Измерительная микрофлюидная система для культивирования клеток головного мозга млекопитающих

Автор: Якимов А.С., Осипова Е.Д., Моргун А.В., Бойцова Е.Б., Белобров П.И., Салмин В.В., Салмина А.Б.

Журнал: Научное приборостроение @nauchnoe-priborostroenie

Рубрика: Приборостроение физико-химической биологии

Статья в выпуске: 4 т.29, 2019 года.

Бесплатный доступ

Прототипирование и разработка микрофлюидных систем для многих неспециализированных исследовательских биомедицинских лабораторий недоступны из-за дороговизны набора необходимого оборудования. Мы разработали способ переноса позитивного рисунка, сформированного методом фрезерования, с поверхности полиметилметакрилата на поверхность полидиметилсилоксана. Было обнаружено, что зуботехническая силиконовая масса для дублирования моделей Zhermack Elite double 22 имеет слабую адгезию на границе между давно застывшим слоем и застывающим. Это позволило дважды снять реплику с канализированной поверхности и получить копию фрезерованной канализированной поверхности на эластичном материале и показать, что полученный таким образом микрофлюидный чип пригоден для культивирования клеток.

Еще

Микрофлюидный чип, полидиметилсилоксан, фрезерование, реплика, проточное культивирование, lab-on-a-chip, polydimethylsiloxane, milling, master-form, flow-through cultivation

Короткий адрес: https://sciup.org/142221436

IDR: 142221436   |   DOI: 10.18358/np-29-4-i5156

Список литературы Измерительная микрофлюидная система для культивирования клеток головного мозга млекопитающих

  • Евстрапов А.А., Белобров П.И., Буляница А.Л., Белоусов К.И., Букатин А.С., Денисов И.А., Есимбекова Е.Н., Кухтевич И.В., Лукьяненко К.А., Посмитная Я.С., Сорокин В.В., Якимов А.С. Микрофлюидные технологии биологического анализа природных и промышленных вод. Новосибирск: Издательство СО РАН, 2017. 176 с.
  • Bates K., Jiang S., Chaudhary S., Jackson-Holmes E., Jue M.L., McCaskey E., Goldman D.I., Lu H. Fast, versatile and quantitative annotation of complex images // BioTechniques. 2019. Vol. 66, no. 6. Р. 269–275.
  • Agrawal G., Aung A., Varghese S. Skeletal muscle-on-achip: An in vitro model to evaluate tissue formation and injury // Lab on a Chip. 2017. Vol. 17, no. 20. Р. 3447– 3461.
  • Isenberg B.C., Williams C., Tranquillo R.T. Smalldiameter artificial arteries engineered in vitro // Circulation research. 2006. Vol. 98, no. 1. P. 25–35. DOI: 10.1039/c7lc00512a
  • Juskova P., Ollitrault A., Serra M., Viovy J.L., Malaquin L. Resolution improvement of 3D stereolithography through the direct laser trajectory programming: Application to microfluidic deterministic lateral displacement device // Analytica chimica acta. 2018. Vol. 1000. P. 239–247. DOI: 10.1016/j.aca.2017.11.062
  • Palmiotti C.A., Prasad S., Naik P., Abul K.M., Sajja R.K., Achyuta A.H., Cucullo L. In vitro cerebrovascular modeling in the 21st century: current and prospective technologies // Pharmaceutical research. 2014. Vol. 31, no. 12. P. 3229–3250. DOI: 10.1007/s11095-014-1464-6
  • Guckenberger D.J., de Groot T.E., Wan A.M., Beebe D.J., Young E.W. Micromilling: a method for ultra-rapid prototyping of plastic microfluidic devices // Lab on a Chip. 2015. Vol. 15, no. 11. P. 2364–2378. DOI: 10.1039/c5lc00234f
  • Хилажева Е.Д., Бойцова Е.Б., Пожиленкова Е.А., Солончук Ю.Р., Салмина А.Б. Получение трехклеточной модели нейроваскулярной единицы in vitro // Цитология. 2015. Т. 57, № 10. С. 710–713.
  • Посмитная Я.С., Букатин А.С., Макаров Д.А., Юдин К.В., Евстрапов А.А. Альтернативные подходы при создании мастер-форм для изготовления микрофлюидных чипов методом "мягкой" литографии // Научное приборостроение. 2017. Т. 27, № 2. С. 13–20. URL: http://iairas.ru/mag/2017/full2/Art2.pdf
  • Booth R., Kim H. Characterization of a microfluidic in vitro model of the blood-brain barrier (μBBB) // Lab on a Chip. 2012. Vol. 12, no. 10. Р. 1784–1792. DOI: 10.1039/c2lc40094d
  • Griep L.M., Wolbers F., de Wagenaar B., ter Braak P.M., Weksler B.B., Romero I.A., Couraud P.O., Vermes I., van der Meer A.D., van den Berg A. BBB on chip: microfluidic platform to mechanically and biochemically modulate blood-brain barrier function // Biomedical microdevices. 2013. Vol. 15, no. 1. P. 145–150. DOI: 10.1007/s10544-012-9699-7
Еще
Статья научная