401-y).
  • Becker R.A., Wilks A.R., Brownrigg R., Minka T.P., Deckmyn A. Draw geographical maps. R package version 3.3.0. 2018. Режим доступа: https://CRAN.R-project.org/package=maps. Без даты.
  • Никипелов В.И., Харзинова В.Р., Волкова В.В., Никипелова А.К., Бардуков Н.В., Грозеску Ю.Н., Зиновьева Н.А. Разработка мультилокусной STR-панели и оценка достоверности происхождения аквакультурной стерляди (Acipenser ruthenus). Известия НВ АУК, 2024. 3(75): 273-282 (doi: 10.32786/2071-9485-2024-03).
  • Kalinowski S.T., Taper M.L. Maximum likelihood estimation of the frequency of null alleles at microsatellite loci. Conservation Genetics, 2006, 7(6): 991-995 (doi: 10.1007/s10592-006-9134-9).
  • Keenan J.D., Hotez P.J., Amza A., Stoller N.E., Gaynor B.D., Porco T.C., Lietman T.M. Elimination and eradication of neglected tropical diseases with mass drug administrations: a survey of experts. PLoS Neglected Tropical Diseases, 2013, 7(12): 2562 (doi: 10.1371/journal.pntd.0002562).
  • Jombart T., Ahmed I. Adegenet 1.3-1: new tools for the analysis of genome-wide SNP data. Bioinformatics, 2011, 27(21): 3070-3071 (doi: 10.1093/bioinformatics/btr521).
  • Wickham H. Ggplot2: elegant graphics for data analysis (use R!). Springer, New York, 2009.
  • Weir B.S., Cockerham C.C. Estimating F-statistics for the analysis of population structure. Evolution, 1984, 38(6): 1358-1370 (doi: 10.2307/2408641).
  • Jost L. G(ST) and its relatives do not measure differentiation. Molecular Ecology, 2008, 17: 4015-4026 (doi: 10.1111/j.1365-294x.2008.03887.x).
  • Huson D.H., Bryant D. Application of phylogenetic networks in evolutionary studies. Molecular Biology and Evolution, 2006, 23(2): 254-267 (doi: 10.1093/molbev/msj030).
  • R Core Team. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for statistical computing. Vienna, Austria, 2012. Режим доступа: https://www.semanticscholar.org/paper/R%3A-A-language-and-environment-for-statistical-Team/659408b243cec55de8d0a3bc51b81173007aa89b. Без даты.
  • Sharma R., Kishore A., Mukesh M., Ahlawat S., Maitra A., Pandey A.K., Tantia M.S. Genetic diversity and relationship of Indian cattle inferred from microsatellite and mitochondrial DNA markers. BMC Genet., 2015, 16: 73 (doi: 10.1186/s12863-015-0221-0).
  • Elhaik E. Principal Component Analyses (PCA)-based findings in population genetic studies are highly biased and must be reevaluated. Sci. Rep., 2022, 12: 14683 (doi: 10.1038/s41598-022-14395-4).
  • Борякова Е.Е., Кочетков И.Б. Применение метода главных компонент для анализа зоологических данных. Актуальные вопросы современной науки, 2009, 7-1: 6-11.
  • Garner B.A., Hoban S., Luikart G. IUCN Red List and the value of integrating genetics. Conservation Genetics, 2020, 21: 795-801 (doi: 10.1007/s10592-020-01301-6).
  • Moghim M., Javanmard A., Pourkazemi M., Tan S., Panandam J., Kor D., Laloei F. Application of microsatellite markers for genetic conservation and management of Persian sturgeon (Acipenser persicus, Borodin, 1897) in the Caspian Sea. Journal of Applied Ichthyology, 2013, 29: 696-703 (doi: 10.1111/JAI.12195).
  • Boscari E., Pujolar J.M., Dupanloup I., Corradin R., Congiu L. Captive breeding programs based on family groups in polyploid sturgeons. PLoS ONE, 2014, 9: e110951 (doi: 10.1371/journal.pone.0110951).
  • Song N., Nwafili S.A., Gao T.X. Genetic diversity and population structure of Chrysichthys nigrodigitatus from Niger Delta based on AFLP analysis. Biochemical Systematics and Ecology, 2011, 39(4-6): 320-327 (doi: 10.1016/j.bse.2011.04.002).
  • Abbas K., Zhou X., Li Y., Gao Z., Wang W. Microsatellite diversity and population genetic structure of yellowcheek, Elopichthys bambusa (Cyprinidae) in the Yangtze River. Biochemical Systematics and Ecology, 2010, 38(4): 806-812 (doi: 10.1016/j.bse.2010.08.003).
  • Cvijanović G., Adnadević T., Jarić I., Lenhardt M, Marić S. Genetic analysis of sterlet (Acipenser ruthenus L.) populations in the Middle and Lower Danube sections. North-Western Journal of Zoology, 2017, 13(1): 34-43.
  • Pobedintseva M.A., Makunin A.I., Kichigin I.G., Kulemzina A.I., Serdyukova N.A., Romanenko S.A., Vorobieva N.V., Interesova E.A., Korentovich M.A., Zaytsev V.F., Mischenko A.V., Zadelenov V.A., Yurchenko A.A., Sherbakov D.Y., Graphodatsky A.S., Trifonov V.A. Population genetic structure and phylogeography of sterlet (Acipenser Ruthenus, Acipenseridae) in the Ob and Yenisei river basins. Mitochondrial DNA. Part A, DNA Mapping, Sequencing, and Analysis. 2019, 30(1): 156-164 (doi: 10.1080/24701394.2018.1467409).
  • Fopp-Bayat D., Kuzniar P., Kolman R., Liszewski T., Kucinski M. Genetic analysis of six sterlet (Acipenser ruthenus) populations —recommendations for the plan of restitution in the Dniester River. Iranian Journal of Fisheries Science, 2015, 14: 634-645.
  • Барминцева А.Е., Мюге Н.С. Генетический полиморфизм сибирского осетра Acipenser baerii Brandt, 1869 в аквакультуре. Генетика, 2018, 54(2): 216-223 (doi: 10.7868/S0016675818020030).
  • Слынько Е.Е., Слынько Ю.В. Генетические последствия реинтродукции стерляди в бассейне реки Сухона. Сборник научных трудов по материалам Национальной научно-практической конференции с международным участием «Научно-прикладные аспекты производства, переработки и ветеринарно-санитарного контроля сельскохозяйственной продукции», Ярославль, 27-28 марта 2019 года. Ярославль, 2019: 150-154.
Еще
Статья научная