Характеристика проявления лептоспироза в Республике Бурятия в период 2003-2013 гг.

Возбудители лептоспирозной инфекции – лептоспиры – уступают по числу сероваров только энтеробактериям. Патогенные лептоспиры представлены 202 сероварами, по антигенному родству объединены в 23 серогруппы. В ветеринарно-лабораторной практике имеют диагностическое значение 7 серогрупп: Pomona, Tarassovi, Grippotyphosa, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola.

У крупного рогатого скота в Республике Бурятия, по данным лабораторных источников, инфекционный процесс лептоспироза вызывается серогруппами: Poland (25–30%), Kabura (35–40%), реже Pomona (10– 15%), Tarrassovin Hebdomadis (5–10%); возможна вариабельность внутри этих серогрупп.

Диагностика лептоспироза в республике введена в лабораторную практику с 1974 года. Вначале серологические исследования методом РМА проводились только в Республиканской научно-производственной ветеринарной лаборатории, затем данный вид диагностики поэтапно стал внедряться в районных и межрайонных ветеринарных лабораториях, уже с конца 90-х годов прошлого столетия лабораторная диагностика проводится во всех ветеринарных лабораториях РБ.

Цель работы . Провести обзорный анализ по лептоспирозу животных в Бурятии и дать эпизоотическую оценку.

Условия и методы исследований. Для проведения серологической диагностики методом РМА (реакция микроагглютинации) применяются стандартные музейные культуры, в состав которых входят 7 серо-групп лептоспир: Pomona, Tarassovi, Grippothosa, Sejroe, Hebdomadis, Icterohaemorrhagiae, Canicola. Путем периодических пересевов данные культуры в ветеринарных лабораториях поддерживаются в рабочем состоянии.

Результаты исследований. С целью постоянного контроля над эпизоотической ситуацией по лептоспирозу сельскохозяйственных животных проводится ежегодный плановый лабораторный мониторинг по районам республики. В период 2000–2013 гг. ежегодные лабораторные исследования проведены у 30–41 тыс. гол. Увеличение количества исследуемых животных за последние пять лет связано с увеличением закупок и продаж племенного скота в племенных хозяйствах и личных подворьях граждан, а также с ростом поголовья крупного рогатого скота во всех категориях хозяйств (табл.).

Проявление лептоспирозной инфекции за период 2003–2013 гг.

Анализируя приведенные данные по проявлению лептоспироза крупного рогатого скота в районах республики за период 2003–2013гг., следует отметить, что данная инфекционная патология выявлялась в 12 районах из 23 имеющихся в республике, в двух (Закаменский, Кабанский) лептоспироз имел спорадический характер, в последнем районе проявился вспышкой в 2010 г., с охватом большого поголовья реагирующих животных (168 гол). Районы, где проявлялась лептоспирозная инфекция, географически относятся к горнотаежной и лесо-степной зоне, имеют много естественных водоемов и характеризуются большим количеством годовых осадков, т.е. созданы благоприятные условия для развития лептоспир [1]. Заболеваемость крупного рогатого скота в республике за анализируемый период достигла своих «пиковых» значений в 2003– 2006 гг. 3а данный период количество положительно реагирующих животных составляло 311–1476 гол. (1,35–6,09% от числа исследованных). Антигенная структура у реагирующих животных в процентном соотношении составляла: сepoгруппа Poland – 38–41%, Kabura – 41–44, Tarassovi – 9–12, Pomona – 3–12 %. При лептоспирозе в организме серопозитивных животных происходит изменение антигенной структуры серологических групп, т.е. при проведении очередных исследований их соотношение может меняться [2]. Вспышка лептоспирозной инфекции среди крупного рогатого скота в 2001–2004 гг. в республике произошла в Тункин-ском районе, где одномоментно выделялось большое количество положительно реагирующих животных (2001 г. – 1678 гол, 2002 г. – 1487 гол, 2003 г. – 1165 гол., 2004 г. – 745 гол.)

Реагирующие животные регистрировались во всех поселениях. Тункинский район относится к горно-таежной природно-климатической зоне с обилием естественных водоёмов, с обширными торфяными болотами; такие природные условия – идеальная среда для выживаемости лептоспир в природных очагах. Одной из основных причин вспышки лептоспирозной инфекции в районе в указанный период, на наш взгляд, явля- ются обильные осадки в июне-июле 2001 г., вызвавшие во многих местах наводнения и, как результат, активацию природных очагов, приведшую к вспышке инфекции. В истории наблюдений за проявлением лептоспирозной инфекции в республике с момента начала регулярного лабораторного мониторинга (1974 г.) вспышек инфекции такой интенсивности не наблюдалось. Наряду с традиционно встречающимися серогруп-пами (Poland, Kabura, Tarassovi) у крупного рогатого скота при исследованиях выделялась серогруппа Рото-па, свойственная мышевидным грызунам, поддерживающим природную очаговость. Интенсивность выделения серогруппы Pomona была очень высокой (18–27 %), что не было свойственно при других проявлениях данной инфекции. При проведении полевой экспедиции по микробиологическому мониторингу у рыжих полевок и серых «амбарных» мышей в Тункинском районе в 2001 году получен следующий результат: у 16 рыжих полевок и 4 серых мышей выделялись лептоспиры из серогруппы Pomona с высоким индексом патогенности, выделенная культура лептоспир убивала лабораторных белых мышей на 3–5-й день [3]. Ввиду высокой патогенности неблагополучие среди крупного рогатого скота сохранялось на протяжении длительного времени (2001–2005 гг.). В проявлении лептоспирозной инфекции на территории РБ прослеживается определенная цикличность: с 2007 года наблюдается спад инфекции, количество реагирующих животных в период 2007–2013 гг. составило 0,13–0,63 % против 6,5–13,2 % в 2003–2005 гг. Эпизоотическая ситуация по лептоспирозу 2011–2013 гг. близка к состоянию «покоя». Однако единичные проявления лептоспироза в 2013– 2014 гг. требуют аналитического подхода к объяснению создавшейся эпизоотической ситуации в данной группе животных. Оперативное расследование, на наш взгляд, следовало начать с формирования данного гурта (откуда поступали животные для формирования данного стада), проводились ли лабораторные исследования на инфекционные болезни, в том числе на лептоспироз. При исследовании данного гурта в БУ ветеринарии БРНПВЛ (эксп. № 40782-40893 от 19.07.2013 г.) было выявлено 9 положительных проб на лептоспироз с серогруппой Каburа в титре 1/100++++. Животные данного гурта были подвергнуты «стерилизации» стрептомицином, через 10 дней все поголовье вакцинировано противолептоспирозной вакциной второго варианта. При очередном исследовании данного поголовья животных 20.01.2014 года на лептоспироз было выделено положительно реагирующих в количестве 13 гол. С серогруппами Poland, Kabura в титрах 1/100++- 1/200++++ результаты по этим животным являются диагностическими т.е. данное стадо, по результатам серологических исследований, неблагополучно по лептоспирозу; если здесь и присутствуют поствакцинальные титры антител, то их совсем немного – 3–4 пробы. При дальнейшем исследовании данной группы 06.02. 2014 г. количество реагирующих сократилось до 7 голов в титрах 1/200++-1Y200++++ с серогруп-пой Роland, а животные, реагировавшие ранее с серогруппой Kabura, выпали, так как устойчивость последней значительно ниже, чем у Poland. Анализируя создавшую ситуацию, можно сделать вывод: помимо того, что не были выдержаны сроки исследования после вакцинации (исследование через 6 месяцев не является достаточным сроком до полного затухания титров поствакцинальных антител), можно предположить, что в этой группе были передвижения: ввод новых животных в период между исследованиями и, как результат, такие высокие титры при исследовании.

По этой группе животных можно рекомендовать: после удаления 7 реагировавших животных (при последнем исследовании) остальных животных можно передвигать внутри республики с последующим наблюдением за ними в течение 6 месяцев.

Выводы. Проявление лептоспироза у животных чаще регистрируется в природно-климатических зонах с хорошей увлажненностью почвенного покрова, имеющих природные водоисточники (реки, озера, заболоченные ландшафты). Болезнь проявляется в виде вспышек в период после наводнений, когда есть условия для поддержания стационарных природных очагов. Формирование групп животных необходимо производить только из местности, благополучной по данной инфекции. При проведении исследований после вакцинации животных строго выдерживать сроки во избежание получения поствакцинальных титров, вносящих путаницу в определение благополучия стада.