Использование современных ростостимулирующих экопрепаратов при микроклональном размножении брусники обыкновенной (Vaccinium vitis-idaea L.)
Автор: Чудецкий А.И., Заушинцена А.В., Родин С.А., Кузнецова И.Б., Клевцов Д.Н.
Журнал: Лесохозяйственная информация @forestry-information
Рубрика: Охрана и защита лесов
Статья в выпуске: 2, 2022 года.
Бесплатный доступ
Приведены результаты исследований по культивированию in vitro брусники обыкновенной (Vaccinium vitis-idaea L.) сортов Костромская розовая, Костромичка и Koralle с использованием питательной среды Андерсона (AN), в том числе в вариантах с разбавленным в 2 и 4 раза минеральным составом. В качестве росторегулирующих веществ использовали цитокинин 2-iP в концентрациях 1,0 и 2,0 мг/л, ауксины ИМК и ИУК в концентрациях 1,0 и 2,0 мг/л; в качестве стимуляторов роста - растворы препаратов Циркон в концентрации 0,5 мл/л и HB-101 в концентрации 0,1 мл/л. В результате исследований получены следующие данные. На этапе «собственно микроразмножение» максимальная суммарная длина побегов брусники обыкновенной (8,1-8,4 см) отмечена на питательной среде AN при концентрации цитокинина 2-iP 0,2 мг/л и добавлении стимулятора роста HB-101 0,1 мл/л. На этапе «укоренение микропобегов» максимальная суммарная длина корней брусники обыкновенной in vitro (9,6-10,8 см) зафиксирована при концентрации в питательной среде ауксина ИУК 2,0 мг/л и добавки препарата HB-101 в концентрации 0,1 мл/л. Добавление в питательную среду стимулятора роста HB-101 в концентрации 0,1 мл/л способствовало увеличению (в 1,4-1,6 раза) суммарной длины микропобегов и корней брусники.
Брусника обыкновенная, лесные ягодные растения, микроклональное размножение, in vitro, органогенез, ризогенез, ростостимулирующие вещества
Короткий адрес: https://sciup.org/143178760
IDR: 143178760 | DOI: 10.24419/LHI.2304-3083.2022.2.05
Текст научной статьи Использование современных ростостимулирующих экопрепаратов при микроклональном размножении брусники обыкновенной (Vaccinium vitis-idaea L.)
В о всем мире возрастает спрос на продукцию лесных ягодных растений, обладающих высокой пищевой и лекарственной ценностью. Однако в связи с повышением антропогенной нагрузки на экосистемы и ухудшением экологической обстановки в мире в настоящее время наблюдается тенденция интенсивного сокращения естественных запасов ягодников. Выращивание и переработка хозяйственно ценных лесных ягодных растений приобретают еще большую актуальность при организации многоцелевого, рационального и неистощительного использования лесов [1].
На торфяных залежах верхового и переходного типов до их разработки нередко произрастают дикорастущие ягодники, ценные в пищевом и лекарственном отношении (брусника, клюква, голубика и др.) [2–4]. Для центральной зоны европейской части России (преимущественно в Нечерноземье) решение проблемы рекультивации земель, вышедших из-под торфодобычи, и дальнейшего их использования имеет важное природоохранное и народнохозяйственное значение. В России, а также в странах ближнего и дальнего зарубежья имеется опыт создания плантаций хозяйственно ценных лесных ягодных растений на выработанных торфяниках, который, помимо целей рекультивации, в значительной мере будет способствовать восстановлению запасов ягодников [5, 6].
C 1980-х гг. сотрудники Костромской лесной опытной станции ВНИИЛМ проводили исследования по культивированию брусники на выработанных торфяных месторождениях, доказавшие перспективность работ в данном направлении. Однако большинство сортов брусники зарубежной селекции по ряду важнейших признаков не подходит для выращивания в условиях таежной зоны европейской части России. В связи с этим возникла необходимость создания высокопродуктивных гибридов и сортов брусники, соответствующих природно-климатическим условиям региона, в которых их выращивают. По итогам многолетней работы в 1990-е гг. были выведены три первых российских сорта брусники обыкновенной ( Vaccinium vitis-idaea L.) – Костромская розовая, Костромичка и Рубин [6, 7].
Для получения большого количества вы-сокачественного и оздоровленного сортового посадочного материала лесных ягодных растений при создании плантаций в короткие сроки целесообразно использовать метод микрокло-нального размножения [8–10]. Выращиванием брусники в культуре in vitro в течение нескольких десятилетий занимались многие ученые в мире, в том числе на территории России и стран СНГ. Однако в настоящее время технологии микроклонирования зимостойких и крупноплодных российских сортов, адаптированных к условиям выращивания, нуждаются в совершенствовании. При этом для экономии затрат на компоненты минеральной основы питательной среды, регуляторы роста, адаптогены и т.д., ввиду их высокой себестоимости, и с целью повышения эффективности размножения целесообразно применять ростостимулирующие препараты универсального назначения. Сейчас разработан ряд современных экопрепаратов, эффективно выполняющих свои функции на разных этапах микроклонального размножения.
Цель исследований – изучить влияние состава питательной среды Андерсона и современных экопрепаратов на процессы образования микропобегов и корней брусники обыкновенной in vitro .
Объекты и методика исследований
Исследования по микроклональному размножению растений проводили в 2019–2021 гг. на базе Центрально-европейской лесной опытной станции ВНИИЛМ по общепринятым методикам [10]. В качестве объектов исследования использовали растения-регенеранты брусники обыкновенной сортов российской (Костромская розовая, Костромичка) и зарубежной (Koralle) селекции. Растения-регенеранты брусники культивировали на питательной среде Андерсона (AN) [11], в том числе в вариантах с уменьшенным в 2 (AN 1/2) и 4 (AN 1/4) раза содержанием микро-и макросолей, в условиях световой комнаты при фотопериоде 16 ч света и 8 ч темноты, температуре 23…25 °C, влажности 75–80 %.
В качестве росторегулирующих веществ на этапе «собственно микроразмножение» использовали 2-изопенталаденин (2-iP) в концентрациях 1,0 и 2,0 мг/л, на этапе укоренения микропобегов – индолилмасляную (ИМК) и ин-долилуксусную (ИУК) кислоты в концентрациях 1,0 и 2,0 мл/л. На обоих этапах микроклональ-ного размножения добавляли ростостимулирующие экопрепараты – Циркон в концентрации 0,5 мл/л и HB-101 в концентрации 0,1 мл/л.
Циркон (действующее вещество – смесь ги-дроксикоричных кислот) – многофункциональный экологически безопасный биостимулятор негормонального происхождения (из экстракта эхинацеи пурпурной), регулирующий и ускоряющий процессы цветения, роста, корнеобразо-вания и плодоношения растений. Использование препарата способствует более быстрому созреванию плодов, повышению их сохранности, количества, урожайности (примерно на 50 %) [12].
HB-101 – разработанный в Японии экологически чистый, нетоксичный стимулятор роста и активатор иммунной системы для культивирования всех видов растений на основе экстракта из хвои гималайского кедра, кипариса, сосны, коры платана и листьев подорожника. Препарат также является многокомпонентным микроудобрением и регулятором физиологических процессов в тканях растений, не нуждается в специальных условиях хранения и имеет неограниченный срок годности. Препарат способствует улучшению цвета и формы листьев и плодов, повышению их питательной ценности, вкусовых качеств и содержания сахаров и витамина C, а также значительному увеличению урожайности и сохранности урожая [13].
В качестве контрольного использовали вариант без добавления ростостимулирующих препаратов. Повторность опыта – 10-кратная, по 30 растений в каждой.
Для статистической обработки экспериментальных данных использовали программы Microsoft Office Excel 2016 и AGROS v.2.11. Оценку достоверности результатов проводили с помощью наименьшей существенной разности на 5 %-м уровне значимости (НСР05) [14].
Применяли трехфакторный дисперсионный анализ, где: фактор A – состав питательной среды; фактор B – концентрация росторегулирующего вещества (цитокинина или ауксина); C – добавление экопрепарата.
Результаты и обсуждение
В ходе проведенных исследований выявлено, что на этапе «собственно микроразмножение» количество микропобегов у растений-регенерантов брусники обыкновенной на питательной среде AN было незначительно больше, чем на средах AN 1/2 и AN 1/4, и варьировало у исследуемых сортов при концентрации 2-iP 2,0 мг/л от 3,3 до 3,9 шт., при концентрации 1,0 мг/л – от 2,2 до 2,6 шт. (табл. 1). Повышение концентрации цитокинина 2-iP от 1,0 до 2,0 мг/л на питательной среде AN способствовало существенному увеличению количества микропобегов только у сортов Костромичка (в среднем от 2,6 до 3,8 шт.) и Koralle (от 2,2 до 3,9 шт.). У растений-регенерантов сорта Костромская розовая на всех питательных средах различия по этому показателю были статистически незначимы.
Количество микропобегов у исследуемых сортов брусники обыкновенной в вариантах с добавлением в питательные среды препаратов HB-101 в концентрации 0,1 мл/л и Циркон в концентрации 0,5 мл/л было незначительно больше, чем в контроле, и составляло в среднем 3,0–3,3 шт. и 2,7–2,9 шт. соответственно.
Средняя длина микропобегов брусники обыкновенной in vitro не имела статистически значимых различий в зависимости от состава питательной среды и концентрации цитокинина 2-iP (в среднем – от 1,2 до 2,7 см), а также от добавления в питательную среду стимуляторов роста: в контрольном варианте показатель составлял в среднем 1,4–1,7 см; при добавлении Циркона 0,5 мл/л – 1,6–2,0 см; при добавлении HB-101 0,1 мл/л – 1,7–2,1 см.
Суммарная длина микропобегов брусники обыкновенной in vitro была значительно больше в вариантах с питательной средой AN и варьировала у исследуемых сортов в среднем
Таблица 1. Количество микропобегов брусники обыкновенной in vitro в зависимости от питательной среды, концентрации цитокинина 2-iP и добавления стимуляторов роста
|
Питательная среда |
Концентрация 2-iP, |
Количество |
побегов, шт. |
||
|
мг/л |
Контроль |
Циркон 0,5 мл/л |
HB-101 0,1 мл/л |
Среднее |
|
|
Костромская розовая |
|||||
|
AN |
1,0 |
2,3 |
2,5 |
2,8 |
2,5 |
|
2,0 |
3,0 |
3,3 |
3,5 |
3,3 |
|
|
AN 1/2 |
1,0 |
2,0 |
2,6 |
3,2 |
2,6 |
|
2,0 |
2,9 |
3,0 |
3,6 |
3,2 |
|
|
AN 1/4 |
1,0 |
1,7 |
2,2 |
3,0 |
2,3 |
|
2,0 |
2,1 |
2,5 |
2,9 |
2,5 |
|
|
Среднее |
2,3 |
2,7 |
3,2 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,67, фактор В = 1,08, фактор С = 1,02, общ. = 1,98 |
|||||
|
Костромичка |
|||||
|
AN |
1,0 |
2,5 |
2,6 |
2,6 |
2,6 |
|
2,0 |
3,4 |
3,8 |
4,1 |
3,8 |
|
|
AN 1/2 |
1,0 |
2,1 |
2,5 |
3,0 |
2,5 |
|
2,0 |
3,1 |
3,4 |
3,8 |
3,4 |
|
|
AN 1/4 |
1,0 |
1,8 |
2,3 |
2,9 |
2,3 |
|
2,0 |
2,3 |
2,9 |
3,2 |
2,8 |
|
|
Среднее |
2,5 |
2,9 |
3,3 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,86, фактор В = 1,15, фактор С = 1,79, общ. = 1,90 |
|||||
Koralle
При одинаковых концентрациях цитокинина 2-iP в питательных средах существенных различий по суммарной длине микропобегов брусники не выявлено (рисунок).
Добавление в питательные среды стимулятора роста HB-101 в концентрации 0,1 мл/л способствовало существенному увеличению (в 1,4–1,6 раза) суммарной длины микропобегов брусники по сравнению с контрольным вариантом. Наибольших значений (8,1–8,4 см) этот показатель достигал на питательной среде AN при концентрации цитокинина 2-iP 2,0 мг/л и добавлении стимулятора роста HB-101 0,1 мл/л.
На этапе «укоренение микропобегов» исследования продолжали на среде AN. При этом максимальное количество корней брусники обыкновенной in vitro отмечалось в вариантах с ауксином ИУК в концентрации 2,0 мг/л и варьировало у исследуемых сортов от 1,9 до 2,7 шт., в то время как при концентрации 1,0 мг/л – от 1,1 до 1,6 шт. (табл. 3).
Таблица 2. Суммарная длина микропобегов брусники обыкновенной in vitro в зависимости от питательной среды, концентрации цитокинина 2-iP и добавления стимуляторов роста
|
Питательная среда |
Концентрация 2-iP, |
Суммарная длина побегов, см |
|||
|
мг/л |
Контроль |
Циркон 0,5 мл/л |
HB-101 0,1 мл/л |
Среднее |
|
|
Костромская розовая |
|||||
|
AN |
1,0 |
5,1 |
7,0 |
8,4 |
6,8 |
|
2,0 |
6,0 |
7,3 |
8,4 |
7,2 |
|
|
AN 1/2 |
1,0 |
4,2 |
6,0 |
8,0 |
6,1 |
|
2,0 |
4,7 |
4,8 |
6,1 |
5,2 |
|
|
AN 1/4 |
1,0 |
3,1 |
3,5 |
4,5 |
3,7 |
|
2,0 |
2,5 |
3,5 |
4,9 |
3,6 |
|
|
Среднее |
4,3 |
5,3 |
6,7 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,47, фактор В = 2,10, фактор С = 1,89, общ. = 3,22 |
|||||
|
Костромичка |
|||||
|
AN |
1,0 |
5,8 |
6,5 |
7,3 |
6,5 |
|
2,0 |
6,8 |
7,2 |
8,2 |
7,4 |
|
|
AN 1/2 |
1,0 |
4,2 |
5,5 |
7,8 |
5,8 |
|
2,0 |
4,7 |
5,8 |
6,8 |
5,8 |
|
|
AN 1/4 |
1,0 |
2,7 |
3,2 |
4,3 |
3,4 |
|
2,0 |
3,0 |
4,1 |
4,5 |
3,9 |
|
|
Среднее |
4,5 |
5,4 |
6,5 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,32, фактор В = 1,96, фактор С = 1,74, общ. = 3,12 |
|||||
Koralle
|
AN |
1,0 |
4,4 |
5,5 |
5,4 |
5,1 |
|
2,0 |
5,4 |
7,0 |
8,1 |
6,8 |
|
|
AN 1/2 |
1,0 |
2,7 |
3,2 |
3,1 |
3,0 |
|
2,0 |
3,6 |
4,6 |
5,8 |
4,6 |
|
|
AN 1/4 |
1,0 |
1,8 |
3,3 |
4,1 |
3,1 |
|
2,0 |
1,9 |
2,9 |
3,6 |
2,8 |
|
|
Среднее |
3,3 |
4,4 |
5,0 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,10, фактор В = 1,87, фактор С =1,69, общ. = 2,96 |
|||||
При добавлении в питательную среду AN стимуляторов роста количество корней брусники обыкновенной незначительно увеличилось по сравнению с контролем и составило у исследуемых сортов в среднем: в вариантах с препаратом Циркон 0,5 мл/л – 1,6–1,7 шт., с препаратом HB-101 0,1 мл/л – 1,8–1,9 шт.
Средняя длина корней брусники обыкновенной in vitro была существенно больше при использовании ауксина ИУК в концентрации 2,0 мг/л и составляла в среднем у сортов: Костромская розовая – 3,4 см, Костромичка – 3,2 см, Koralle – 2,8 см.
В вариантах с добавлением в питательную среду AN стимуляторов роста средняя длина корней незначительно превышала контроль (табл. 4).
Суммарная длина корней брусники обыкновенной in vitro была существенно больше в вариантах с ауксином ИУК в концентрации 2,0 мг/л и достигала в среднем у сортов: Костромская розовая – 8,3 см, Костромичка – 8,2 см, Koralle – 7,6 см (табл. 5).
Наличие в питательной среде AN препарата HB-101 в концентрации 0,1 мл/л способствовало существенному увеличению суммарной длины
Растения-регенеранты брусники обыкновенной in vitro с добавлением 2-iP в концентрациях 1,0 мг/л ( 1 ) и 2,0 мг/л ( 2 ) на питательных средах:
а – AN; б – AN 1/2; в – AN 1/4
Таблица 3. Количество корней брусники обыкновенной in vitro на питательной среде AN в зависимости концентрации ауксинов и добавления стимуляторов роста
|
Ауксин |
Концентрация |
Количество корней, шт. |
|||
|
ауксина, мг/л |
Контроль |
Циркон 0,5 мл/л |
HB-101 0,1 мл/л |
Среднее |
|
Костромская розовая
|
ИМК |
1,0 |
1,3 |
1,6 |
1,8 |
1,6 |
|
2,0 |
1,1 |
1,4 |
1,4 |
1,3 |
|
|
ИУК |
1,0 |
1,0 |
1,2 |
1,3 |
1,2 |
|
2,0 |
2,0 |
2,4 |
2,7 |
2,4 |
|
|
Среднее |
1,3 |
1,6 |
1,8 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,32, фактор В = 1,18, фактор С = 1,24, общ. = 1,85 |
|||||
Костромичка
|
ИМК |
1,0 |
1,2 |
1,4 |
1,3 |
1,3 |
|
2,0 |
1,3 |
1,5 |
1,4 |
1,4 |
|
|
ИУК |
1,0 |
1,2 |
1,5 |
1,7 |
1,1 |
|
2,0 |
2,3 |
2,5 |
2,8 |
1,9 |
|
|
Среднее |
1,5 |
1,7 |
1,8 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,40, фактор В = 1,21, фактор С = 1,17, общ. = 1,39 |
|||||
Koralle
|
ИМК |
1,0 |
1,3 |
1,4 |
1,5 |
1,4 |
|
2,0 |
1,5 |
1,3 |
1,2 |
1,3 |
|
|
ИУК |
1,0 |
1,4 |
1,6 |
1,7 |
1,6 |
|
2,0 |
2,4 |
2,6 |
3,0 |
2,7 |
|
|
Среднее |
1,6 |
1,7 |
1,9 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,62, фактор В = 1,34, фактор С = 1,27, общ. = 1,72 |
|||||
Таблица 4. Средняя длина корней брусники обыкновенной in vitro на питательной среде AN в зависимости концентрации ауксинов и добавления стимуляторов роста
|
Ауксин |
Концентрация |
Средняя длина корней, см |
|||
|
ауксина, мг/л |
Контроль |
Циркон 0,5 мл/л |
HB-101 0,1 мл/л |
Среднее |
|
Костромская розовая
|
ИМК |
1,0 |
1,0 |
1,1 |
0,8 |
1,0 |
|
2,0 |
1,5 |
1,4 |
1,5 |
1,5 |
|
|
ИУК |
1,0 |
1,4 |
1,6 |
1,5 |
1,5 |
|
2,0 |
2,8 |
3,5 |
4,0 |
3,4 |
|
|
Среднее |
1,7 |
1,9 |
2,0 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,72, фактор В = 1,54, фактор С = 1,60, общ. = 1,80 |
|||||
Костромичка
|
ИМК |
1,0 |
1,1 |
1,3 |
1,2 |
1,2 |
|
2,0 |
1,7 |
1,8 |
1,6 |
1,7 |
|
|
ИУК |
1,0 |
1,3 |
1,5 |
1,7 |
1,5 |
|
2,0 |
2,5 |
3,3 |
3,8 |
3,2 |
|
|
Среднее |
1,6 |
2,0 |
2,1 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,81 фактор В = 1,52, фактор С = 1,64, общ. = 1,94 |
|||||
Koralle
|
ИМК |
1,0 |
1,0 |
1,2 |
1,4 |
1,2 |
|
2,0 |
1,5 |
1,3 |
1,6 |
1,5 |
|
|
ИУК |
1,0 |
1,2 |
1,4 |
1,5 |
1,4 |
|
2,0 |
2,4 |
2,9 |
3,2 |
2,8 |
|
|
Среднее |
1,5 |
1,7 |
1,9 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,69, фактор В = 1,45, фактор С = 1,34, общ. = 1,79 |
|||||
Таблица 5. Суммарная длина корней брусники обыкновенной in vitro на питательной среде AN в зависимости концентрации ауксинов и добавления стимуляторов роста
|
Ауксин |
Концентрация |
Суммарная длина корней, см |
|||
|
ауксина, мг/л |
Контроль |
Циркон 0,5 мл/л |
HB-101 0,1 мл/л |
Среднее |
|
Костромская розовая
|
ИМК |
1,0 |
1,3 |
1,8 |
1,4 |
1,5 |
|
2,0 |
1,7 |
2,0 |
2,1 |
1,9 |
|
|
ИУК |
1,0 |
1,4 |
1,9 |
1,9 |
1,7 |
|
2,0 |
5,7 |
8,4 |
10,8 |
8,3 |
|
|
Среднее |
2,5 |
3,5 |
4,1 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,74, фактор В = 1,33, фактор С = 1,10, общ. = 2,96 |
|||||
Костромичка
|
ИМК |
1,0 |
1,4 |
1,8 |
1,6 |
1,6 |
|
2,0 |
2,3 |
2,7 |
2,2 |
2,4 |
|
|
ИУК |
1,0 |
1,6 |
2,3 |
2,9 |
2,3 |
|
2,0 |
5,8 |
8,2 |
10,6 |
8,2 |
|
|
Среднее |
2,8 |
3,7 |
4,3 |
- |
|
|
НСР05 фактор А = 1,61, фактор В = 1,28, фактор С = 1,03, общ. = 2,92 |
|||||
Окончание табл. 5
|
Ауксин |
Концентрация |
Суммарная длина корней, см |
|||
|
ауксина, мг/л |
Контроль |
Циркон 0,5 мл/л |
HB-101 0,1 мл/л |
Среднее |
|
Koralle
Можно предположить, что увеличение количества и длины микропобегов и корней брусники обыкновенной in vitro обусловлено тем, что действующие вещества, входящие в состав препаратов Циркон и HB-101, усиливают действие цитокининов и ауксинов на разных этапах микроклональ-ного размножения. Таким образом, совместное применение этих препаратов с росторегулирующими веществами цитокининовой и ауксиновой групп является элементом совершенствования технологии микроклонирования брусники.
Выводы
В результате исследований установлено, что на этапе «собственно микроразмножение»
в вариантах с питательной средой AN суммарная длина микропобегов брусники обыкновенной in vitro была больше, чем в вариантах с AN 1/2 и AN 1/4. Зафиксировано положительное влияние стимулятора роста HB-101 в концентрации 0,1 мл/л на суммарную длину микропобегов брусники обыкновенной. Максимальная суммарная длина побегов брусники обыкновенной отмечена на питательной среде AN при совместном применении цитокинина 2-iP в концентрации 0,2 мг/л и стимулятора роста HB-101 в концентрации 0,1 мл/л.
На этапе «укоренение микропобегов» суммарная длина корней брусники обыкновенной in vitro на питательной среде AN была существенно больше в вариантах с ауксином ИУК в концентрации 2,0 мг/л, а также при наличии в питательной среде препарата HB-101 в концентрации 0,1 мл/л. При их совместном применении суммарная длина побегов достигала максимальных значений. Полученные результаты указывают на эффективность использования HB-101 на различных этапах микроклонального размножения брусники обыкновенной зимостойких и крупноплодных сортов российской селекции.
Список литературы Использование современных ростостимулирующих экопрепаратов при микроклональном размножении брусники обыкновенной (Vaccinium vitis-idaea L.)
- Проблемы использования и воспроизводства фитогенных пищевых и лекарственных ресурсов леса на землях лесного фонда Костромской области / С.С. Макаров, Е.С. Багаев, С.Ю. Цареградская, И.Б. Кузнецова // Лесной журнал. - 2019. - № 6. - С. 118-131.
- Торф, торфяные почвы, удобрения / Н.Г. Ковалев, А.И. Поздняков, Д.А. Мусекаев, Л.А. Позднякова. - М., 1998. - 240 с.
- Торфяные болота России: к анализу отраслевой информации. - М. : Геос, 2001. - 190 с.
- Выработанные торфяные месторождения, их характеристика и функционирование / Л.И. Инишева, В.Е. Аристархова, Е.В. Порохина, А.Ф. Боровкова. - Томск : изд-во ТГПУ, 2007. - 185 с.
- Основные направления действий по сохранению и рациональному использованию торфяных болот России. - М., 2003. - 24 с.
- Тяк, Г.В. Создание на выработанных торфяниках посадок лесных ягодных растений как метод их биологической рекультивации / Г.В. Тяк, Л.Е. Курлович // Проблемы рационального использования природных ресурсов и устойчивое развитие Полесья : сб. докл. Междунар. науч. конф. (Минск, 14-17 сентября 2016 г.). - Минск : Белоруская навука, 2016. - Т. 2. - С. 351-353.
- Тяк, Г.В. Опыт выращивания брусники в условиях Костромской области / Г.В. Тяк, А.Ф. Черкасов, С.А. Алтухова // Вопросы использования и восстановления древесных и недревесных ресурсов леса южной тайги. - М. : ВНИИЛМ, 1998. - С. 50-63.
- Бутенко, Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе / Р.Г. Бутенко. - М. : ФБК-Пресс, 1999. - 160 с.
- Сельскохозяйственная биотехнология и биоинженерия : учеб. ; изд. 4-е, перераб. и доп. / под. ред. В.С. Шевелухи. — М. : URSS, 2015. - 715 с.
- Калашникова, Е.А. Клеточная инженерия растений : учеб. и практикум для вузов / Е.А. Калашникова. -М. : Юрайт, 2020. - 333 с.
- Anderson, W.C. Propagation of Rhododendrons by Tissue Culture. 1. Development of a Culture Medium for Multiplication of Shoots / W.C. Anderson // Proc. Int. Plant Prop. Soc. - 1975. - Vol. 25. - P. 129-135.
- Государственный каталог пестицидов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации (по сост. на 08.02.2021 г.). - М., 2021. - 803 с.
- Доспехов, Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований) : учеб. - изд. 6-е / Б.А. Доспехов. - М. : Альянс, 2011. - 350 с.
