Эффективность препарата протостоп при диареях смешанной паразитарно-бактериальной этиологии у молодняка крупного рогатого скота

Эффективность препарата протостоп при диареях смешанной паразитарно-бактериальной этиологии у молодняка крупного рогатого скота

Автор: Енгашев С.В., Белова Л.М., Гаврилова Н.А., Забровская А.В., Смирнова Л.И., Енгашева Е.С., Дьячкова Ю.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Ветеринария

Статья в выпуске: 2 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

При выращивании крупного рогатого скота серьезной проблемой остаются болезни желудочно-кишечного тракта (ЖКТ) молодняка с диарейным синдромом, распространенные практически повсеместно и охватывающие большую часть поголовья. Достаточно часто диагностируют болезни ЖКТ телят паразитарно-бактериальной, паразитарно-вирусной этиологии, в том числе комбинации Cryptosporidium spp. с Escherichia coli , энтеробактериями родов Salmonella , Klebsiella. В таких случаях оптимально использование препаратов широкого спектра, обладающих антимикробным и противопротозойным действием. В настоящей работе впервые показано воздействие препарата, содержащего паромомицина сульфат, на возбудителей болезней ЖКТ телят как паразитарного, так и бактериального происхождения. Установлена минимальная ингибирующая концентрация (МИК) сульфата паромомицина для возбудителей болезней ЖКТ телят бактериальной этиологии: Salmonella Dublin, Escherichia coli с гемолитическими свойствами, Klebsiella pneumoniae , Proteusvulgaris , Citrobacer freundii . Нашей целью было изучение терапевтической эффективности препарата Протостоп (д.в. сульфат паромомицина) при болезнях желудочно-кишечного тракта с диарейным синдромом у телят. Исследования проводили в июле-августе 2021 года (животноводческий комплекс, Ленинградская обл., Ломоносовский р-н) на молодняке крупного рогатого скота ( Bos taurus ) черно-перстной породы в возрасте до 5 мес (масса от 30 до 50 кг). Из прямой кишки телят с клиническими признаками нарушения функции ЖКТ брали пробы фекалий (20-40 г). Для обнаружения ооцист Cryptosporidium spp. готовили мазки на предметном стекле, которые окрашивали с использованием набора реагентов Диахим-Набор для окрашивания по Цилю-Нильсену (НПФ «Абрис+», Россия) и исследовали (микроскоп Primo Star, «Carl Zeizz», Германия). Для установления количественного и видового состава энтеробактерий 10-кратные разведения фекалий в физиологическом растворе высевали по 0,05 мл на питательную среду Эндо (ООО «Научно-исследовательский центр фармакотерапии», Россия). Для оценки терапевтической эффективности препарата Протостоп (порошок, в 1 г препарата содержится 100 мг сульфата паромомицина; ООО «НВЦ Агроветзащита», Россия) отбирали животных, в фекалиях которых были обнаружены ооцисты Cryptosporidium spp., штаммы гемолитической E. coli и условно-патогенных микроорганизмов. Сформировали 5 групп животных по 10 гол. в каждой. Телятам из 1-4-й групп (опыт) давали препарат Протостоп индивидуально перорально один раз в сутки. Перед применением разовую дозу препарата растворяли в воде, добавляя жидкость к порошку. Животные из 1-й группы получали препарат в дозе 250 мг/кг массы животного в течение 3 сут, телятам из 2-й группы давали препарат в той же дозе в течение 5 сут. Животные в 3-й и 4-й группах получали Протостоп в дозе 350 мг/кг массы соответственно в течение 3 и 5 сут. Телятам из контрольной группы была проведена терапия препаратом-аналогом (Парофор 70, порошок, в 1,0 г препарата содержится 100,0 мг сульфата паромомицина; «Biovet AD», Болгария). Препарат применяли в дозе 350 мг/кг массы тела перорально 1 раз в сутки в течение 5 сут. При клиническом осмотре на 3-и, 5-е, 10-е и 14-е сут от начала приема препаратов оценивали общее состояние животных, потребление ими воды и корма, изменения функции ЖКТ, состояние слизистых оболочек и шерстного покрова. Копрологические исследования на наличие ооцист Cryptosporidium spp. проводили на 8-е и 12-е сут лечения, бактериологические - на 10-е сут после окончания лечения. Состояние животных всех групп оценивали на основании общего анализа крови. МИК сульфата паромомицина - действующего вещества препарата Протостоп определяли методом серийных разведений согласно ГОСТ Р ИСО 20776-1-2010. Штаммы, для которых МИК сульфата паромомицина не превышала 4 мкг/мл, относили к чувствительным, выше 4 мкг/мл - к резистентным. При паразитологическом исследовании в фекалиях телят в поле зрения микроскопа находилось более 25 ооцист Cryptosporidium spp., что свидетельствует о высокой интенсивности инвазии. При бактериологическом исследовании были обнаружены штаммы Escherichia coli , обладающие гемолитической активностью, и другие штаммы условно-патогенной микрофлоры. После использования препарата у всех телят подопытных групп отмечалось значительное улучшение общего состояния: животные стали более активными, диарея прекратилась, фекальные массы приобрели кашицеобразную консистенцию, характерную для фекалий крупного рогатого скота. Препарат Протостоп в дозе 350 мг/кг массы животного, применяемый перорально с водой 1 раз в сутки в течение 5 сут, имел выраженное терапевтическое действие. Через 8 сут после начала лечения по указанной схеме в фекалиях отсутствовали ооцисты Cryptosporidium spp., через 10 сут после окончания лечения штаммы гемолитической Escherichia coli и других условно-патогенных энтеробактерий отсутствовали в разведении фекалий 1:10.

Еще

Паромомицин, криптоспоридиоз, минимальная ингибирующая концентрация, escherichia coli, телята, болезни желудочно-кишечного тракта

Короткий адрес: https://sciup.org/142242465

IDR: 142242465   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.2.355rus

Список литературы Эффективность препарата протостоп при диареях смешанной паразитарно-бактериальной этиологии у молодняка крупного рогатого скота

  • Cho Y.-I., Yoon K.-J. An overview of calf diarrhea — infectious etiology, diagnosis, and inter-vention. J. Vet. Sci., 2014, 15(1): 1-17 (doi: 10.4142/jvs.2014.15.1.1).
  • Климова Е.С., Мкртчян М.Э., Максимова Е.В., Решетникова А.Д. Сезонно-возрастная динамика эймериоза и криптоспоридиоза крупного рогатого скота. Международный вестник ветеринарии, 2020, 3: 24-29 (doi: 10.17238/issn2072-2419.2020.3.24).
  • Мусаева М.Н., Будулов Н.Р., Абдулмагомедов С.Ш., Мусаев З.Г. Криптоспоридиоз при иммунодефиците у новорожденных телят Российский паразитологический журнал, 2013, 3: 64-66.
  • Levine N.D. Taxonomy and review of the coccidian genus Cryptosporidium (protozoa, apicom-plexa). The Journal of Protozoology, 1984, 31(1): 94-98 (doi: 10.1111/j.1550-7408.1984.tb04296.x).
  • Верещак Н.А., Порываева А.П., Печура Е.В., Красноперов, А.С. Эймериозная инвазия и формирование общей резистентности у телят. Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии, 2016, 4: 87-90.
  • Кириллов Е.Г. Криптоспоридиоз: общая характеристика и особенности его распространения. Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана, 2014, 1: 128-131.
  • Старикова О.В., Воронкова, Ю.В., Ковширина И.И., Шубина Н.И. Криптоспоридии и макроорганизм: факторы, влияющие на развитие криптоспоридиоза. Вестник Российской академии медицинских наук, 2017, 72(6): 420-427 (doi: 10.15690/vramn888).
  • Chalmers R.M., Davies A.P. Minireview: Clinical cryptosporidiosis. Experimental Parasitology, 2010, 124(1): 138-146 (doi: 10.1016/j.exppara.2009.02.003).
  • Conrady B., Brunauer M., Roch F.-F. Cryptosporidium spp. Infections in combination with other enteric pathogens in the global calf population. Animals, 2021, 11(6): 1786 (doi: 10.3390/ani11061786).
  • Bartels C.J.M., Holzhauer M., Jorritsma R., Swart W.A.J.M., Lam T.J.G.M. Prevalence, prediction and risk factors of entropathogens in normal and non-normal faeces of young Dutch dairy calves. Preventive Veterinary Medicine, 2010, 93(2-3): 162-169 (doi: 10.1016/j.prevetmed.2009.09.020).
  • Delling C., Daugschies A. Literature review: coinfection in young ruminant livestock—Cryptos-poridium spp. and its companions. Pathogens, 2022, 11(1): 103 (doi: 10.3390/pathogens11010103).
  • Lee S.-H., Kim H.-Y., Choi E.W., Kim D. Causative agents and epidemiology of diarrhea in Korean native calves. J. Vet. Sci., 2019, 20(6): e64 (doi: 10.4142/jvs.2019.20.e64).
  • de la Fuente R., Luzon M., Ruiz-Santa-Quitria J.A., Garcı́a A., Cid D., Orden J.A., Garcı́a S., Sanz R., Gomez-Bautista M. Cryptosporidium and concurrent infection with other major entero-pathogens in 1 to 30-day-old diarrheic calves in central Spain. Veterinary Parasitology, 1999, 80(3): 179-185 (doi: 10.1016/s0304-4017(98)00218-0).
  • Brar A.P.S., Sood N.K., Kaur P., Singla L.D., Sandhu B.S., Gupta K., Narang D., Singh C.K., Chandra M. Periurban outbreaks of bovine calf scours in Northern India caused by Cryptosporid-ium in association with other enteropathogens. Epidemiology & Infection, 2017, 145(13): 2717-2726 (doi: 10.1017/S0950268817001224).
  • Cho Y.-I., Han J.-I., Wang C., Cooper V., Schwarz K., Engelken T., Yoon K. Case-control study of microbiological etiology associated with calf diarrhea. Veterinary Microbiology, 2013, 166(3-4): 375-385 (doi: 10.1016/j.vetmic.2013.07.001).
  • Garcı́a A., Ruiz-Santa-Quitria J.A., Cid D., Orden J.A., Sanz R., Gomez-Bautista M., de La Fuente R. Rotavirus and concurrent infection with other enteropathogens in neonatal diarrheic calves dairy calves in Spain. Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Disease, 2000, 23(3): 175-183 (doi: 10.1016/s0147-9571(99)00071-5).
  • Al Mawly J., Grinberg A., Pratelly D., Moffat J., Marshall J., French N. Risk factors for neonatal calf diarrhea and enteropathogen shedding in New Zealand dairy farm. The Veterinary Journal, 2015, 203: 155-160 (doi: 10.1016/j.tvjl.2015.01.010).
  • Hall G.A., Reynolds D.J., Parsons K.R., bland A.P., Morgan J.H. Pathology of calves with diar-rhea in southern Britain. Research in Veterinary Science, 1988, 45(2): 240-250 (doi: 10.1016/S0034-5288(18)30939-1).
  • Göhring F., Möller-Holtkamp P., Daugschies A., Lender M. Co-infection with Cryptosporidium parvum and other enteropathogenes support the occurrence and severity of diarrhea in suckling calves. Tierarztl. Umsch., 2014, 69(4): 112-120.
  • Seabloom E.W., Borer E.T., Gross K., Kending A.E., Lacroix C., Mitchell C.E., Mordecai E.A., Power A.G. The community ecology of pathogens. Coifection, coexistence and community com-position. Ecology Letters, 2015, 18(4): 401-415 (doi: 10.1111/ele.12418).
  • Bartels C.J.M., Holzhauer M., Jorritsma R., Swart W.A.J.M., Lam T.G.G.M. Prevalence, pre-diction and risk factors of enteropathogenes in normal and non-normal faeces of young Dutch dairy calves. Preventive Veterinary Medicine, 2010, 93(2-3): 162-169 (doi: 10.1016/j.prevet-med.2009.09.020).
  • Almawly J., Prattley D., French N.P., Lopez-Villalobos N., Hedgespeth B., Grinberg A. Utility of halofuginone lactate for the prevention of natural cryptosporidiosis of calves, in the presence of co-infection with rotavirus and Salmonella Typhimurium. Veterinary Parasitology, 2013, 197(1-2): 59-67 (doi: 10.1016/j.vetpar.2013.04.029).
  • Miyamoto Y., Eckmann L. Drug development against the major diarrhea-causing parasites of the small intestine, Cryptosporidium and Giardia. Frontiers in Microbiology, 2015, 6: 1208 (doi: 10.3389/fmicb.2015.01208).
  • Masood S., Maqbool A., Khan U.J., Chaudhry Z.I., Anjum A.A. Anti-cryptosporidium activity of albendazole, metronidazole and paromomycin in experimentally infected cattle. Pakistan J. Zool., 2013, 45(4): 935-940.
  • Nasir A., Avais M., Khan M.S., Khan J.A., Hameed S., Reichel M.P. Treating Cryptosporidium parvum infection in calves. Journal of Parasitology, 2013, 99(4): 715-717 (doi: 10.1645/12-42.1).
  • Constable P.D. Treatment of calf diarrhea: antimicrobial and ancillary treatment. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 2009, 25: 101-120 (doi: 10.1016/j.cvfa.2008.10.012).
  • ECDC (European Centre for Disease Prevention and Control), EFSA (European Food Safety Authority), and EMA (European Medicines Agency). ECDC/EFSA/EMA second joint report on the integrated analysis of the consumption of antimicrobial agents and occurrence of antimicrobial resistance in bacteria from humans and food-producing animals — Joint Interagency Antimicro-bial Consumption and Resistance Analysis (JIACRA) Report. EFSA Journal, 2017, 15(7): 4872 (doi: 10.2903/j.efsa.2017.4872).
  • Karaiskos I., Lagou S., Pantikis K., Rapi V., Poulakou G. The “old” and the “new” antibiotics for MDR gram-negative pathogens: from whom, when, and how. Frontiers in Public Health, 2019, 7: 151 (doi: 10.3389/fpubh.2019.00151).
  • Theuretzbacher U., Van Bambeke F., Canton R., Giske Ch. G, Mouton J.W., Nation R.L., Paul M., Turinge J., Kahlmeter G. Reviving old antibiotics. Journal of Antinicrobial Chemotherapy, 2015, 70(8): 2177-2181 (doi: 10.1093/jac/dkv157).
  • Geurden T., Claerebout E., Dursin L., Deflandre A., Bernay F., Kaltsatos V., Vercruysse J. The efficacy of an oral treatment with paromomycin against an experimental infection with Giardia in calves. Veterinary Parasitology, 2006, 135(3-4): 241-247 (doi: 10.1016/j.vetpar.2005.09.006).
  • Практическое руководство по антимикробной химиотерапии /Под ред. Л.С. Страчунского, Ю.Б. Белоусова, С.Н. Козлова. Смоленск, 2007.
  • Heller M.C., Chigerwe M. Diagnosis and treatment of infectious enteritis in neonatal and juvenile ruminants. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice, 2018, 34(1): 101-117 (doi: 10.1016/j.cvfa.2017.08.001).
  • Hu Y., Lui L., Zhang X., Feng Y., Zong Zh. In vitro activity of neomycin, streptomycin, paromomycin and aparmycin against carbapenem-resistant Enterobacteriaceae clinical strains. Frontiers in Microbiology, 2017, 8: 2275 (doi: 10.3389/fmicb.2017.02275).
  • ГОСТ Р 54627-2011. Животные сельскохозяйственные жвачные. Методы лабораторной диагностики гельминтозов. М., 2013.
  • Лабораторная диагностика гельминтозов, протозоозов: методические указания. М., 2014.
  • Голубева И.В., Килессо В.А., Киселева Б.С., Прямухина Н.С., Татаринова С.Д., Хоменко Н.А., Ющенко Г.В. Энтеробактерии: руководство для врачей /Под ред. В.И. Покровского. М., 1985.
  • ГОСТ Р ИСО 20776-1-2010. Клинические лабораторные исследования и диагностические тест-системы in vitro. Исследование чувствительности инфекционных агентов и оценка функциональных характеристик изделий для исследования чувствительности к антимикробным средствам. М., 2011.
  • Забровская А.В., Смирнова Л.И., Шавров С.С. Изучение эффективности применения препарата «Протостоп» при диареях бактериальной этиологии у молодняка крупного рогатого скота. Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии, 2021, 4: 60-63 (doi: 10.52419/issn2072-6023.2021.4.60).
  • Chekole W.S., Adamu H., Sternberg-Lewrein S., Magnusson U., Tessema T.S. Occurrence of Escherichia coli pathotypes in diarrheic calves in a low-income setting. Pathogens, 2023, 12: 42 (doi: 10.3390/pathogens12010042).
  • Конищева А.С., Плешакова В.И., Лещева Н.А. Микробиом кишечника телят при дисбак-териозе. Вестник Омского ГАУ, 3(43), 2021: 70-77 (doi: 10.48136/2222-0364_2021_3_70).
  • Chen W., Matsushita T., Shcherbakov D., Boukari H., Vassela A., Böttger E.C., Crich D. Syn-thesis, antiribosomal and antibacterial activity of 4’-O-glycopyrankisyl paromomycin aminogly-coside antibiotics. Medicinal Chemistry Communication, 2014, 5: 1179-1187 (doi: 10.1039/C4MD00119B).
  • Рекомендации. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препара-там. Версия 2021-01. Режим доступа https://www.antibiotic.ru/files/321/clrec-dsma2021.pdf.
  • Aydogdt U., Isik N., Ekici O.D., Yildiz R., Sen I., Coskun I. Comparison of the effectiveness of halofuginone lactate and parpmomycin in the treatment of calves naturally infected with Cryptos-poridium parvum. Acta Scientiale Veterinariae, 2018, 46(1): 1524 (doi: 10.22456/1679-9216.81809).
  • Hameed O.A. A review of cryptosporidium infection in neonatal lambs and camel calves. Journal of Infectious Diseases & Research, 2020, 3(2): 109-110.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp