Изменение экспрессии aox1a, кодирование митохондриальной альтернативной оксидазы, влияние на морозоустойчивость растений Arabidopsis
Автор: Грабелныч Ольга И., Боровик Ольга А., Побежимова Тамара П., Королева Нина А., Любушкина Ирина В., Забанова Наталья Сергеевна, Войников Виктор К.
Журнал: Журнал стресс-физиологии и биохимии @jspb
Статья в выпуске: 4 т.12, 2016 года.
Бесплатный доступ
Сопротивление растений Arabidopsis thaliana (L.) Heynh (Columbia ecotype): линия Col-0 (дикий тип), линия AS-12 (растения, трансформированные конструкцией, несущей ген AOX1a под контролем промотора CAMV 35S в антисмысловой ориентации ) и линии XX-2 (растения, трансформированные конструкцией гена AOX1a в ориентационной ориентации) (Umbach et al., 2005), к действию отрицательной температуры. Показано, что изменение экспрессии AOX1a сопровождается изменением вклада AOX в дыхание и увеличением базовой морозостойкости растений Arabidopsis. В листьях растений с избыточной экспрессией АОХ1а была снижена активность общей супероксиддисмутазы (СОД), но была увеличена активность пероксидазы гваякола и была меньше содержания перекиси водорода. Было обнаружено, что холодное упрочнение в течение 7 дней при 5 ° С повышает устойчивость растений к последующему действию отрицательной температуры независимо от степени экспрессии АОХ1а. Затвердевание приводит к активации дыхания, увеличению вклада AOX в дыхание, значительному увеличению содержания водорастворимых углеводов и увеличению активности SOD и полных пероксидаз Guaiacol в листьях всех линий растений. В затвердевших растениях дикого типа Arabidopsis и трансформантов AOX1a обнаружены различия в содержании отдельных типов активных форм кислорода и активности антиоксидантных ферментов. Наблюдалась тенденция к уменьшению содержания пероксида водорода в линиях с измененной экспрессией AOX1a, но содержание супероксид-анионного радикала (SAR) было значительно ниже в линии AS-12 по сравнению с растениями Col-0 и XX-2 после затвердевания. Низкое содержание SAR в листьях линии AS-12 было частично вызвано увеличением активности SOD. Таким образом, мы выявили различия в основной морозостойкости растений Arabidopsis с измененной экспрессией AOX1a, но существенных различий в морозостойкости закаленных растений дикого типа и линий с измененной экспрессией AOX1a не обнаружено. Сделан вывод о том, что морозоустойчивость растений зависит от активности АОХ, но снижение его активности может быть компенсировано активацией других защитных систем, включая антиоксидантные ферменты.
Короткий адрес: https://sciup.org/14324005
IDR: 14324005
Список литературы Изменение экспрессии aox1a, кодирование митохондриальной альтернативной оксидазы, влияние на морозоустойчивость растений Arabidopsis
- Aleksandrov V.Ja. (1954) Uproshhennyj sposob infil'tracii rastitel'nyh tkanej. Botanicheskij zhurnal , 39, 421-422
- Beauchamp C. and Fridovich I. (1971) Superoxide dismutase: Improved assays and an assay applicable to acrylamide gels. Anal. Biochem., 44, 276-287
- Bergmeyer H.U. (1983) Methods of enzymatic analysis. Volume 1: Fundamentals, VCH Publishers, Weinheim, 571 p
- Blokhina O.B. and Fagerstedt K.V. (2010) Reactive oxygen species and nitric oxide in plant mitochondria: origin and redundant regulatory systems. Plant Physiol., 138, 447-462
- Borecky J., Nogueira F.T.S., de Oliveira K.A.P., Maia I.G., Vercesi A.E. and Arruda P. (2006) The plant energy-dissipating mitochondrial systems: depicting the genomic structure and the expression profiles of the gene families of uncoupling protein and alternative oxidase in monocots and dicots. J. Exp. Bot., 57, 849-864
- Borovik O.A. (2015) Funkcionirovanie al'ternativnoj oksidazy i NAD(F)∙N-degidrogenaz II tipa v mitohondriyah iz ehtiolirovannyh i zelenyh pobegov ozimoj pshenicy pri holodovom zakalivanii: avtoref. dis… kand. biol. nauk: 03.01.05, Irkutsk, 22 s
- Borovik O.A., Grabelnych O.I., Koroleva N.A., Pobezhimova T.P. and Voinikov V.K. (2013) The relationships among an activity of the alternative pathway respiratory flux, a content of carbohydrates and a frost-resistance of winter wheat. J. Stress Physiol. Biochem., 9, 241-250
- Clifton R., Millar A.H. and Whelan J. (2006) Alternative oxidases in Arabidopsis: a comparative analysis of differential expression in the gene family provides new insights into function of non-phosphorylating bypasses. Biochim. Biophys. Acta, 1757, 730-741
- Considine M.J., Holtzapffel R.C. and Day D.A., Whelan J. and Millar A.H. (2002) Molecular distinction between alternative oxidase from monocots and dicots. Plant Physiol., 129, 949-953
- Couée I., Sulmon C., Gouesbet G. and Amrani A.E. (2006) Involvement of soluble sugars in reactive oxygen species balance and responses to oxidative stress in plants. J. Exp. Bot., 57, 449-459
- Dishe Z. (1967) Obshhie cvetnye reakcii. pod red. Kochetkova N.K. Metodi himii uglevodov. M: Mir , 21-24
- Fiorani F., Umbach A.L. and Siedow J.N. (2005) The alternative oxidase of plant mitochondria is involved in the acclimation of shoot growth at low temperature. A study of Arabidopsis AOX1a transgenic plants. Plant Physiol., 139, 1795-1805
- Grabelnych O.I., Kolesnichenko A.V., Pobezhimova T.P., Tourchaninova V.V., Korzun A.M., Koroleva N.A., Zykova V.V. and Voinikov V.K. (2003) The role of different plant seedling shoots mitochondrial uncoupling systems in thermogenesis during low-temperature stress. J. Thermal Biol., 28, 571-580
- Grabel'nyh O.I., Pobezhimova T.P., Pavlovskaja N.S., Koroleva N.A., Borovik O.A., Ljubushkina I.V., Vojnikov V.K. (2011) Antioksidantnaja funkcija al'ternativnoj oksidazy v mitohondrijah ozimoj pshenicy pri holodovom zakalivanii. Biologicheskie membrany , 28, 274-283
- Grabelnych O.I., Borovik O.A., Tauson E.L., Pobezhimova T.P., Katyshev A.I., Pavlovskaya N.S.,Koroleva N.A., Lyubushkina I.V., Bashmakov V.Yu., Popov V.N., Borovskii G.B. and Voinikov V.K. (2014) Mitochondrial energy dissipating systems (alternative oxidase, uncoupling proteins, and external NADH dehydrogenase) are involved in development of frost-resistance of winter wheat seedlings. Biochem. (Moscow), 79, 506-519
- Lambers H., Robinson A. and Ribas-Carbo M. (2005) Regulation of respiration in vivo. Plant Respiration: From Cell to Ecosystem. Lambers H. and Ribas-Carbo M. (eds.), Springer, Hamburg, pp.1-15
- Maxwell D.P., Wang Y. and McIntosh L. (1999) The alternative oxidase lowers mitochondrial reactive oxygen production in plant cells. Proc. Natl. Acad. Sci., 96, 8271-8276
- Meeuse B.J.D. (1975) Thermogenic respiration in aroids. Ann. Rev. Plant Physiol., 26, 117-126
- Michalecka A.M., Svensson A.S., Johansson F.I., Agius S.C., Johanson U., Brennicke A., Binder S. and Rasmusson A.G. (2003) Arabidopsis genes encoding mitochondrial type II NAD(P)H dehydrogenases have different evolutionary origin and show distinct responses to light. Plant Physiol., 133, 642-652
- Nagy K.A., Odell D.K. and Seymour R.S. (1972) Temperature regulation by the inflorescence of Philodendron. Science, 178, 1195-1197
- Popov V.N. (2003) Possible role of free oxidation processes in regulation of reactive oxygen species production in plant mitochondria (review). Biochem. Soc. Transactions, 31, 1316-1317
- Purvis A.C. and Shewfelt R.L. (1993) Does the alternative pathway ameliorates chilling injury in sensitive plant tissue? Physiol. Plant., 88, 712-718
- Seymour R.A. and Schultze-Motel P. (1999) Respiration, temperature regulation and energetics of thermogenic inflorescences of the dragon lily Dracunculus vulgaris (Araceae). Proc. Roy. Soc. Lond. Ser. B. Biol. Sci., 266, 1975-1983
- Sugie A., Naydenov N., Mizuno N., Nakamura C. and Takumi S. (2006) Overexpression of wheat alternative oxidase gene Waox1a alters respiration capacity and response to reactive oxygen species under low temperature in transgenic Arabidopsis. Gen. Genet. Syst., 81, 349-354
- Tarasenko V.I., Garnik E.Y., Shmakov V.N. and Konstantinov Y.M. (2012) Modified alternative oxidase expression results in different reactive oxygen species content in Arabidopsis cell culture but not in whole plants. Biologia Plant., 56, 635-640
- Trunova T.I. (2007) Rastenie i nizkotemperaturnyj stress. М.: Nauka , 54 s
- Umbach A.L., Fiorani F. and Siedow J.N. (2005) Characterization of transformed Arabidopsis with altered alternative oxidase levels and analysis of effects on reactive oxygen species in tissue. Plant Physiol., 139, 1806-1820
- Vanlerberghe G.C. (2013) Alternative oxidase: a mitochondrial respiratory pathway to maintain metabolic and signaling homeostasis during abiotic and biotic stress in plants. Int. Mol. Sci., 14, 6805-6847
- Vanlerberghe G.C., Vanlerberghe A.E. and McIntosh L. (1994) Molecular genetic alteration of plant respiration: silencing and overexpression of alternative oxidase in transgenic tobacco. Plant Physiol., 106, 1503-1510
- Wagner A.M., Krab K., Wagner M.J. and Moore A.L. (2008) Regulation of thermogenesis in flowering Araceae: The role of the alternative oxidase. Biochim. Biophys. Acta, 1777, 993-1000
- Wang J., Rajakulendran N., Amirsadeghi S. and Vanlerberghe C. (2011) Impact of mitochondrial alternative oxidase expression on the response of Nicotiana tabacum to cold temperature. Physiol. Plant., 142, 339-351
- Watanabe C.K., Hachiya T., Terashima I. and Noguchi K. (2008) The lack of alternative oxidase at low temperature leads to a disruption of the balance in carbon and nitrogen metabolism, and to an up-regulation of antioxidant defence systems in Arabidopsis thaliana leaves. Plant Cell Environ., 31, 1190-1202
- Zhang D.-W., Xu F., Zhang Z.-W., Chen Y.-E., Du J.-B., Jia S.-D., Yuan S. and Lin H.-H. (2010) Effects of light on cyanide-resistant respiration and alternative oxidase function in Arabidopsis seedlings. Plant Cell Environ., 33, 2121-2131
- Zhu Y., Lu J., Wang J., Chen F., Leng F. and Li H. (2011) Regulation of thermogenesis in plants: The interaction of alternative oxidase and plant uncoupling mitochondrial protein. J. Integr. Plant Biol., 53, 7-13
- Suzuki N. and Mittler R. (2006) Reactive oxygen species and temperature stresses: A delicate balance between signaling and destruction. Physiol. Plant., 126, 45-51
- Xu J., Li Y., Sun J., Du L., Zhang Y., Yu Q. and Liu X. (2013) Comparative physiological and proteomic response to abrupt low temperature stress between two winter wheat cultivars differing in low temperature tolerance. Plant Biol., 15, 292-303