Характеристика стволовых признаков EPCAM-негативных и EPCAM-позитивных опухолевых клеток в первичной опухоли, 2D- и 3D- культурах при раке молочной железы

Характеристика стволовых признаков EPCAM-негативных и EPCAM-позитивных опухолевых клеток в первичной опухоли, 2D- и 3D- культурах при раке молочной железы

Автор: Алифанов В.В., Третьякова М.С., Григорьева Е.С., Булдаков М.А., Таширева Л.А., Колегова Е.С., Андрюхова Е.С., Завьялова М.В., Денисов Е.В., Чердынцева Н.В., Перельмутер В.М.

Журнал: Сибирский онкологический журнал @siboncoj

Рубрика: Лабораторные и экспериментальные исследования

Статья в выпуске: 5 т.23, 2024 года.

Бесплатный доступ

Одним из предикторов неблагоприятного прогноза при раке молочной железы (РМЖ) считается гиперэкспрессия белка EpCAM. Однако значительная доля опухолевых клеток либо слабо экспрессирует, либо вовсе не экспрессирует мембранный EpCAM. Молекулярная характеристика и способность к росту в 2D- и 3D-культурах, косвенно отражающие метастатический потенциал опухолевых клеток без экспрессии EpCAM, исследованы недостаточно. Цель исследования - сравнение фенотипических вариантов стволовых клеток и проявлений эпителиально-мезенхимального перехода (ЭМП) в зависимости от экспрессии EpCAM в первичной опухоли молочной железы и при культивировании в 2D и 3D. материал и методы. В исследование включено 7 пациенток с инвазивной карциномой молочной железы неспецифического типа (люминальный А и люминальный В HER2-негативный подтип). Пациентки не получали неоадъювантной химиотерапии. В первичной опухоли и после 2D- и 3D- культивирования проводилось фенотипирование клеток методом проточной цитофлуориметрии с использованием антител против CD45, EpCAM (CD326), CK7/8, CD44, CD24, N-cadherin (CD325), ALDH и CD133.

Еще

Рак молочной железы, epcam, стволовость, эмп, 2d- и 3d-культуры

Короткий адрес: https://sciup.org/140307923

IDR: 140307923   |   DOI: 10.21294/1814-4861-2024-23-5-59-72

Список литературы Характеристика стволовых признаков EPCAM-негативных и EPCAM-позитивных опухолевых клеток в первичной опухоли, 2D- и 3D- культурах при раке молочной железы

  • Gires O., Pan M., Schinke H., Canis M., Baeuerle P.A. Expression and function of epithelial cell adhesion molecule EpCAM: where are we after 40 years? Cancer Metastasis Rev. 2020; 39(3): 969-87. https://doi.org/10.1007/s10555-020-09898-3.
  • Winter M.J., Cirulli V., Briaire-de Bruijn I.H., Litvinov S.V. Cadherins are regulated by Ep-CAM via phosphaditylinositol-3 kinase. Mol Cell Biochem. 2007; 302(1-2): 19-26. https://doi.org/10.1007/s11010-007- 9420-y.
  • Huang H.P., Chen P.H., Yu C.Y., Chuang C.Y., Stone L., Hsiao W.C., Li C.L., Tsai S.C., Chen K.Y., Chen H.F., Ho H.N., Kuo H.C. Epithelial cell adhesion molecule (EpCAM) complex proteins promote transcription factormediated pluripotency reprogramming. J Biol Chem. 2011; 286(38): 33520-32. https://doi.org/10.1074/jbc.M111.256164.
  • Tran K.A., Pietrzak S.J., Zaidan N.Z., Siahpirani A.F., McCalla S.G., Zhou A.S., Iyer G., Roy S., Sridharan R. Defning reprogramming checkpoints from single-cell analyses of induced pluripotency. Cell Reports. 2019; 27(6): 1726-41. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2019.04.056.
  • Bouchalova P., Bouchal P. Current methods for studying metastatic potential of tumor cells. Cancer Cell Int. 2022; 22(1): 394. https://doi.org/10.1186/s12935-022-02801-w.
  • Barbosa M.A.G., Xavier C.P.R., Pereira R.F., Petrikaitė V., Vasconcelos M.H. 3D Cell Culture Models as Recapitulators of the Tumor Microenvironment for the Screening of Anti-Cancer Drugs. Cancers. 2021; 14(1): 190. https://doi.org/10.3390/cancers14010190.
  • Grosse-Wilde A., Fouquier d’Hérouël A., McIntosh E., Ertaylan G., Skupin A., Kuestner R.E., del Sol A., Walters K.A., Huang S. Stemness of the hybrid Epithelial/Mesenchymal State in Breast Cancer and Its Association with Poor Survival. PLoS One. 2015; 10(5). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0126522.
  • Marcato P., Dean C.A., Pan D., Araslanova R., Gillis M., Joshi M., Helyer L., Pan L., Leidal A., Gujar S., Giacomantonio C.A., Lee P.W.K. Aldehyde dehydrogenase activity of breast cancer stem cells is primarily due to isoform ALDH1A3 and its expression is predictive of metastasis. Stem Cells. 2011; 29(1): 32-45. https://doi.org/10.1002/stem.563.
  • Keller P.J., Lin A.F., Arendt L.M., Klebba I., Jones A.D., Rudnick J.A., DiMeo T.A., Gilmore H., Jefferson D.M., Graham R.A., Naber S.P., Schnitt S., Kuperwasser C. Mapping the cellular and molecular heterogeneity of normal and malignant breast tissues and cultured cell lines. Breast Cancer Res. 2010; 12(5). https://doi.org/10.1186/bcr2755.
  • Lehmann C., Jobs G., Thomas M., Burtscher H., Kubbies M. Established breast cancer stem cell markers do not correlate with in vivo tumorigenicity of tumor-initiating cells. Int J Oncol. 2012; 41(6): 1932-42. https://doi.org/10.3892/ijo.2012.1654.
  • Perel'muter V.M., Grigor'eva E.S., Zav'yalova M.V., Tashireva L.A., Alifanov V.V., Savel'eva O.E., Vtorushin S.V., Choinzonov E.L., Cherdyntseva N.V. Proyavleniya apoptoza v subpopulyatsiyakh tsirkuliruyushchikh opukholevykh kletok s fenotipami, assotsiirovannymi so stvolovost'yu i epitelial'no-mezenkhimal'nym perekhodom, pri kartsinome molochnoi zhelezy. Uspekhi molekulyarnoi onkologii. 2022; 9(4): 96-111. https://doi.org/10.17650/2313-805X-2022-9-4-96-111.
  • Manuel I.J., Beloqui I., Garcia-Garcia F., Leis O., VazquezMartin A., Eguiara A., Cuf S., Pavon A., Menendez J.A., Dopazo J., Martin A.G. Mammosphere formation in breast carcinoma cell lines depends upon expression of E-cadherin. PLoS One. 2013; 8(10). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0077281.
  • Friedland J.C., Lakins J.N., Kazanietz M.G., Chernoff J., Boettiger D., Weaver V.M. α6β4 integrin activates Rac-dependent p21-activated kinase 1 to drive NF-κB-dependent resistance to apoptosis in 3D mammary acini. J Cell Sci. 2007; 120(20): 3700-12. https://doi.org/10.1242/jcs.03484.
  • Strietz J., Stepputtis S.S., Follo M., Bronsert P., Stickeler E., Maurer J. Human Primary Breast Cancer Stem Cells Are Characterized by Epithelial-Mesenchymal Plasticity. Int J Mol Sci. 2021; 22(4): 1808. https://doi.org/10.3390/ijms22041808.
  • Tohyama S., Fujita J., Fujita C., Yamaguchi M., Kanaami S., Ohno R., Sakamoto K., Kodama M., Kurokawa J., Kanazawa H., Seki T., Kishino Y., Okada M., Nakajima K., Tanosaki S., Someya S., Hirano A., Kawaguchi S., Kobayashi E., Fukuda K. Efcient large-scale 2D culture system for human induced pluripotent stem cells and differentiated cardiomyocytes. Stem cell reports. 2017; 9(5): 1406-14. https://doi.org/10.1016/j.stemcr.2017.08.025.
  • Sarrio D., Franklin C.K., Mackay A., Reis-Filho J.S., Isacke C.M. Epithelial and mesenchymal subpopulations within normal basal breast cell lines exhibit distinct stem cell/progenitor properties. Stem Cells. 2012; 30(2): 292-303. https://doi.org/10.1002/stem.791.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp