Иммобилизация клеток нитрилгидролизующих бактерий Rhodococcus erythropolis 4-1 и Alcaligenes faecalis 2 с использованием термотропных и ионотропных гелей
Автор: Мочалова Елена Михайловна, Максимова Юлия Геннадьевна
Журнал: Вестник Пермского университета. Серия: Биология @vestnik-psu-bio
Рубрика: Микробиология
Статья в выпуске: 1, 2020 года.
Бесплатный доступ
Клетки амидазосодержащих бактерий штаммов Rhodococcus erythropolis 4-1 и Alcaligenes faecalis 2 были иммобилизованы с использованием таких носителей, как альгинат бария, агароза, хитозан и к-каррагинан. Цель работы заключалась в изучении влияния методов иммобилизации бактериальных клеток на операционную стабильность биокатализатора. Определено, что наилучшим материалом носителя для стабильной работы биокатализатора является агароза. Наибольшее количество акриловой кислоты было получено при многоцикловой трансформации акриламида иммобилизованными клетками A. faecalis 2.
Амидазная активность, агароза, альгинат бария, хитозан, биокатализатор, биотрансформация, иммобилизация, нитрилгидролизующие бактерии
Короткий адрес: https://sciup.org/147229632
IDR: 147229632 | DOI: 10.17072/1994-9952-2020-1-26-32
Список литературы Иммобилизация клеток нитрилгидролизующих бактерий Rhodococcus erythropolis 4-1 и Alcaligenes faecalis 2 с использованием термотропных и ионотропных гелей
- Дебабов В.Г., Яненко А.С. Биокаталитический гидролиз нитрилов // Обзорный журнал по химии. 2011. Т. 1, № 4. С. 376-394.
- Демаков В.А. и др. Бактерии активного ила биологических очистных сооружений, трансформирующие цианопиридины и амиды пиридинкар-боновых кислот // Микробиология. 2015. Т. 84, № 3. С. 369-378.
- Максимова Ю.Г. и др. Трансформация амидов ад-гезированными клетками родококков, обладающими амидазной активностью // Прикладная биохимия и микробиология. 2015. Т. 51, № 1. С. 53-58.
- Максимов А.Ю., Максимова Ю.Г., Демаков В.А. Гидролиз акрилонитрила клетками нитрилути-лизирующих бактерий Rhodococcus ruber gt1 и Pseudomonas fluorescens C2, иммобилизованными в структуре геля агарозы // Вестник Пермского ун-та. 2009. Вып. 10(36) Биология. С. 115-118.
- Махсумханов А.А. и др. Скрининг коллекционных штаммов бактерий по нитрилгидратазной активности // Биотехнология: состояние и перспективы развития. 2015. С. 375-377.
- Павлова Ю.А., Неустроева А.Н., Максимов А.Ю. Сравнительный анализ последовательностей генов амидаз почвенных актинобактерий рода Rhodococcus // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. 2011. Т. 13, № 5(3). С. 272-276.
- Полтавская С.В. и др. Разработка и внедрение биокаталитического способа получения акриловой кислоты. I. Выделение штамма Alcaligenes denitrificans, трансформирующего акрилонит-рил в акрилат аммония. Оптимизация среды культивирования // Биотехнология. 2004. № 1. С. 62-70.
- Сазыкина М.А., Мирина Е.А., Сазыкин И.С. Использование биосенсоров для детекции антропогенного загрязнения природных вод // Вода: Химия и Экология. 2015. № 10. С. 64-74.
- Chand D. et al. Treatment of simulated wastewater containing toxic amides by immobilized Rhodococcus rhodochrous NHB-2 using a highly compact 5-stage plug flow reactor // World J. Microbiol. Biotechnol. 2004. Vol. 20. P. 679-686.
- Duda-Chodak A. et al. A review of the interactions between acrylamide, microorganisms and food components // Food Funct. 2016. Vol. 7(3). P. 1282-1295.
- E§ I., Vieira J.D.G., Amaral A.C. Principles, techniques, and applications of biocatalyst immobilization for industrial application // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2015. Vol. 99(5). P. 2065-2082.
- Fleming D.L. Evaluating bacterial cell immobilization matrices for use in a biosensor. 2004.
- Kamal A. et al. Bioconversion of acrylonitrile to acrylic acid from Rhodococcus ruber AKSH-84 // J. Microbiol. Biotechnol. 2011. Vol. 21(1). P. 37-42.
- Michelini E., Roda A. Staying alive: new perspectives on cell immobilization for biosensing purposes // Anal. Bioanal. Chem. 2012. Vol. 402(5). P. 1785-1797.
- Sharma M., Sharma N.N., Bhalla T.C. Amidases: versatile enzymes in nature // Reviews in Environmental Science and Bio/Technology. 2009. Vol. 8. P. 343-366.
- Sjahrir F. et al. Biotransformation of acrylonitrile using immobilized cells of Rhodococcus UKMP-5M as biocatalyst // Indian Journal of Fundamental and Applied Life Sciences. 2016. Vol. 6(1). P. 58-67.
- Silva N. et al. Biosensor for acrylamide based on an ion-selective electrode using whole cells of Pseudomonas aeruginosa containing amidase activity // Biocatalysis and Biotransformation. 2009. Vol. 27(2). P. 143-151.
- Tepe Y. Acrylamide in surface and drinking water // Acrylamide in Food. 2016. P. 275-293.
- Wang Y.S. et al. Enantioselective hydrolysis of (R)-2,2-dimethylcyclopropane carboxamide by immobilized cells of an R-amidase-producing bacterium, Delftia tsuruhatensis CCTCC M 205114, on an alginate capsule carrier // J. Ind. Microbiol. Bi-otechnol. 2010. Vol. 37. P. 503-510.
