Индукция ионами ртути (II) микроядер в эритроцитах личинок зелёной жабы

Автор: Крюков В.И., Жучков С.А., Лазарева Т.Н., Киреева О.С., Поповичева Н.Н.

Журнал: Биология в сельском хозяйстве @biology-in-agriculture

Статья в выпуске: 2 (35), 2022 года.

Бесплатный доступ

Изучены частоты микроядер (МЯ) и ядерных аномалий (ЯА) в эритроцитах личинок жабы Bufo viridis после 6-, 12-, 18- и 24-часового пребывания в воде содержащей ионы ртути (II) в концентрациях 5, 10, 20, 50, 100 и 150 мкг/л. При концентрациях ртути 5-50 мкг/л 6-часовая экспозиция вела к статистически недостоверному повышению частот МЯ и ЯА. Увеличение концентрации до 100 и 150 мкг/л вызывало статистически достоверное увеличение частоты МЯ и ЯА. Воздействие ионов ртути в течение 12, 18 и 24 часов вызывало статистически достоверное увеличение частот МЯ и ЯА при всех исследованных концентрациях. Рассмотрены возможные причины аномалий и дан краткий обзор исследований мутагенности ртути.

Еще

Ртуть, нитрат ртути, мутагенность, амфибии, bufo, микроядра, ядерные аномалии

Короткий адрес: https://sciup.org/147238695

IDR: 147238695

Список литературы Индукция ионами ртути (II) микроядер в эритроцитах личинок зелёной жабы

Дабагян Н.В., Слепцова Л.А. Травяная лягушка Rana temporaria L. //Объекты биологии развития. -М.: Наука, 1975. -С. 442-462.
Крюков В.И. Вариант методики учёта ядерных аномалий в эритроцитах птиц. // Вестник аграрной науки, 2020, № 1. -С.81-100.
Жулева Л.Ю., Дубинин Н.П. Использование микроядерного теста для оценки экологической обстановки в районах Астраханской области //Генетика. -1994. Т. 30, № 7. -С. 999-1004.
Урбах В.Ю. Статистический анализ в биологических и медицинских исследованиях. -М.: Медицина, 1975. -295 с.
Helmi S. et al. Genotoxity of inorganic mercury. / Helmi S., El-Seehi M., El-Ziat H. // Environ. and mol. mutagenes. 1989. V. 14. Suppl. -P. 87.
Christakis C.F. et al. Expanded diversity and phylogeny of mer genes broadens mercury resistance paradigms and reveals an origin for MerA among thermophilic Archaea. / Christos A. Christakis, Tamar Barkay, Eric S. Boyd. // Front Microbiol. 2021. V.12 № 682605.
Реутова Н.В. Мутагенный потенциал ряда тяжёлых металлов //Экологическая генетика. 2015. Т. 13. № 3. - С. 70-75
Nandi S. Studies on the cytogenetic effect of some mercuric fungicides //Cytologia. 1985. V. 50. № 4. -P. 921-926.
Azevedo R. et al. Inorganic Hg toxicity in plants: A comparison of different genotoxic parameters. / Raquel Azevedo, Eleazar Rodriguez, Rafael José Mendes et al. // Plant Physiol. Biochem. 2018. V. 125. -P. 247-254.
Krishnaja A.P., Rege M.S. Induction of chromosomal aberrations in fish Boleophthalmus dussumieri after exposure in vivo to mitomycin C and heavy metals mercury, selenium and chromium. // Mutat. Res. 1982. V. 102. № 1. -P. 71-82.
Al-Sabti K. An in vitro binucleated blocked hepatic cell technique for genotoxicity testing in fish //Mutat. Res. Environ. Mutatgenes and Related Subj. 1995. -V. 335, № 2. -P. 109-120.
Cava§ T. In vivo genotoxicity of mercury chloride and lead acetate: Micronucleus test on acridine orange stained fish cells. // Food and Chemical Toxicology. 2008. V. 46. № 1. -P. 352-358.
Rocha C.A.M. et al. The micronucleus assay in fish species as an important tool for xenobiotic exposure risk assessment - a brief review and an example using neotropical fish exposed to methylmercury / Carlos Alberto Machado da Rocha, Raquel Alves dos Santos, Marcelo de Oliveira Bahia et al. // Reviews in Fisheries Science. 2009. V. 17. № 4. -P 478-484. .
Rocha C.A.M. et al. Studies of micronuclei and other nuclear abnormalities in red blood cells of Colossoma macropomum exposed to methylmer-cury. / Rocha, C.A.M. da, Cunha, L.A. da, Pinheiro, R.H. da S. et al. // Genetics and Molecular Biology. 2011 V. 34. № 4. -P. 694-697. .
Rocha C et al. Comet Assay and Micronucleus Test in Circulating Erythrocytes ofAequidens tetramer-us Exposed to Methylmercury / Carlos Rocha, Bruno Cavalcanti, Claudia Ó. Pessoa et al. // In Vivo. November 2011, 25 (6) 929-933.
Rodríguez A.P.C. et al. Chronic effects of methylmercury on Astronotus ocellatus, an Amazonian fish species. / Rodríguez, A.P.C., Maciel, P. Silva, L.C.P. et al. // Journal of Aquatic Pollution and Toxicology. 1917. V. 1. № 2 -P. 1-14.
Nirchio M. et al. Genotoxic effects of mercury chloride on the Neotropical fish Andinoacara rivula-tus (Cichlidae: Cichlasomatini). / Nirchio M., Choco-Veintimilla O., Quizhpe-Cordero P.F. et al. // Revista de Biología Tropical, 2019. V. 67. № 4. -P. 745-754.
Maktoof A.A. et al. Study the impact of the concentration of mercury chloride on micronuclei formation and some organs of juveniles of Ctenopharyngodon idella. / Afrah Abed Maktoof, Rasha Salih Nuhair, Awatif Mokar Al-Saaedi et al. // Indian Journal of Forensic Medicine & Toxicology. 2020. V. 14. № 3. -P. 2690-2695
Zoll C. et al. Genotoxicity and bioaccumulation of methyl mercury and mercuric chloride in vivo in the newt Pleurodeles waltl. / C. Zoll, E. Saouter, A. Boudou et al. // Mutagenesis. 1988. V. 3. № 4. -P. 337-343.
Marrugo-Negrete J. et al. Mercury levels and genotoxic effect in caimans from tropical ecosystems impacted by gold mining. / Marrugo-Negrete José, Durango Hernández José, Calao Ramos Clelia et al // Science of The Total Environment. 2019. V. 664.
Oberly T.J., Piper C.E. Mutagenicity of metal salts in the L5178Y mouse lymhpoma assay //Environ. Mutagenes. 1980. V. 2, № 2. -P. 281.
Howard W. et al. 1991. Induction of chromosome changes by metal compounds in cultured CHO cells / Howard W., Leonard B., Moody W. // Toxicol. Lett. 1991. V. 56, № 1-2. -P. 179-186.
Betti C. et al. Genotoxic effects induced by mercuric compounds in human lymphocytes. / Betti C., Dav-ini T., Barale R. // Mutat. Res. Rev. Genet. Toxicol. 1992. V. 271. № 2. -P.165-166.
Kochhar T.S. et al. Influence of organomercurials on the induction chromosome aberrations in CHO cells. / Kochhar T.S., Wilson A., Andersen A. // Environ. and Mol. Mutagenes. 1994. V. 23. -P. 33.
Schurz F et al. Mutagenicity of mercury chloride and mechanisms of cellular defence: the role of metal-binding proteins. / F Schurz, M Sabater-Vilar, J Fink-Gremmels // Mutagenesis. 2000. V. 15, № 6. -P. 525-530.
Aragao W.A.B.A. et al. DNA Damage and Proteomic Profile Changes in Rat Salivary Glands After Chronic Exposure to Inorganic Mercury. / Walessa Alana Braganga Aragao, Leonardo Oliveira Bittencourt, Leidiane Alencar de Oliveira Lima et al. // Biol. Trace. Elem. Res. 2022. DOI: 10.1007/s12011-021-02986-7.
Бошнакова Е. Влияние на живачния двухлорид и на мангановия двухлорид въерху доминантните летални мутации у лабораторни животни //Генет. и селек. (Болгария). 1989а. Т. 22. № 1. -С. 7175.
Бошнакова Е. Микронуклеус-тест при лабораторни животни, въздействувани с живачен двухло-рид и манганов двухлорид //Генет. и селек. (Болгария). 19896. Т. 22. № 3. -С. 253-258.
Васильева И.М. и др. Определение мутагенного потенциала одного из загрязнителей окружающей среды - хлорида ртути. / Васильева И.М., Сдиркова Н.И., Засухина Г.Д. // Цитология и генетика. 1982. Т. 16, № 2. -С. 21-24.
Zasukhina G.D. et al. Mutagenic effect of thallium and mercury salts on rodent cells with different repair activities. / Zasukhina G.D., Vasilyeva I.M., Sdirkova N.I. //Mutat. Res. 1983. V. 124, № 2. -P. 163-173.
Verschaeve I., Leonard A. Dominant lethal test in female mice treated with methyl mercury chloride //Mutat. Res. 1984. V. 136, № 2. -P. 131-136.
Monsalve M.V., Chiappe C. Genetic effects of methylmercury in human chromosomes. I. A cytogenetic study of people exposed through eating contaminated fish // Environ and Mol. Meta-genes. 1987. V.10, № 4. -P. 367-376.
Loprieno G. et al. Cytogenetic monitoring of fishermen exposed to mercury through fish consumption. / Loprieno G., Franchi E., Petrozzi L. // Mutat. Res. Rev. Genet. Toxicol. 1992. V. 271, № 2. -P.192-193.
Kocadal K. et al. Cellular pathologies and genotoxic effects arising secondary to heavy metal exposure: A review. / K. Kocadal, F.B. Alkas, D. Battal, S. Saygi. // Human and Experimental Toxicology. 2020. V. 39. № 1. -P. 3-13.
Sanchez-Alarcon J. et al. Genotoxicity of mercury and its derivatives demonstrated in vitro and in vivo in human populations studies. Systematic review. / Juana Sanchez-Alarcon, Mirta Milic, Lilia Patricia Bustamante-Montes et al. // Toxics. 2021. V. 9. № 12. -P. 326.
Basu N. et al. Effects of methylmercury on epigenetic markers in three model species: Mink, chicken and yellow perch. / Niladri Basu, Jessica Head, Dong-Ha Nam et al. // Comparative Biochemistry and Physiology. Part C: Toxicology & Pharmacology. 2013. V. 157. № 3. -P. 322-327.
Basu N. et al. Ecogenetics of mercury: from genetic polymorphisms and epigenetics to risk assessment and decision-making. / Niladri Basu, Jaclyn M. Goodrich, Jessica Head // Environmental Toxicology and Chemistry. 2014. V. 33. -P. 1248-1258.

Еще

Статья научная