Изменчивость полифенолоксидазной и пероксидазной активности агродерново-подзолистой почвы разной окультуренности с биоуглем
Автор: Рижия Е.Я., Бойцова Л.В., Вертебный В.Е., Horak J., Москвин М.А., Дубовицкая В.И., Хомяков Ю.В.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Статья в выпуске: 3 т.57, 2022 года.
Бесплатный доступ
Биоуголь относится к новым видам органогенных мелиорантов. Он производится посредством высокотемпературного бескислородного пиролиза из возобновляемой биомассы для секвестрации углерода в почвах и снижения эмиссии парниковых газов. Перспектива использования биоугля на землях сельскохозяйственного назначения обусловливает пристальное внимание к различным аспектам его воздействия на свойства и функционирование компонентов агроценозов. В представленной работе мы впервые установили, что двухлетнее нахождение биоугля в дерново-подзолистой супесчаной почве способствовало изменчивости функциональных групп на его поверхности, что выразилось в росте количества гидроксильных (-ОН), карбонильных (С=О) и карбоксилатных (СОО-) групп по сравнению с исходным биоуглем и в тенденции к увеличению минерализации органического вещества, исходя из активности полифенолоксидазы и пероксидазы. Цель работы - оценка изменчивости полифенолоксидазной и пероксидазной активности в агродерново-подзолистой почве с разной степенью окультуренности при внесении в нее биоугля, а также определение окисленности поверхности биоугля после инкубации в почве. Полевые исследования проводили в течение вегетационных периодов 2019 и 2020 годов на территории экспериментальной опытной станции Агрофизического научно-исследовательского института (пос. Меньково, Гатчинский р-н, Ленинградская обл.). Опытные делянки размером 4 м2 размещали на почве со средней (СОК) и высокой (ВОК) степенью окультуренности. Схема опыта включала по два варианта в 3-кратной повторности: контроль (без биоугля) и опыт (почва с биоуглем в дозе 20 т/га, который вносили в верхний слой 0-10 см). Использовали древесный уголь из березы ( Betula pendula Roth) сорта Премиум, произведенный быстрым пиролизом при температуре 600 °C. Химическая характеристика биоугля: Сорг. - 88,9 %, Nобщ. - 0,43 %, H - 3,2 %, O - 5,1 %, pHН2О 8,3, Wгв - 3,1 %, зольность - 1,8 %. В 2019 году на делянках возделывали викоовсяную смесь (вика посевная яровая Vicia sativa L. сорта Льговский и овес яровой Avеna satíva L. сорта Боррус в соотношении 30 % к 70 %) из расчета 200 кг/га (или по 85 г на 4 м2). В 2020 году возделывался люпин белый ( Lupinus albus L.) сорта Дега как сидерат под озимую пшеницу из расчета 200 кг/га. Отбор почвенных образцов и биоугля при помощи почвенного бура Эндельмана («Royal Eijkelkamp B.V.», Нидерланды) из слоя гумусового горизонта 0-10 см проводили с интервалом 14 сут с мая по август включительно. Активность пероксидазы и полифенолоксидазы изучали фотоколориметрическим методом по А.Ш. Галстяну соответственно при λ = 440 нм и λ = 590 нм. Расчет коэффициента гумификации (Кгум.) проводился по отношению активности полифенолоксидазы (ПФО) к активности пероксидазы (ПО). Для оценки временных изменений окисленности поверхности биоугля определяли содержание кислородсодержащих групп методом ИК-спектрометрии (спектрометр ФСМ 2202 типа Майкельсона, «Инфраспек», Россия). Была выявлена общая тенденция повышения активности изучаемых ферментов при внесении биоугля в почву: в среднем на 13 % (средняя степень окультуренности) и 12 % (высокая степень окультуренности). Активность ПО была в среднем в 1,5 раза выше, чем активность ПФО, и статистически значимо (p гум. в почве с СОК был примерно на 20 % ниже, чем в почве с ВОК, где сформировались оптимальные условия (температура, влажность, количество органического вещества) для процессов синтеза гумуса. Оказалось, что во всех вариантах опыта Кгум. 1, что свидетельствует о преобладании процессов минерализации гумусовых веществ в почве над их иммобилизацией. При этом биоуголь усиливал минерализацию органического вещества в среднем на 11,5 % по сравнению с почвами без биоугля. После инкубации биоугля в почве в течение 17 мес отмечена тенденция роста количества гидроксильных (-ОН), карбонильных (С=О) и карбоксилатных (СОО-) групп по сравнению с исходным биоуглем, что согласуется с данными по увеличению активности ПФО и ПО в исследуемых почвах. Основываясь на результатах изменения значений ПФО, ПО, ИК-спектров, можно утверждать, что внесенный биоуголь оставался в стабильной форме и не оказывал существенного влияния на ферментативную активность почв.
Дерново-подзолистая супесчаная почва, биоуголь, пероксидаза, кф 1.11.1.7, полифенолоксидаза, кф 1.10.3.1, ик-спектры биоугля
Короткий адрес: https://sciup.org/142236338
IDR: 142236338 | DOI: 10.15389/agrobiology.2022.3.476rus
Список литературы Изменчивость полифенолоксидазной и пероксидазной активности агродерново-подзолистой почвы разной окультуренности с биоуглем
- Lehmann J., Rillig M.C., Thies J., Masiello C.A., Hockaday W.C., Crowley D. Biochar effects on soil biota — a review. Soil Biology and Biochemistry, 2011, 43(9): 1812-1836 (doi: 10.1016/j.soilbio.2011.04.022).
- Huang Z., Hu L, Dai J. Effects of ageing on the surface characteristics and Cu(II) adsorption behaviour of rice husk biochar in soil. Open Chemistry, 2020, 18(1): 1421-1432 (doi: 10.1515/chem-2020-0164).
- Beusch C. Biochar as a soil ameliorant: how biochar properties benefit soil fertility — a review. Journal of Geoscience and Environment Protection, 2021, 9(10): 28-46 (doi: 10.4236/gep.2021.910003).
- Nie T., Hao P., Zhao Z., Zhou W., Zhu L. Effect of oxidation-induced aging on the adsorption and co-adsorption of tetracycline and Cu2+ onto biochar. Science of The Total Environment, 2019, 673: 522-532 (doi: 10.1016/j.scitotenv.2019.04.089).
- Zheng H., Wang Z., Deng X., Herbert S., Xing B. Impacts of adding biochar on nitrogen retention and bioavailability in agricultural soil. Geoderma, 2013, 206: 32-39 (doi: 10.1016/j.ge-oderma.2013.04.018).
- Rechberger M.V., Kloss S., Rennhofer H., Titner J., Watzinger A., Soja G., Lichtenegger H., Zehetner F. Changes in biochar physical and chemical properties: accelerated biochar aging in an acidic soil. Carbon, 2017, 115: 209-219 (doi: 10.1016/j.carbon.2016.12.096).
- Li H., Lu X., Xu Y., Liu H. How close is artificial biochar aging to natural biochar aging in fields? A meta-analysis. Geoderma, 2019, 352: 96-103 (doi: 10.1016/j.geoderma.2019.06.006).
- Gámiz B., Velarde P., Spokas K.A., Celis R., Cox L. Changes in sorption and bioavailability of herbicides in soil amended with fresh and aged biochar. Geoderma, 2019, 337: 341-349 (doi: 10.1016/j.geoderma.2018.09.033).
- Huang Z., Hu L., Zhou Q., Guo Y., Tang W., Dai J. Effect of aging on surface chemistry of rice husk-derived biochar. Environmental Progress & Sustainable Energy, 2018, 37(1): 410-417 (doi: 10.1002/ep.12694).
- Fuertes A.B., Camps Arbestain M., Sevilla M., Maciá-Agullo J.A., Fiol S., López R., Smer-nik R.J., Aikenhead W.P., Arce F., Macías F. Chemical and structural properties of carbonaceous products obtained by pyrolysis and hydrothermal carbonization of corn stover. Australian Journal of Soil Research, 2010, 48(7): 618-626 (doi: 10.1071/SR10010).
- Batista E.M.C.C., Shultz J., Matos T.T.S., Fomari M.R., Ferreira T.M., Szpoganicz B., de Freitas R.A., Mangrich A.S. Effect of surface and porosity of biochar on water holding capacity aiming indirectly at preservation of the Amazon biome. Scientific Reports, 2018, 8: 10677 (doi: 10.1038/s41598-018-28794-z).
- Marshall J., Muhlack R., Morton B.J., Dunnigan L., Chittleborough D., Kwong C.W. Pyrolysis temperature effects on biochar—water interactions and application for improved water holding capacity in vineyard soils. Soil Syst., 2019, 3(2): 27 (doi: 10.3390/soilsystems3020027)
- Mukheqee A., Zimmerman1 A.R., Hamdan R., Cooper W.T. Physicochemical changes in pyro-genic organic matter (biochar) after 15 months field aging. Solid Earth Discuss, 2014, 6: 731-760 (doi: 10.5194/sed-6-731-2014).
- Шахназарова В.Ю., Орлова Н.Е., Орлова Е.Е., Банкина Т.А., Якконен К.Л., Рижия Е.Я., Кичко А.А. Изменения таксономического состава и структуры прокариотного сообщества агродерново-подзолистой почвы при внесении биоугля. Сельскохозяйственная биология, 2020, 55(1): 163-173 (doi: 10.15389/agrobiology.2020.1.163rus).
- Gornjalves Lopes E.M., Mendes Reis M., Leidivan Almeida Frazro, da Mata Terra L.M., Lopes E.F., dos Santos M.M., Fernandes L.A. Biochar increases enzyme activity and total microbial quality of soil grown with sugarcane. Environmental Technology & Innovation, 2021, 21: 101270 (doi: 10.1016/j.eti.2020.101270).
- Wang D., Li C., Parikh S.J., Scow K.M. Impact of biochar on water retention of two agricultural soils — a multi-scale analysis. Geoderma, 2019, 340: 185-191 (doi: 10.1016/j.geoderma.2019.01.012).
- Sánchez-García M., Sánchez-Monedero M. A., Roig A., López-Cano I., Moreno B., Benitez E., Cayuela M.L. Compost vs biochar amendment: a two-year field study evaluating soil C build-up and N dynamics in an organically managed olive crop. Plant and Soil, 2016, 408(1/2): 1-14 (doi: 10.1007/s11104-016-2794-4).
- Хазиев Ф.Х. Методы почвенной энзимологии. М., 2005.
- Бойцова Л.В., Рижия Е.Я., Дубовицкая В.И. Динамика кислотности и емкости катионного обмена дерново-подзолистой супесчаной почвы при внесении биоугля. Агрохимия, 2021, 9: 23-31 (doi: 10.31857/S0002188121090052).
- Гулько А.Е., Хазиев Ф.Х. Фенолоксидазы почв: продуцирование, иммобилизация, активность. Почвоведение, 1992, 11: 55-67.
- Методы почвенной микробиологии и биохимии /Под общ. ред. Д.Г. Звягинцева. М., 1991.
- KeiluweIt M., Nico P.S., Johnson M.G., Kleber M. Dynamic molecular structure of plant bio-mass-derived black carbon (biochar). Environmental Science & Technology, 2010, 44(4): 12471253 (doi: 10.1021/es9031419).
- Njuma O.J., Davis I., Ndontsa E.N., Krewall J.R., Liu A., Goodwin D.C. Mutual synergy between catalase and peroxidase activities of the bifunctional enzyme KatG is facilitated by electron hole-hopping within the enzyme. Journal of Biological Chemistry, 2017, 292(45): 8408-18421 (doi: 10.1074/jbc.M117.791202).
- Libra J. A., Ro K.S., Kammann C., Funke, Berge N.D., Neubauer Y., Titirici M.M., Fühner C., Bens O., Kern J., Emmerich K.-H. Hydrothermal carbonization of biomass residuals: a comparative review of the chemistry, processes and applications of wet and dry pyrolysis. Biofuels, 2011, 2(1): 71-106 (doi: 10.4155/bfs.10.81).
- Чундерова А.И. Активность полифенолоксидазы и пероксидазы в дерново-подзолистых почвах. Почвоведение, 1970, 7: 22-26.
- Lammirato C., Miltner A., Kaestner M. Effects of wood char and activated carbon on the hydrolysis of cellobiose by p-glucosidase from Aspergillus niger. Soil Biology and Biochemistry, 2011, 43(9): 1936-1942 (doi: 10.1016/j.soilbio.2011.05.021).
- Ahmad M., Rajapaksha A.U., Lim E.U., Zhang M., Bolan N., Mohan D., Vithanage M., Lee S.S., Ok Y.S. Biochar as a sorbent for contaminant management in soil and water: a review. Chemosphere, 2014, 99: 19-33 (doi: 10.1016/j.chemosphere.2013.10.071).
- Ibrahim M.M., Tong C., Hu K., Zhou B., Xing S., Mao Y. Biochar-fertilizer interaction modifies N-sorption, enzyme activities and microbial functional abundance regulating nitrogen retention in rhizosphere. Science of The Total Environment 2020, 739: 140065 (doi: 10.1016/j.sci-totenv.2020.140065)
- Ameloot N., De Neve S., Jegajeevagan K., Yildiz G., Buchan D., Funkuin Y.N., Prins W., Bouckaert L., Sleutel S. Short-term CO2 and N2O emissions and microbial properties of biochar amended sandy loam soils. Soil Biology and Biochemistry, 2013, 57: 401-410 (doi: 10.1016/j.soil-bio.2012.10.025).
- Bailey V.L., Fansler S.J., Smith J.L., Bolton H. Reconciling apparent variability in effects of biochar amendment on soil enzyme activities by assay optimization. Soil Biology and Biochemistry, 2011 43(2): 296-301 (doi: 10.1016/j.soilbio.2010.10.014).
- Park J., Choppala G., Bolan N, Chung J., Chuasavathi T. Biochar reduces the bioavailability and phytotoxicity of heavy metals. Plant Soil, 2011, 348: 439-451 (doi: 10.1007/s11104-011-0948-y).
- Kumar S., Mastro R., Ram L., Sarkar P., George J., Selvi V. Biochar preparation from Parthe-nium hysterophorus and its potential use in soil application. Journal of Ecological Engineering, 2013, 55: 67-72 (doi: 10.1016/j.ecoleng.2013.02.011).
- Paz-Ferreiro J., Gasco G., Gutierrez B., Mendez A. Soil biochemical activities and the geometric mean of enzyme activities after application of sewage sludge and sewage sludge biochar to soil. Biology and Fertility of Soils, 2012, 48: 511-517 (doi: 10.1007/s00374-011-0644-3).
- Wu F., Jia Z., Wang S., Chang S., Startsev A. Contrasting effects of wheat straw and its biochar on greenhouse gas emissions and enzyme activities in a Chernozemic soil. Biology and Fertility of Soils, 2013, 49: 555-565 (doi: 10.1007/s00374-012-0745-7).
- Kuzyakov Y., Bogomolova I., Glaser B. Biochar stability in soil: decomposition during eight years and transformation as assessed by compound-specific 14C analysis. Soil Biology and Biochemistry, 2014, 70: 229-236 (doi: 10.1016/j.soilbio.2013.12.021).
- Tozzi F.V.D.N., Coscione A.R., Puga A.P., Carvalho C.S., Cerri C.E.P., de Andrade C.A. Carbon stability and biochar aging process after soil application. Horticult. Int. J., 2019, 3(6): 320329 (doi: 10.15406/hij.2019.03.00148).
- Носенко Т.Н., Ситникова В.Е., Стрельникова И.Е., Фокина М.И. Практикум по колебательной спектроскопии. СПб, 2021.
- Ahmad M., Lee S.S., Dou X., Mohan D., Sung J.-K., Yang J.E, Ok Y.S. Effects of pyrolysis temperature on soybean stover and peanut shell-derived biochar properties and TCE adsorption in water. Bioresource Technology, 2012, 118: 536-544 (doi: 10.1016/j.biortech.2012.05.042).
- Naisse C., Girardin C., Lefevre R., Pozzi A., Maas R., Stark A., Rumpel K. Effect of physical weathering on the carbon sequestration potential of biochars and hydrochars in soil. GCB Bioen-ergy, 2015, 7: 488-496 (doi: 10.1111/gcbb.12158).
- Ghaffar A., Ghosh A., Li F., Dong X., Zhang D., Wu M., Li H., Pan B. Effect of biochar ageing on surface characteristics and adsorption behavior of dialkyl phthalates. Environmental Pollution,