Исследование изозимного полиморфизма у сортов ярового ячменя (Hordeum vulgare L.), контрастных по устойчивости к свинцу
Автор: Дикарев А.В., Дикарев В.Г., Гераськин С.А., Дикарева Н.С.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Биохимия и физиология устойчивых генотипов
Статья в выпуске: 1 т.51, 2016 года.
Бесплатный доступ
Свинец - один из наиболее опасных тяжелых металлов (ТМ). Процессы, обеспечивающие устойчивость растений к его действию, выяснены не полностью. Один из механизмов токсического эффекта свинца - генерация активных форм кислорода (АФК), в норме выполняющих важные регуляторные функции, но в повышенных концентрациях вызывающих многообразные нарушения жизнедеятельности клеток. Регуляция количества АФК осуществляется при помощи антоксидантных ферментов, таких как супероксиддисмутазы (SOD) и пероксидазы (PER). Эффективность большинства ферментов зависит от наличия множественных изоформ, обеспечивающих наиболее оптимальную их работоспособность в изменяющихся условиях среды. В качестве рабочей гипотезы было выдвинуто предположение, что устойчивость растений к ТМ определяется различиями в изоферментном составе антиоксидантных ферментов, что обеспечивает неодинаковую эффективность их работы по нейтрализации избытка АФК. Для проверки этой гипотезы были выполнены исследования изоферментных спектров ферментных систем супероксиддисмутазы и пероксидазы и ключевого фермента белкового метаболизма глутаматдегидрогеназы (GDH) в зародышах прорастающих семян у сортов ярового ячменя Hordeum vulgare L. Объектом исследования служили 12 сортов ярового двурядного ячменя, контрастных по устойчивости к действию Pb2+ (6 устойчивых и 6 чувствительных). Для анализа изоферментного состава использовали зародыши наклюнувшихся жизнеспособных семян, у которых корешок через 1 сут после закладки на проращивание достигал длины 1 мм. Проращивание выполняли рулонным методом в соответствии с требованиями ГОСТ. Гомогенаты зародышей семян подвергали электрофорезу в блоках 7,5 % полиакриламидного геля (ПААГ) в щелочной буферной системе с рН 8,9. Изоферментный анализ показал наличие в ферментных системах супероксиддисмутазы, пероксидазы и глутаматдегидрогеназы следующих изозимов: облигатных SODII, PERI и GDHI, а также редких SODI, SODIII+SODIV (всегда встречающихся вместе), SODV, PERII и GDHII. Были рассчитаны частоты встречаемости редких аллелей, оказавшиеся наиболее высокими у аллелей SODI и SODIII+SODIV как у чувствительных, так и у устойчивых сортов. Достоверность различий частот встречаемости редких аллельных форм ферментов у чувствительных и устойчивых сортов была оценена с помощью φ-критерия углового преобразования Фишера. В подавляющем числе вариантов рассчитанная величина φ-критерия Фишера оказалась больше критической φкр.0,01 = 2,31. Таким образом, выделенные редко встречающиеся изоформы исследуемых ферментов можно рассматривать в качестве биохимических маркеров чувствительности или устойчивости ячменя к действию свинца. Показано, что SODV и PERII чаще встречаются у чувствительных к воздействию свинца сортов, GDHII - у устойчивых. Частота SODIII и SODIV также достоверно различалась у устойчивых и чувствительных сортов. В работе обсуждаются молекулярно-генетические механизмы устойчивости растений к ТМ. Впервые экспериментально показано, что полиморфизм ярового ячменя по устойчивости к действию свинца на организменном уровне связан с биохимическим полиморфизмом определенного комплекса изоферментов супероксиддисмутазы, пероксидазы и глутаматдегидрогеназы. Полученные данные могут быть использованы в селекционной работе по созданию устойчивых к воздействию свинца сортов ячменя.
Свинец, ячмень, внутривидовой полиморфизм, контрастные по устойчивости сорта, изоферменты
Короткий адрес: https://sciup.org/142133662
IDR: 142133662 | DOI: 10.15389/agrobiology.2016.1.89rus
Список литературы Исследование изозимного полиморфизма у сортов ярового ячменя (Hordeum vulgare L.), контрастных по устойчивости к свинцу
- Гуральчук Ж.З. Механизмы устойчивости растений к действию тяжелых металлов. Физиология и биохимия культурных растений, 1994, 26(2): 107-117.
- Феник С.И., Трофимяк Т.Б., Блюм Я.Б. Механизмы формирования устойчивости растений к тяжелым металлам. Успехи современной биологии, 1995, 115(3): 261-276.
- Sharma Р., Dubey R.S. Lead toxicity in plants. Braz. J. Plant Physiol., 2005, 17(1): 35-52.
- Дикарев А.В., Дикарев В.Г., Дикарева Н.С., Гераськин С.А. Внутривидовой полиморфизм ярового ячменя (Hordeum vulgare L.) по устойчивости к действию свинца. Сельскохозяйственная биология, 2014, 5: 78-87 ( , 10.15389/agrobiology.2014.5.78eng) DOI: 10.15389/agrobiology.2014.5.78rus
- Сарапульцев Б.И., Гераськин С.А. Генетические основы радиорезистентности и эволюция. М., 1993.
- Конарев В.Г. Белки растений как генетические маркеры. М., 1983.
- Созинов А.А. Полиморфизм белков и его значение в генетике и селекции. М., 1985.
- Чесноков Ю.В. ДНК-фингерпринтинг и анализ генетического разнообразия у растений. Сельскохозяйственная биология, 2005, 1: 20-40.
- Алтухов Ю.П. Генетические процессы в популяциях. М., 2003.
- Тимошкина Н.Н., Водолажский Д.И., Усатов А.В. Молекулярно-генетические маркеры в исследовании внутри-и межвидового полиморфизма осетровых рыб (Acipenseriformes). Экологическая генетика, 2010, 8(1): 12-24.
- Staszak J., Grulke N.E., Marrett M.J., Prus-Glowacki W. Isozyme markers associated with O3 tolerance indicate shift in genetic structure of ponderosa and Jeffrey pine in Sequoia National Park, California. Environ. Pollut., 2007, 149: 366-375 ( ) DOI: 10.1016/j.envpol.2007.05.026
- Алтухов Ю.П., Салменкова Е.А. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике. Генетика, 2002, 38(9): 1173-1195.
- Cartes P., McManus M., Wulf-Zotelle C. Differential superoxide dismutase expression in ryegrass cultivars in response to short term aluminum stress. Plant Soil, 2012, 350: 353-363 ( ) DOI: 10.1007/s11104-011-0919-3
- Wang C., Tian Y., Wang X., Geng J., Jiang J., Yu H., Wang C. Lead-contaminated soil induced oxidative stress, defense response and its indicative biomarkers in roots of Vicia faba seedlings. Ecotoxicology, 2010, 19: 1130-1139 ( ) DOI: 10.1007/s10646-010-0496-x
- Drazkiewicz M., Skorzynska-Polit E., Krupa Z. The redox state and activity of superoxide dismutase classes in Arabidopsis thaliana under cadmium or copper stress. Chemosphere, 2007, 67: 188-193 ( ) DOI: 10.1016/j.chemosphere.2006.08.032
- ГОСТ 12038-84. Семена сельскохозяйственных культур. Методы определения всхожести/Под ред. T.И. Василенко. М., 2010.
- Маурер Г. Диск-электрофорез. М., 1971.
- Остерман Л.А. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот. Электрофорез и ультрацентрифугирование. М., 1981.
- Плешков Б.П. Практикум по биохимии растений. М., 1976.
- Manchenko G.P. Handbook of detection of enzymes on electrophoretic gels. NY, 1994.
- Зыкова Н.Ю. Методы математической обработки данных. Воронеж, 2008.
- Boening D.W. Ecological effects, transport and fate of mercury: a general review. Chemosphere, 2000, 40: 1335-1351 ( ) DOI: 10.1016/S0045-6535(99)00283-0
- Wang Y., Greger M. Clonal differences in mercury tolerance, accumulation and distribution in willow. J. Environ. Qual., 2004, 33: 1779-1785 ( ) DOI: 10.2134/jeq2004.1779
- Zhou Z.S., Huang S.Q., Guo K., Mehta S.K., Zhang P.C., Yang Z.M. Metabolic adaptations to mercury-induced oxidative stress in roots of Medicago sativa L. J. Inorg. Biochem., 2007, 101: 1-9 ( ) DOI: 10.1016/j.jinorgbio.2006.05.011
- Cho U.H., Park J.O. Mercury-induced oxidative stress in tomato seedlings. Plant Sci., 2000, 156: 1-9 ( ) DOI: 10.1016/S0168-9452(00)00227-2
- Cargnelutti D., Tabaldi L.A., Spanevello R.M. Mercury toxicity induces oxidative stress in growing cucumber seedlings. Chemosphere, 2006, 65: 999-1006 ( ) DOI: 10.1016/j.chemosphere.2006.03.037
- Chen J., Shiyab S., Han F.X. Bioaccumulation and physiological effects of mercury in Pteris vittata and Nephrolepis exaltata. Ecotoxicology, 2009, 18: 110-121 ( ) DOI: 10.1007/s10646-008-0264-3
- Apel K., Hirt H. Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress, and signal transduction. Annu. Rev. Plant Biol., 2004, 55: 373-399 (doi: 10.1146/annurev.arplant.55.031903.141701).
- del Rió L.A., Sandalio L.M., Corpas F.J., Palma J.M., Barroso J.B. Reactive oxygen species and reactive nitrogen species in peroxisomes, production, scavenging, and role in cell signaling. Plant Physiol., 2006, 141: 330-335 ( ) DOI: 10.1104/pp.106.078204
- Полесская О.Г. Растительная клетка и активные формы кислорода. М., 2007.
- Mittler R., Vanderauwera S., Gollery M., Van Breusegem F. Reactive oxygen gene network of plants. Trends Plant Sci., 2004, 9: 490-498 ( ) DOI: 10.1016/j.tplants.2004.08.009
- Fried R. Enzymatic and non-enzymatic assay of superoxide-dismutase. Biochemie, 1975, 57: 657-660 ( ) DOI: 10.1016/S0300-9084(75)80147-7
- Inze D., Montagu M. Oxidative stress in plants. Curr. Opin. Biotechnol., 1995, 6: 153-158 ( ) DOI: 10.1016/0958-1669(95)80024-7
- Scandalios J.G. Oxygen stress and superoxide dismutases. Plant Physiol., 1993, 101: 7-12.
- Alscher R.G., Erturk N., Heath L.S. Role of superoxide dismutases (SODs) in controlling oxidative stress in plants. J. Exp. Bot., 2002, 53: 1331-1341 ( ) DOI: 10.1093/jexbot/53.372.1331
- Rancelis V., Cesniene T., Kleizaite V. Influence of cobalt uptake by Vicia faba seeds on chlorophyll morphosis induction, SOD polymorphism and DNA methylation. Environ. Toxicol., 2010, 10: 5-15 ( ) DOI: 10.1002/tox.20609
- Taylor N.L. Targets of stress-induced oxidative damage in plant mitochondria and their impact on cell carbon/nitrogen metabolism. J. Exp. Bot., 2004, 55(394): 1-10 ( ) DOI: 10.1093/jxb/erh001
- Vacca R.A. Production of reactive oxygen species, alteration of cytosolic ascorbate peroxidase, and impairment of mitochondrial metabolism are early events in heat shock-induced programmed cell death in tobacco. Plant Physiol., 2004, 134(3): 1100-1112 ( ) DOI: 10.1104/pp.103.035956
- Mallick S., Sinam G., Sinha S. Study on arsenate tolerant and sensitive cultivars of Zea mays L.: differential detoxification mechanism and effect on nutrient status. Ecotoxicology and Environmental Safety, 2011, 74: 1316-1324 ( ) DOI: 10.1016/j.ecoenv.2011.02.012
- Elbaz A., Wei Y., Meng Q. Mercury-induced oxidative stress and impact on antioxidant enzymes in Chlamidomonas reinhardtii. Ecotoxicology, 2010, 10: 8-18.
- Волкова П.Ю., Гераськин С.А. Полиморфизм антиоксидантных ферментов в хронически облучаемых популяциях сосны обыкновенной. Экологическая генетика, 2013, 9(3): 48-62.
- Dat J., Vandenabeele S., Vranova E. Dual action of the active oxygen species during plant stress responses. Cell. Mol. Life Sci., 2000, 57: 779-795 ( ) DOI: 10.1007/s000180050041
- Lanubile A., Bernardi J., Marocco A. Differential activation of defense genes and enzymes in maize genotypes with contrasting levels of resistance to Fusarium verticillioides. Environ. Exp. Bot., 2012, 78: 39-46 ( ) DOI: 10.1016/j.envexpbot.2011.12.006
- Lamb C., Dixon R.A. The oxidative burst in plant disease resistance. Annu. Rev. Plant. Physiol. Plant. Mol. Biol., 1997, 48: 251-275 ( ) DOI: 10.1146/annurev.arplant.48.1.251
- Bolwell G.P., Butt V.S., Davies D.R., Zimmerlin A. The origin of the oxidative burst in plants. Free Radic. Res., 1995, 23: 517-523 ( ) DOI: 10.3109/10715769509065273
- Lane B.G. Oxalate, germin, and the extracellular matrix of higher plants. FASEB J., 1994, 8: 294-301.
- Hammond-Kosack K.E., Jones J.D.G. Resistance gene-dependent plant defense responses. Plant Cell., 1996, 8: 1773-1791 ( ) DOI: 10.2307/3870229
- Sheen S.J., Diachun S. Peroxidases of red clover resistant and susceptible to bean yellow mosaic virus. Acta Phytopathol. Acad. Sci. Hung., 1978, 13(2): 21-28.
- Grabowska A., Nowicki M., Kwinta J. Glutamate dehydrogenase of the germinating triticale seeds: gene expression, activity distribution and kinetic characteristics. Acta Physiologiae Plantarum, 2011, 33: 1981-1990 ( ) DOI: 10.1007/s11738-011-0801-1
- Loulakakis K.A., Roubelakis-Angelakis K.A. The seven NAD(H)-glutamate dehydrogenase isoenzymes exhibit similar anabolic and catabolic activities. Physiol. Plant., 1996, 96: 29-35 ( ) DOI: 10.1111/j.1399-3054.1996.tb00179.x
- Purnell M.P., Scopelites D.S., Roubelakis-Angelakis K.A. Modulation of higher-plant NAD(H) dependent glutamate dehydrogenase activity in transgenic tobacco via alteration of beta-subunit level. Planta, 2005, 222: 167-180 ( ) DOI: 10.1007/s00425-005-1510-z
- Диксон М., Уэбб Э. Ферменты. В 3 т. М., 1982.
- Мецлер Д. Биохимия. Химические реакции в живой клетке. В 3 т. М., 1980.
- Mungur R., Glass A.D.M., Goodenow D.B., Lightfoot D.A. Metabolite fingerprinting in transgenic Nicotiana tabacum altered by the Escherichia coli glutamate dehydrogenase gene. J. Biomed. Biotechnol., 2005, 2: 198-214 ( ) DOI: 10.1155/JBB.2005.198
- Mungur R., Wood A.J., Lightfoot D.A. Water potential is maintained during water deficit in Nicotiana tabacum expressing the Escherichia coli glutamate dehydrogenase gene. Plant Growth Regulation, 2006, 50(2): 231-238 ( ) DOI: 10.1007/s10725-006-9140-4
- Ameziane R., Bernhardt K., Lightfoot D.A. Expression of the bacterial gdhA gene encoding a glutamate dehydrogenase in tobacco and corn increased tolerance to the phosphinothricin herbicide. In: Nitrogen in a sustainable ecosystem: from the cell to the plant/M.A. Martins-Loucao, S.H. Lips (eds.). Leiden, 2000.
- Geburek T., Scholz F., Knabe W. Genetic studies by isozyme gene loci on tolerance and sensitivity in air polluted Pinus sylvestris field trial. Silvae genetica, 1987, 36(2): 49-53.
- Wooton J.C. Re-assessment of ammonium-ion affinities of NADP-specific glutamate dehydrogenases. Biochem J., 1983, 209: 527-531.