Изучение фосфатмобилизующей способности штаммов Agrobacterium radiobacter 10 и Pseudomonas chlororaphis ПГ7 in vitro

Автор: Железняков С.В., Калинина Т.В., Деева В.К., Лактионов Ю.В., Якоби Л.М.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Фитопатология

Статья в выпуске: 1 т.57, 2022 года.

Бесплатный доступ

Тся их способность к мобилизации фосфатов почвы и удобрений. В настоящей работе впервые была исследована фосфатмобилизующая способность двух штаммов бактерий - Agrobacterium radiobacter 10 и Pseudomonas chlororaphis ПГ7, имеющих научную и практическую значимость. Установлена способность A. radiobacter 10 метаболизировать фитат, используя его в качестве источника углерода и энергии в отсутствие других источников, и способность P. chlororaphis ПГ7 солюбилизировать неорганические (трикальций фосфат, гидроксиапатит) и органический (фитат кальция) фосфаты. Нашей целью было изучение потенциальной способности штаммов Agrobacterium radiobacter 10 и Pseudomonas chlororaphis ПГ7 мобилизовать фосфор из труднодоступных для питания растений минеральных и органический соединений. Для получения накопительной культуры штаммы размножали на гороховом агаре (по Хотяновичу). Исследование фосфатмобилизующей способности штаммов проводили in vitro на селективных питательных средах при 28 °С. Способность штаммов дефосфорилировать фитат натрия оценивали на двух жидких средах. Среда II имела следующий состав (г/л дистиллированной воды): (NH4)2SO4 - 1,0, K2SO4 - 0,2, фитат Na («Sigma-Aldrich», США) - 10, кукурузный экстракт - 0,2 (рН 6,8). Состав среды PSM (phytase screening medium) (г/л дистиллированной воды): D-глюкоза - 15,0, (NH4)2SO4 - 5,0, KCl - 0,5, MgSO4ʺ7H2O - 0,1, NaCl - 0,1, CaCl2ʺ2H2O - 0,1, FeSO4ʺ7H2O - 0,01, MnSO4ʺ7Н2О - 0,01; фитат Na («Sigma-Aldrich», США) - 5 (рН 6,5). Содержание общего фосфора, вносимого в среды с фитатом Na, определяли по методу E. Truog и A.H. Meyer с модификацией по J.B. Rodriguez с соавт. (1994) после озоления препарата по методу Н.Е. Гинсбург и Г.М. Щегловой (1960). О способности штаммов расти на жидких средах судили по изменению численности (КОЕ/мл суспензии) за период инкубации. Оценивали накопление свободного ортофосфата в среде за период инкубации. Способность штаммов растворять неорганические и органические фосфаты изучали при культивировании на трех плотных питательных средах. Среда NBRIP (National Botanical Research Institute's phosphate growth medium) имела следующий состав (г/л дистиллированной воды): D-глюкоза - 10, Ca3(PO4)2 - 5,0, MgCl2ʺ6H2O - 5,0, MgSO4ʺ7H2O - 0,25, KCl - 2,0, (NH4)2SO4 - 0,1, агар-агар - 20 (рН 6,8). Состав глюкозо-аспарагиновой среды с гидроксиапатитом (по Г.С. Муромцеву) (43): D-глюкоза - 10, аспарагин - 1, K2SO4 - 0,2, MgSO4ʺ7H2O - 0,2, кукурузный экстракт - 0,2, Са5(РО4)3О5 - 4, агар-агар - 20 (рН 6,8). Состав среды PSM представлен выше, дополнительно вносили 20 г/л агар-агара и доводили рН до 6,5, добавляя 10 % водный раствор Са(ОН)2, тем самым переводя растворимый фитат натрия в нерастворимый фитат кальция. Наблюдали за образованием зон просветления (гало) вокруг колоний. В опытах на жидкой среде II было показано, что штамм A. radiobacter 10 способен использовать фитат в качестве источника углерода и фосфора для роста и размножения и ферментативным путем дефосфорилировать фитат. Об этом свидетельствовало значительное увеличение численности за период культивирования (4 сут), сравнительно небольшое понижение рН относительно контроля (без инокуляции), а также накопление фосфора в осадке бактериальных клеток и свободного ортофосфата в среде. Штамм P. chlororaphis ПГ7 такой способностью не обладал: несмотря на увеличение численности, за учетный период не наблюдалось заметного накопления осадка бактериальных клеток и свободного ортофосфата в среде. Показано, что при культивировании на жидкой среде PSM оба штамма активно росли, очевидно, используя глюкозу в качестве источника углерода и энергии. В этих усло

Еще

Фосфатмобилизующая способность, agrobacterium radiobacter, pseudomonas chlororaphis, фитаты, трикальцийфосфат, гидроксиапатит, элективные питательные среды, иммобилизованный фосфор, ортофосфат

Короткий адрес: https://sciup.org/142234462

IDR: 142234462

Список литературы Изучение фосфатмобилизующей способности штаммов Agrobacterium radiobacter 10 и Pseudomonas chlororaphis ПГ7 in vitro

  • Полевой В.В. Физиология растений. М., 1989.
  • Lambers H., Chapin F.S., Pons T.L. Plant Physiological Ecology. Second edition. Springer, New York, 2008.
  • Marschner H. Mineral nutrition of higher plants. Academic Press, London, 1995 (doi: 10.1016/B978-0- 12-473542-2.X5000-7).
  • Karandashov V., Bucher M. Symbiotic phosphate transport in arbuscular mycorrhizas. Trends in Plant Science, 2005, 10(1): 22-29 (doi: 10.1016/j.tplants.2004.12.003).
  • Casieri L., Lahmidi N.A., Doidy J., Veneault-Fourrey C., Migeon A., Bonneau L., Courty P. E., Garcia K., Charbonnier M., Delteil A., Brun A., Zimmermann S., Plassard C., Wipf D. Bio-trophic transportome in mutualistic plant-fungal interactions. Mycorrhiza, 2013, 23(8): 597-625 (doi: 10.1007/s00572-013-0496-9).
  • Ганжара Н.Ф. Почвоведение с основами геологии. М., 2013.
  • Шеуджен А.Х. Агрохимия. Ч. 4. (фундаментальная агрохимия: учебное пособие. Краснодар, 2016.
  • Richardson A.E., Lynch J.P., Ryan P.R., Delhaize E., Smith F.A., Smith S.E., Harvey P.R., Ryan M.H., Veneklaas E.J., Lambers H., Oberson A., Culvenor R.A., Simpson R.J. Plant and microbial strategies to improve the phosphorus efficiency of agriculture. Plant and Soil, 2011, 349: 121-156 (doi: 10.1007/s11104-011-0950-4).
  • Шапошников А.И., Белимов А.А., Кравченко Л.В., Виванко Д.М. Взаимодействие ризо-сферных бактерий с растениями: механизмы образования и факторы эффективности ассоциативных симбиозов (обзор). Сельскохозяйственная биология, 2011, 3: 16-22.
  • Goldstein A.H. Bacterial solubilization of mineral phosphates: historical perspective and future prospects. American Journal of Alternative Agriculture, 1986, 1(2): 51-57 (doi: 1010.1017/S0889189300000886).
  • Gopalakrishnan S., Sathya A., Vijayabharathi R., Varshney R.K., Laxmipathi Gowda C.L., Krish-namurthy L. Plant growth promoting rhizobia: challenges and opportunities. 3 Biotech, 2015, 5: 355-377 (doi: 10.1007/s13205-014-0241-x).
  • Jinturkar B.P. An application of phosphate solubilization by rhizobium strains: a study. Accent Journal of Economics Ecology & Engineering, 2016, 1(5): 1-3.
  • Oteino N., Lally R.D., Kiwanuka S., Lloyd A., Ryan D., Germaine K.J., Dowling D.N. Plant growth promotion induced by phosphate solubilizing endophytic Pseudomonas isolates. Frontiers in Mycrobiology, 2015, 6(745): 1-9 (doi: 10.3389/fmicb.2015.00745).
  • Liu M., Liu X., Cheng B.-S., Ma X.-L., Lyu X.-T., Zhao X.-F., Ju Y.-L., Min Z., Fang Y.-L. Selection and evaluation of phosphate-solubilizing bacteria from grapevine rhizospheres for use as bio-fertilizers. Spanish Journal of Agricultural Research, 2016, 14(4): e1106 (doi: 10.5424/sjar/2016144-9714).
  • Mohandas S., Poovarasan S., Panneerselvam P., Saritha B., Upreti K.K., Kamal R., Sita T. Guava (Psidium guajava L.) rhizosphere Glomus mosseae spores harbor actinomycetes with growth promoting and antifungal attributes. Scientia Horticulturae, 2013, 150: 371-376 (doi: 10.1016/j.sci-enta.2012.11.019).
  • Battini F., Cristani C., Giovannetti M., Agnolucci M. Multifunctionality and diversity of cultura-ble bacterial communities strictly associated with spores of the plant beneficial symbiont Rhizoph-agus intraradices. Microbiological Research, 2016, 183: 68-79 (doi: https://doi.org/10.1016/j.mi-cres.2015.11.012).
  • Возбуцкая А.Е. Химия почвы. М., 1968.
  • Sparvoli F., Cominelli E. Biofortification and phytic acid reduction: a conflict of interest for the plant? Plants, 2015, 4(4): 728-755 (doi: 10.3390/plants4040728).
  • Балабан Н.П., Сулейманова А.Д., Валеева Л.Р., Шакиров Е.В., Шарипова М.Р. Структурные особенности и механизмы катализа p-пропеллерных фитаз бацилл (обзор). Биохимия, 2016, 81(8): 1011-1020.
  • Oh B.-C., Choi W.-C., Park S.-C., Kim Y.-O., Oh T.-K. Biochemical properties and substrate specificities of alkaline and histidine acid phytases. Applied Microbiology and Biotechnology, 2004, 63: 362-372 (doi: 10.1007/s00253-003-1345-0).
  • Lei X.G., Porres J.M. Phytase: an enzyme to improve soybean nutrition. In: Soybean and nutrition /H.A. El-Shemy (ed.). InTech, Rijeka, Croatia, 2011 (doi: 10.5772/20128).
  • Jorquera M., Martinez O., Maruyama F., Marschner P., de la Luz Mora M. Current and future biotechnological applications of bacterial phytases and phytase producing bacteria. Microbes and Environments, 2008, 23(3): 182-191 (doi: 10.1264/jsme2.23.182).
  • Мухаметзянова А.Д., Ахметова А.И., Шарипова М.Р. Микроорганизмы как продуценты фитаз. Микробиология, 2012, 81(3): 291-300.
  • Hayatsu M. Utilization of phytic acid by cooperative interaction in rhizosphere. Microbes and Environments, 2013, 28(1): 1-2 (doi: 10.1264/jsme2.ME2801rh).
  • Lei X.G., Porres J.M., Mullaney E.J., Brinch-Pedersen H. Phytase: source, structure and application. In: Industrial Enzymes. Structure, Function and Applications /J. Polaina, A.P. Maccabe (eds.). Springer, Dordrecht, 2007: 505-529 (doi: 10.1007/1-4020-5377-0_29).
  • Jatuwong K., Suwannarach N., Kumla J., Penkhrue W., Kakumyan P., Lumyong S. Bioprocess for production, characteristics and biotechnological applications of fungal phytases. Frontiers in Microbiology, 2020, 11: 188 (doi: 10.3389/fmicb.2020.00188).
  • Quan Ch., Zhang L., Wang Y., Ohta Y. Production of phytase in a low phosphate medium by a novel yeast Candida krusei. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2001, 92(2): 154-160 (doi: 10.1016/S1389-1723(01)80217-6).
  • Demirkan E., Baygin E., Usta A. Screening of phytate hydrolysis Bacillus sp. isolated from soil and optimization of the certain nutritional and physical parameters on the production of phytase. Turkish Journal of Biochemistry, 2014, 39(2): 206-214 (doi: 10.5505/TJB.2014.26817).
  • Onawola O.O., Akande I.S., Okunowo W.O., Osuntoki A.A. Isolation and identification of phytase-producing Bacillus and Enterobacter species from Nigerian soils. Nigeria Journal of Biotechnology, 2019, 36(2): 127-138 (doi: 10.4314/njb.v36i2.13).
  • Мухаметзянова А.Д., Маренова И.О., Шарипова М.Р. Получение и характеристика бацилл с инактивированным геном фитазы. Микробиология, 2013, 82(1): 52-58.
  • Hill J.E., Kysela D., Elimelech M. Isolation and assessment of phytate-hydrolysing bacteria from the DelMarVa Peninsula. Environmental Microbiology, 2007, 9(12): 3100-3107 (doi: 10.1111/j.1462-2920.2007.01420.x).
  • Терещенко Н.Н. Биоудобрения на основе микроорганизмов: уч. пос. Томск, 2003.
  • Unno Y., Okubo. K., Wasaki J., Shinano T., Osaki M. Plant growth promotion abilities and microscale bacterial dynamics in the rhizosphere of Lupin analysed by phytate utilization ability. Environmental Microbiology, 2005, 7(3): 396-404 (doi: 10.1111/J.1462-2920.2004.00701.X).
  • Balaban N.P., Suleimanova A.D., Valeeva L.R., Chastukhina I.B., Rudakova N.L., Sharipova M.R., Shakirov E.V. Microbial phytases and phytate: exploring opportunities for sustainable phosphorus management in agriculture. American Journal of Molecular Biology, 2017, 7(1): 11-29 (doi: 10.4236/ajmb.2017.71002).
  • Yoshida K., Yamaguchi M., Morinaga T., Kinehara M., Ikeuchi M., Ashida H., Fujita Y. myoinositol catabolism in Bacillus subtilis. Journal of Biological Chemistry, 2008, 283(16): 10415-10424 (doi: 10.1074/jbc.M708043200).
  • Rodriguez H., Fraga R. Phosphate solubilizing bacteria and their role in plant growth promotion. Biotechnology Advances, 1999, 17(4-5): 319-339 (doi: 10.1016/S0734-9750(99)00014-2).
  • Philippot L., Raaijmakers J.M., Lemanceau P., van der Putten W.H. Going back to the roots: the microbial ecology of the rhizosphere. Nature Reviews Microbiology, 2013, 11: 789-799 (doi: 10.1038/nrmicro3109).
  • Pérez-García A., Romero D., de Vicente A. Plant protection and growth stimulation by microorganisms: biotechnological application of Bacilli in agriculture. Current Opinion in Biotechnology, 2011, 22(2): 187-193 (doi: 10.1016/j.copbio.2010.12.003).
  • Krinke O., Novotná Z., Valentová O., Martinec J. Inositol trisphosphate receptor in higher plants: is it real? Journal of Experimental Botany, 2007, 58(3): 361-376 (doi: 10.1093/jxb/erl220).
  • Johnson T.D. Use of synergistic microorganisms and nutrients to produce signals that facilitate the germination and plant root colonization of mycorrhizal fungi in phosphorus rich environments. United States Patent No.: US 9,017.442 B2. Date of Patent: Apr. 28, 2015.
  • Павлова В.Ф., Муромцев Г.С., Гетманская О.И. Штамм бактерий Agrobacterium radiobacter ВНИИСХМ-10 для получения удобрения под овощные культуры. База патентов СССР, № патента: 1756318. Всесоюзный научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии. Заявка 4665197 23.03.1989. МПК: C05F 11/08, C12N 1/20. Опубл. 23.08.1992.
  • Кожемяков А.П., Белоброва С.Н., Орлова А.Г. Создание и анализ базы данных по эффективности микробных биопрепаратов комплексного действия. Сельскохозяйственная биология, 2011, 3: 112-115.
  • Методические указания по выделению микроорганизмов, растворяющих труднодоступные минеральные и органические соединения фосфора /Под ред. Г.С. Муромцева. Ленинград, 1981.
  • Sasirekha B., Bedashree T., Champa Kl. Optimization and partial purification of extracellular phytase from Pseudomonas aeruginosa p6. European Journal of Experimental Biology, 2012, 2(1): 95-104.
  • Nautiyal C.S. An efficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms. FEMS Microbiology Letters, 1999, 170(1): 265-270 (doi: 10.1111/j.1574-6968.1999.tb13383.x).
  • Агрохимические методы исследования почв /Под ред. А.В. Соколова. М., 1975.
  • Rodriguez J.B., Self J.R., Soltanpour P.N. Optimal conditions for phosphorus analysis by the ascorbic acid-molybdenum blue method. Soil Sciens Society of America Journal, 1994, 58(3): 866870 (doi: 10.2136/sssaj1994.03615995005800030034x).
  • Гинзбург К.Е., Щеглова Г.М. Определение азота, фосфора и калия в растительном материале из одного образца. Почвоведение, 1960, 5: 100-105.
  • Доспехов Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). М., 1973.
  • Sasirekha, B., Bedashree T., Champa Kl. Statistical optimization of medium components for improved phytase production by Pseudomonas aeruginosa. International Journal of ChemTech Research, 2012, 4(3): 891-895.
  • Bogar B., Szakacs G., Pandey A., Abdulhameed S., Linden J.C., Tengerdy R.P. Production of phytase by Mucor racemosus in solid-state fermentation. Biotechnology Progress, 2003, 19(2): 312319 (doi: 10.1021/bp020126v).
  • Singh N.K., Joshi D.K., Gupta R.K. Isolation of phytase producing bacteria and optimization of phytase production parameters. Jundishapur Journal of Microbiology, 2013, 6(5): 6419 (doi: 10.5812/jjm.6419).
  • Klykova M.V., Dunajtsev I.A., Zhigletsova S.K., Kondrashenko T.N., Lev I.O., Sosna I. M., Torgonina I.V., Varlamova T.A. Phosphate-dissolving strain Pseudomonas chlororaphis ssp chlorora-phis vsk-26a3 with fungicidal and bactericidal activity. Russian Federation Patent No.: RU 2 603 281(13) C1. Date of publication: 27.11.2016. Bull. № 33.
  • Справочник химика 21. Фитиновая кислота. Режим доступа: https://www.chem21.info/. Без даты.
  • Bae H.D., Yanke L.J, Cheng K.-J., Selinger L.B. A novel staining method for detecting phytase activity. Journal of Microbiological Methods, 1999, 39(1): 17-22 (doi: 10.1016/S0167-7012(99)00096-2).
Еще
Статья научная