Изучение ридостина Про и Poly(I:C) в качестве адъювантов, усиливающих иммуногенность противоопухолевой вакцины

Изучение ридостина Про и Poly(I:C) в качестве адъювантов, усиливающих иммуногенность противоопухолевой вакцины

Автор: Пономарев А.В., Царапаев П.В., Барышникова М.А., Соколова З.А., Рудакова А.А., Миронова М.В., Гусев Д.В., Левагина Г.М., Даниленко Е.Д., Косоруков В.С.

Журнал: Сибирский онкологический журнал @siboncoj

Рубрика: Лабораторные и экспериментальные исследования

Статья в выпуске: 3 т.23, 2024 года.

Бесплатный доступ

Цель исследования - сравнить противоопухолевую эффективность и иммуногенность вакцин с одинаковыми антигенами, но разными адъювантами: Ридостин Про или Poly(I:C); оценить влияние Ридостина Про и Poly(I:C) на цитокиновый профиль сыворотки и иммунофенотип клеток селезенки мышей. материал и методы. Для оценки противоопухолевой эффективности вакцин с различающимися адъювантами применяли две перевиваемые линии опухолей: меланома В16-F10 и лимфома EG7-OVA (экспрессирующая овальбумин) для мышей C57BL/6. Против меланомы В16-F10 проводили вакцинацию пептидом TRP2 180-188 с исследуемыми адъювантами в смешанном (профилактический/терапевтический) и терапевтическом режимах. Против лимфомы EG7 проводили вакцинацию овальбумином с адъювантами в терапевтическом режиме. Иммуногенность вакцин с различающимися адъювантами на мышах без опухолей оценивали методом ELISPOТ. Антигенами в данном случае также служили пептид TRP2 180-188 и белок овальбумин. С помощью проточной цитометрии исследовали цитокиновый профиль сыворотки крови и изменения иммунофенотипа клеток селезенки мышей после введения Ридостина Про или Poly(I:C).

Еще

Противоопухолевые вакцины, адъюванты, антигены, ридостин, poly(i:c), пептиды, доклинические исследования

Короткий адрес: https://sciup.org/140305929

IDR: 140305929   |   DOI: 10.21294/1814-4861-2024-23-3-86-99

Список литературы Изучение ридостина Про и Poly(I:C) в качестве адъювантов, усиливающих иммуногенность противоопухолевой вакцины

  • Blass E., Ott P.A. Advances in the development of personalized neoantigen-based therapeutic cancer vaccines. Nat Rev Clin Oncol. 2021; 18(4): 215-29. https://doi.org/10.1038/s41571-020-00460-2.
  • Lybaer L., ThielemansK., FeldmanS.A, van der BurgS.H., Bogaert C., Ott P.A. Neoantigen-directed therapeutics in the clinic: where are we? Trends Cancer. 2023; 9(6): 503-19. https://doi.org/10.1016/j.trecan.2023.02.004.
  • Gouttefangeas C., Rammensee H.G. Personalized cancer vaccines: adjuvants are important, too. Cancer Immunol Immunother. 2018; 67(12): 1911-8. https://doi.org/10.1007/s00262-018-2158-4.
  • de Faria I.J., Olmo R.P., Silva E.G., Marques J.T. dsRNA sensing during viral infection: lessons from plants, worms, insects, and mammals. J. Interferon Cytokine Res. 2013; 33(5): 239-53. https://doi.org/10.1089/jir.2013.0026.
  • Hur S. Double-Stranded RNA Sensors and Modulators in Innate Immunity. Annu Rev Immunol. 2019; 37: 349-75. https://doi.org/10.1146/annurevimmunol-042718-041356.
  • Matsumoto M., Seya T. TLR3: interferon induction by doublestranded RNA including poly(I:C). Adv Drug Deliv Rev. 2008; 60(7): 805-12. https://doi.org/10.1016/j.addr.2007.11.005.
  • Ammi R., De Waele J., Willemen Y., Yan Brussel I., Schrijvers D.M., Lion E., Smits E.L.J. Poly(I:C) as cancer vaccine adjuvant: knocking on the door of medical breakthroughs. Pharmacol Ther. 2015; 146: 120-31. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2014.09.010.
  • Jasani B., Navabi H., Adams M. Ampligen: a potential toll-like 3 receptor adjuvant for immunotherapy of cancer Vaccine. 2009; 27(25-26): 3401-4. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2009.01.071.
  • Sultan H., Fesenkova V.I., Addis D., Fan A.E., Kumai T., Wu J., Salazar A.M., Celis E. Designing therapeutic cancer vaccines by mimicking viral infections. Cancer Immunol Immunother. 2017; 66(2): 203-13. https://doi.org/10.1007/s00262-016-1834-5.
  • Akazawa T., Ebihara T., Okuno M., Okuda Y., Shingai M., Tsujimura K., Takahashi T., Ikawa M., Okabe M., Inoue N., Okamoto-Tanaka M., Ishizaki H., Miyoshi J., Matsumoto M., Seya T. Antitumor NK activation induced by the Toll-like receptor 3-TICAM-1 (TRIF) pathway in myeloid dendritic cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007; 104(1): 252-7. https://doi.org/10.1073/pnas.0605978104.
  • Azuma M., Ebihara T., Oshiumi H., Matsumoto M., Seya T. Crosspriming for antitumor CTL induced by soluble Ag + polyI:C depends on the TICAM-1 pathway in mouse CD11c(+)/CD8α(+) dendritic cells. Oncoimmunology. 2012; 1(5): 581-92. https://doi.org/10.4161/onci.19893.
  • Robinson R.A., DeVita V.T., Levy H.B., Baron S., Hubbard S.P., Levine A.S. A phase I-II trial of multiple-dose polyriboinosic-polyribocytidylic acid in patieonts with leukemia or solid tumors. J Natl Cancer Inst. 1976; 57(3): 599-602. https://doi.org/10.1093/jnci/57.3.599.
  • Levy H.B., Baer G., Baron S., Buckler C.E., Gibbs C.J., Iadarola M.J., London W.T., Rice J. A modified polyriboinosinic-polyribocytidylic acid complex that induces interferon in primates. J Infect Dis. 1975; 132(4): 434-9. https://doi.org/10.1093/infdis/132.4.434.
  • Salazar A.M., Levy H.B., Ondra S., Kende M., Scherokman B., Brown D., Mena H., Martin N., Schwab K., Donovan D., Dougherty D., Pulliam M., Ippolito M., Graves M., Brown H., Ommaya A. Long-term treatment of malignant gliomas with intramuscularly administered polyinosinic-polycytidylic acid stabilized with polylysine and carboxymethylcellulose: an open pilot study. Neurosurgery. 1996; 38(6): 1096-103; discussion 1103-4.
  • De Waele J., Verhezen T., van der Heijden S., Berneman Z.N., Peeters M., Lardon F., Wouters A., Smits E.L.J.M. A systematic review on poly(I:C) and poly-ICLC in glioblastoma: adjuvants coordinating the unlocking of immunotherapy. J Exp Clin Cancer Res. 2021; 40(1): 213. https://doi.org/10.1186/s13046-021-02017-2.
  • Ott P.A., Hu Z., Keskin D.B., Shukla S.A., Sun J., Bozym D.J., Zhang W., Luoma A., Giobbie-Hurder A., Peter L., Chen C., Olive O., Carter T.A., Li Sh., Lieb D.J., Eisenhaure T., Gjini E., Stevens J., Lane W.J., Javeri I., Nellaiappan K., Salazar A., Daley H., Seaman M., Buchbinder E.I., Yoon C.H., Harden M., Lennon N., Gabriel S., Rodig S.J., Barouch D.H., Aster J.C., Getz G., Wucherpfennig K., Neuberg D., Ritz J., Lander E.S, Fritsch E.F., Hacohen N., Wu C.J. An Immunogenic Personal Neoantigen Vaccine for Melanoma Patients. Nature. 2017; 547(7662): 217-21. https://doi.org/10.1038/nature22991.
  • Ott P.A., Hu-Lieskovan S., Chmielowski B., Govindan R., Naing A., Bhardwaj N., Margolin K., Awad M.M., Hellmann M.D., Lin J.J., Friedlander T., Bushway M.E., Balogh K.N., Sciuto T.E., Kohler V., Turnbull S.J., Besada R., Curran R.R., Trapp B., Scherer J., Poran A., Harjanto D., Barthelme D., Ting Y.S., Dong J.Z., Ware Y., Huang Y., Huang Z., Wanamaker A., Cleary L.D., Moles M.A., Manson K., Greshock J., Khondker Z.S., Fritsch E., Rooney M.S., DeMario M., Gaynor R.B., Srinivasan L. A Phase Ib Trial of Personalized Neoantigen Therapy Plus Anti-PD-1 in Patients with Advanced Melanoma, Non-small Cell Lung Cancer, or Bladder Cancer. Cell. 2020; 183(2): 347-62. https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.08.053.
  • Baryshnikova M.A., Ponomarev A.V., Rudakova A.A., Sokolova Z.A., Golubtsova N.V., Tsarapaev P.V., Levagina G.M., Danilenko E.D., Kosorukov V.S. Sravnenie Ridostina Pro i Poly(I:C) v kachestve ad"yuvanta dlya protivoopukholevoi neoantigennoi vaktsiny. Rossiiskii bioterapevticheskii zhurnal. 2022; 21(3): 82-9. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2022-21-3-82-89.
  • Kaplina O.N., Gamalei S.G., Ivanova O.S., Danilenko E.D. Dvuspiral'nye RNK - perspektivnye ad"yuvanty dlya povysheniya immunogennosti vaktsin. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii. 2022; 99(6): 661-8. https://doi.org/10.36233/0372-9311-342.
  • Bloom M.B., Perry-Lalley D., Robbins P.F., Li Y., el-Gamil M., Rosenberg S.A., Yang J.C. Identification of tyrosinase-related protein 2 as a tumor rejection antigen for the B16 melanoma. J Exp Med. 1997; 185(3): 453-9. https://doi.org/10.1084/jem.185.3.453.
  • Ponomarev A.V., Rudakova A.A., Sokolova Z.A., Baryshnikova M.A., Kosorukov V.S. Vliyanie Poly(I:C) i melanomy V16-F10 na immunofenotip kletok selezenki myshei. Rossiiskii bioterapevticheskii zhurnal 2021; 20(4): 51-8. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2021-20-4-51-58.
  • Castle J.C., Kreiter S., Diekmann J., Lower M., van de Roemer N., de Graaf J., Selmi A., Diken M., Boegel S., Paret C., Koslowski M., Kuhn A.N., Britten C.M., Huber C., Tureci O., Sahin U. Exploiting the mutanome for tumor vaccination. Cancer Res. 2012; 72(5): 1081-91. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-11-3722.
  • Lam H., McNeil L.K., Starobinets H., Cohen R.B., Twardowski P., Johnson M.L., Gillison M.L., Stein M.N., Vaishampayan U.N., DeCillis A.P., Foti J.J., Vemulapalli V., Tjon E., Ferber K., DeOliveira D.B., Broom W., Agnihotri P., Jaffee E.M., Wong K.K., Drake C.G., Carroll P.M., Davis T.A., Flechtner J.B. An Empirical Antigen Selection Method Identifies Neoantigens That Either Elicit Broad Antitumor T-cell Responses or Drive Tumor Growth. Cancer Discov. 2021; 11(3): 696-713. https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-20-0377.
  • Heil F., Hemmi H., Hochrein H., Kirschning C., Akira S., Lipford G., Wagner H., Bauer S. Species-specific recognition of single-stranded RNA via toll-like receptor 7 and 8. Science. 2004; 303(5663): 1526-9. https://doi.org/10.1126/science.1093620.
  • Levine A.S., Levy H.B. Phase I-II trials of poly IC stabilized with poly-L-lysine. Cancer Treat Rep. 1978; 62(11): 1907-12.
  • Takeda Y., Kataoka K., Yamagishi J., Ogawa S., Seya T., Matsumoto M. A TLR3-Specific Adjuvant Relieves Innate Resistance to PD-L1 Blockade without Cytokine Toxicity in Tumor Vaccine Immunotherapy. Cell Rep. 2017; 19(9): 1874-87. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2017.05.015.
  • Cossarizza A., Chang H.-D., Radbruch A. et al. Guidelines for the use of flow cytometry and cell sorting in immunological studies (second edition). Eur J Immunol. 2019; 49(10): 1457-973. https://doi.org/10.1002/eji.201970107.
  • Bahl K., Hüebner A., Davis R.J., Welsh R.M. Analysis of apoptosis of memory T cells and dendritic cells during the early stages of viral infection or exposure to toll-like receptor agonists. J Virol. 2010; 84(10): 4866-77. https://doi.org/10.1128/JVI.02571-09.
  • Tough D.F., Borrow P., Sprent J. Induction of bystander T cell proliferation by viruses and type I interferon in vivo. Science. 1996; 272(5270): 1947-50. https://doi.org/10.1126/science.272.5270.1947.
  • Bardhan K., Anagnostou T., Boussiotis V.A. The PD1:PD-L1/2 Pathway from Discovery to Clinical Implementation Front Immunol. 2016; 7: 550. https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00550.
  • Kythreotou A., Siddique A., Mauri F.A. Bower M., Pinato D.J. PD-L1. J Clin Pathol. 2018; 71(3): 189-94. https://doi.org/10.1136/jclinpath-2017-204853.
  • Kinter A.L., Godbout E.J., McNally J.P. Sereti I., Roby G.A., O’Shea M.A., Fauci A.S. The common gamma-chain cytokines IL-2, IL-7, IL-15, and IL-21 induce the expression of programmed death-1 and its ligands. J Immunol. 2008; 181(10): 6738-46. https://doi.org/10.4049/jimmunol.181.10.6738.
  • Cibrián D., Sánchez-Madrid F. CD69: from activation marker to metabolic gatekeeper. Eur J Immunol. 2017; 47(6): 946-53. https://doi.org/10.1002/eji.201646837.
  • Testi R., Phillips J.H., Lanier L.L. T cell activation via Leu-23 (CD69). J Immunol. 1989; 143(4): 1123-8.
  • Esplugues E., Sancho D., Vega-Ramos J., Martínez C., Syrbe U., Hamann A., Engel P., Sánchez-Madrid F., Lauzurica P. Enhanced antitumor immunity in mice deficient in CD69. J Exp Med. 2003; 197(9): 1093-106. https://doi.org/10.1084/jem.20021337.
  • Radulovic K., Manta C., Rossini V., Holzmann K., Kestler H.A., Wegenka U.M., Nakayama T., Niess J.H. CD69 regulates type I IFNinduced tolerogenic signals to mucosal CD4 T cells that attenuate their colitogenic potential. J Immunol. 2012; 188(4): 2001-13. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1100765.
  • Shiow L.R., Rosen D.B., Brdicková N., Xu Y., An J., Lanier L.L., Cyster J.G., Matloubian M. CD69 acts downstream of interferon-alpha/beta to inhibit S1P1 and lymphocyte egress from lymphoid organs. Nature. 2006; 440(7083): 540-4. https://doi.org/10.1038/nature04606.
  • Walzer T., Bléry M., Chaix J., Fuseri N., Chasson L., Robbins S.H., Jaeger S., André P., Gauthier L., Daniel L., Chemin K., Morel Y., Dalod M., Imbert J., Pierres M., Moretta A., Romagné F., Vivier E. Identification, activation, and selective in vivo ablation of mouse NK cells via NKp46. Proc Natl Acad Sci USA. 2007; 104(9): 3384-9. https://doi.org/10.1073/pnas.0609692104.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp