Экспериментальное обоснование применения микроволокнистых перевязочных материалов для лечения гнойных ран

Внедрение в клиническую практику современных способов воздействия на рану (вакуумирование, абактериальная среда, медицинские лазеры, средств физической антисептики и т.д.) значительно улучшило результаты оказания хирургического пособия больным с гнойными ранами. Среди них в силу простоты и удобства применения средства физической антисептики продолжают оставаться приоритетом [1].

Отечественной промышленностью выпускается значительное количество новых средств местной терапии ран и ожогов, обуславливающих возможность патогенетически оправданно воздействовать на раневой процесс [4]. Их применение, несомненно, улучшает результаты лечения больных с гнойными ранами различного генеза. Среди них особое место занимают перевязочные материалы, созданные на основе метода электроформирования волокнистых материалов (ЭФВ-процесс). Предполагается, что микрово-локнистые перевязочные материалы с наносоразмерными диаметрами волокон и межволоконных пространств будут обладать повышенной сорбционной активностью, атрав-матичностью, отсутствием ворсистости, теплозащитными и изолирующими свойствами [2, 3]. В то же время работы, посвященные обоснованию применения данных раневых покрытий для лечения гнойных ран, единичные. В связи с чем, мы поставили перед собой следующую цель – улучшить результаты лечения экспериментальных гнойных ран с помощью применения новых микроволокнистых раневых покрытий, полученных методом электроформирования.

Материалы и методы исследования

Исследованию подлежали перевязочные материалы на основе прядильного раствора, состоящего из полимеров диацетат целлюлозы (ДАЦ) и поливинилпирролидон (ПВП). Микроволнистые раневые покрытия изготовили в НИФХИ им. Л.Я. Карпова, г. Москва.

Применяли микроволокнистые перевязочные средства диальдегид целлюлозы+поливинилпироллидон в соотношениях 3:1; 2:2; 4:1 и 5:1 (ДАЦПВП 3:1; ДАЦПВП 2:4; ДАЦПВП 4:1; ДАЦПВП 5:1), отличающихся; поверхностной плотностью и диаметром волокон. Контролем в исследовании служило хорошо зарекомендовавшее себя нетканое гигроскопическое раневое покрытие «Медитекс».

Дизайн предполагал разделение исследования на два этапа. Первый этап работы в условиях in vitro выполнили с целью выбора перевязочных материалов, наиболее перспективных для использования в качестве средств изготовления первичных повязок. Отбор перевязочных материалов с лучшими функциональными свойствами осуществляли с учетом следующих физико-механических показателей: вла-говпитываемость, воздухопроницаемость, фильтрующие и механические свойства.

На втором этапе изучали эффективность местного использования отобранных перевязочных средств для покрытия гнойных плоскостных ран у крыс (60 беспородных белых крыс самцов, массой 250,0±20,0 г). Экспериментальная плоскостная полнослойная кожно-мышечная гнойная рана воспроизводилась животным по методике, разработанной в лаборатории экспериментальной хирургии и патофизиологии ЦНИЛ Московской медицинской академии им. И.М. Сеченова в модификации М.П. Толстых. Распределение животных на группы в зависимости от применяемого раневого покрытия представлено в таблице 1.

Таблица 1

Распределение животных второй серии опытов по группам лечения

Группа животных	Метод лечения	Количество крыс
Контрольная группа	«Медитекс»	20
1-я опытная	ДАЦПВП 4:1	20
2-я опытная	ДАЦПВП 5:1	40

Местное лечение гнойных ран начинали на 3-и сутки от момента нанесения раны и развития гнойного процесса. Увлажненные физиологическим раствором, салфетки апплицировали на раневую поверхность на 1-и сутки. В среднем на одну крысу использовали 3–4 апплицированные салфетки. До перехода раневого процесса во вторую фазу перевязки животных производили ежедневно. Дальнейшее лечение осуществляли мазевыми повязками. Крыс забивали путем декапитации на 3, 7, 14, 21 сутки.

Характеристика используемых в работе методов исследования физико-механических показателей

Комплексную оценку физико-механических показателей микроволнистых раневых покрытий, выработанных методом ЭФВ-процесса, осуществляли по результатам изучения влаговпитываемости, воздухопроницаемости, фильтрующих и механических свойств. Упомянутые физико-механические показатели перевязочных средств определяли совместно со специалистами НИФХИ им. Л.Я. Карпова, путем использования декретированных методов, приведенных в нормативно-технической документации на перевязочные изделия (ГОСТ 3811-72, ГОСТ 12088-77, ГОСТ 3816-81).

При определении свойств материала «Медитекс» исследованиям подвергался только гидрофильный слой, защитный слой и гидрофобная сетка удалялись.

Для всех микроволнистых материалов измеряли диаметр волокон, определяли значение максимального, минимального и среднего диаметров волокна (выборка составляла 15 волокон, измерения проводили на оптическом микроскопе), а также поверхностная плотность.

Для определения влаговпитываемости использовали следующую методику – образец материала площадью примерно 30 см2, предварительно взвешенный и измеренный, помещали в чашку Петри с дистиллированной водой на 30 минут. Затем, помещали на 15 секунд на кусок батиста, после чего взвешивали на аналитических весах. Одновременно исследовали три образца одного материала, а результатом служило среднее значение.

Определение капиллярности проводили по методике указанной в ГОСТ 3816-81, в качестве жидкости использовали дистиллированную воду. После 60-минутной экспозиции измеряли высоту подъема жидкости в мм.

Для определение воздухопроницаемости у испытываемых материалов использовали значение их стандартного сопротивления, то есть величину сопротивления слоя материала потоку воздуха при линейной скорости 1 см/с, выраженная в мм вод. ст.

Для определения механических характеристик перевязочных материалов мы использовали разрывную машину РМ-3, оснащенную самописцем (вместо РТ–250), а в остальном руководствовались указаниями ГОСТ 15902.3–79.

Определение коэффициента проскока проводилось путем измерения по стандартному масляному туману с радиусом частиц 0,17 мкм (наиболее проникающие частицы при скорости фильтрации 1 см/с) на нефелометре ФАН–58.

Клиническая оценка раневого процесса на экспериментальных животных

Клинические наблюдения за раневым процессом осуществляли у экспериментальных животных с учетом выраженности и продолжительности воспалительных явлений в области раны (отек, гиперемия, инфильтрация параульнар-ных тканей, количество и характер гнойного отделяемого, сроки появления грануляции и эпителизации, состояние дна и стенок раны, сроки отторжения струпа и полного заживления).

Цитологический метод исследований

В работе использовали метод мазков-отпечатков с раневой поверхности, разработанный М.П. Покровской и М.С. Макаровой (1942). Мазки-отпечатки брали при каждой перевязке после предварительного удаления гноя с поверхности ран на 3-и, 7-е, 14-е и 21-е сутки с момента начала лечения. При исследовании учитывали динамику неизмененных и измененных нейтрофилов, незрелых моно- нуклеарных элементов, макрофагов, юных и зрелых фибробластов и фиброцитов. При подсчете цитограммы использовали масляную иммерсию. В каждом мазке учитывали по 400 клеток.

Гистохимические исследования тканей из области плоскостной гнойной раны у крыс проводили на 3, 7, 14, 21 сутки после начала лечения. Биопсионный материал фиксировали в жидкости Корнуа в течение 2 часов и заливали в парафин. Срезы толщиной 5–7 микрон окрашивали гемотоксилин-эозином, пикрофуксином по ван-Гизону на коллагеновые волокна, фукселином на эластические волокна, импрегнировали серебром по Гомори для выявления аргирофильных структур. Использовали также гистохимические методы: окраска толуидиновым синим, выявление глюкозамингликанов и их комплексов с белками (протеин-гликаны), Пас-реакция для выявления гликогена и гликопротеинов, реакция Браше для выявления РНК и реакция Фельгена для выявления ДНК в клетках.

Количественный бактериальный контроль обсеменения ран изучали методом E.D. Rotheram на3, 5, 10 и 15 сутки с момента начала лечения в ГНИИИИ ВМ МО РФ. Остальные животные из опыта выводились методом декапитации.

Результаты исследований и их обсуждение

Испытание перевязочных материалов по влаговпиты-ваемости показали что:

• 1.    Влаговпитываемость, выраженная в г/см², зависит от толщины слоя материала, и, следовательно, этот параметр не является универсальным и требует для сравнения значение плотности материала.

• 2.    Влаговпитываемость непосредственно зависит от диаметра волокон, из которых изготовлен материал. Влияние диаметра может превалировать над концентрацией ПВП, т.е. изменение влаговпитываемости больше в случае увеличения диаметра волокна.

Анализ показателей капиллярности микроволокнистых раневых покрытий выявил, что после 60-минутной экспозиции высота подъема жидкости составила для «Меди-текса» 32 мм, а для материалов группы ДАЦПВП – 25 мм. По нашему мнению, меньшее значение капиллярности у ДАЦПВП объясняется тем, что указанные материалы имеют значительно меньшую плотность (от 2,4 до 11,2 мг/см2), по сравнению с «Медитексом» (17,0 мг/см2).

По результатам исследования воздухопроницаемости микроволокнистых раневых покрытий установлено, что стандартное сопротивление волокнистого слоя «Медитек-са» составляет – 0,17 мм водн. ст., а микроволокнистые покрытия имели стандартное сопротивление 0,17 мм водн. ст., что по степени газообмена нетканые полотна на основе ЭВФ-процесса в 2,5 раза превышают нетканый материал, выработанный методом холстопрошива.

Результаты определения разрывной нагрузки (н/см2) и удлинения при разрыве микроволокнистых раневых покрытий представлены в таблице 2.

Таблица 2

Показатели разрывной нагрузки нетканых полотен «Медитекс» и ДАЦПВП

Марка материала	Разрывная нагрузка	Количество крыс
н/см2	Относительное удлинение, %	20
«Медитекс»	89	30
Группа перевязочных средств ДАЦПВП	311	30

Следовательно, данные значения показывают, что разрывная длина волокон перевязочного средства на основе ЭФВ-процесса почти в 3,5 раза превышает разрывную длину волокон «Медитекса».

Анализ результатов изучения физико-механических характеристик исследуемых перевязочных материалов позволяет заключить, что нетканые полотна на основе ЭФВ-процесса с использованием формовочного раствора из ДАЦ и ПВП в соотношении 4:1 (поверхностной плотностью материала 2,4 мг/см2, перевязочный материал ДАЦПВП 4:1) и 5:1 (поверхностная плотность 11,2 4 мг/см2, перевязочное средство ДАЦПВП 5:1), (сорбционная активностью 27 и 30 г/г соответственно) обладают более высокими прочностными свойствами, влаговпитываемостью и капиллярностью по сравнению с «Медитексом». Средний диаметр волокон изучаемых перевязочных средств был 5 мкм.

Результаты бактериологических испытаний микро-волокнистых перевязочных материалов (ДАЦПВП 4:1 и ДАЦПВП 5:1)

Во всех случаях, через час после инкубации в термостате при температуре 37°С, в опытных чашках Петри, содержащих питательную среду с образцами изучаемых перевязочных материалов, колоний микроорганизмов было меньше по сравнению с раневым покрытием «Медитекс». При этом процент разности количества колоний микроорганизмов между контрольной и опытными чашками (раневые покрытия ДАЦПВП 4:1 и ДАЦПВП 5:1) был 14,16%. Полученные в ходе исследования данные свидетельствуют, что нетканые материалы «Медитекс» и группы ДАЦПВП обладают некоторым бактериостатическим действием на рост и развитие микроорганизмов тест-культуры. В среднем, процент разности колоний, выросших в опытах с ДАЦПВП 4:1, был 83,9%, а в случае применения ДАЦПВП 5:1 – 84,82%.

Результаты цитологических исследований мазков отпечатков ран

В первые сутки лечения во всех группах животных обнаруживалась картина острого воспаления. Цитологически это характеризовалось присутствием в микробиологическом спектре раневой инфекции грамотрицательной флоры (++ и +++). Незавершенный фагоцитоз в нейтрофильных лейкоцитах (5–7,2%) и макрофагах имелся исключительно за счет грамотрицательных возбудителей.

В контрольной группе животных, в процессе лечения гнойных ран перевязочным средством «Медитекс», цитологическая картина раневого экссудата свидельствовала о вялотекущем воспалительном процессе. Сроки очищения ран от девитализированных тканей и микроорганизмов были растянуты вследствие ингибиции фагоцитоза нейтрофильными лейкоцитами. Большое количество нейтрофилов и их измененных форм при незначительном содержании макрофагов и клеток фибробластического ряда указывало на замедление пролиферативной фазы воспаления.

В группах животных, леченных перевязочными средствами ДАЦПВП 4:1 и ДАЦПВП 5:1, наблюдалась картина, характерная для воспалительного процесса: большое количество нейтрофилов в состоянии незавершенного фагоцитоза и колоний микроорганизмов, высокий уровень содержания дистрофически измененных лейкоцитов. Однако упомянутая цитологическая картина была менее выражена по сравнению с таковой у контрольных животных. К третьим суткам лечения у крыс упомянутых групп сравнения наблюдалось уменьшение количества нейтрофильных лейкоцитов в поле зрения (в случае использования ДАЦПВП 5:1 до 20,6±1,6%, а при применении ДАЦПВП 4:1 до 22,1±1,2%).

Результаты бактериологических исследований раневой поверхности гнойных ран

Через 48 часов после нанесения травмы и инфицирования модель гнойной раны представляла собой очаг острого гнойного воспаления со степенью микробной обсеменен-ности 109 колониеобразующих единиц (КОЕ) в 1 мл раневого отделяемого.

На 3 сутки лечения раневая поверхность у крыс контрольной группы характеризовалась микробной обсеме-ненностью, значительно превышающей критический уровень (108-9 КОЕ/мл). В то же время у животных, леченных перевязочными материалами ДАЦПВП 4:1 и ДАЦПВП 5:1, раневые поверхности имели микробную обсемененность, не превышавшую в большинстве случаев 108 КОЕ в 1 мл раневого отделяемого.

К пятым суткам лечения в контрольной группе животных число КОЕ микроорганизмов в мл раневого отделяемого снизилось до 107 и статистически достоверно отличаясь от показателей первых суток наблюдения (р<0,05). В то же время микробиологические исследования раневой поверхности крыс второй опытной группы выявили снижение числа микробных тел до критического уровня (105 КОЕ/мл, p<0,05). Использование перевязочного средства ДАЦПВП 4:1 к существенному снижению микробной обсемененности раневой поверхности в данный срок исследования не приводило (107 КОЕ/мл).

На десятые сутки лечения в контрольной группе животных отмечается тенденция к возрастанию степени микробной обсемененности ран, что, по-видимому, связано с возникновением ассоциированной микробной флоры. К данному сроку исследования в контрольной группе животных число микробных тел в 1 мл раневого экссудата было 108 КОЕ/мл. В то же время в первой и второй опытных группах микробная обсемененность ран сохранялась на уровне критического (105 КОЕ) и статистически достоверно отличалась от показателей контрольной группы (р<0,05).

К пятнадцатым суткам лечения степень микробной об-семененности ран крыс, лечение которых осуществляли путем использования перевязочного средства «Медитекс», достигла критического уровня и составляла у большинства животных 105 КОЕ/мл. В опытных группах микробная обсе-мененность ран была ниже критической и, у всех животных не превышала 103-4 КОЕ в 1мл раневого отделяемого.

Гистологические и гистохимические исследования гнойных ран

На 3 сутки после операции, как и в контрольных группах, поверхность раневого дефекта представлена лейкоцитарнофибринозным слоем, в котором определяются отдельные колонии микроорганизмов. В отдельных участках иногда встречаются остатки исследуемых раневых покрытий группы ДАЦПВП, окруженные нейтрофильными лейкоцитами и макрофагами.

Следует отметить, что по сравнению с контрольной группой в опытных группах животных отмечается некоторое увеличение в раневом дефекте макрофагальных элементов, что возможно является ответной реакцией на присутствие в ране фрагментов раневых покрытий ДАЦПВП. Кроме того, в краях раневого дефекта вблизи сосудистых элементов наблюдается некоторое увеличение фибробластических элементов, отличающихся пиронинофилией цитоплазмы и ядрышек при обработке срезов по Браше. Следует отметить, что это больше характерно для животных, леченных раневым покрытием ДАЦПВП 5:1.

На 7 сутки после начала лечения в ране наблюдается формирование островков грануляционной ткани типичного строения. Однако эти процессы по сравнению с контрольной группой животных протекают более активно, с формированием слоя вертикальных сосудов, эндотелий которых при окрашивании срезов по Браше отличается выраженной пиронинофилией цитоплазмы. Между капиллярами обнаруживаются многочисленные клеточные элементы макрофагального ряда с примесью лимфоцитов и нейтрофилов.

В части этих клеток выявляются ШИК-положительные зерна гликогена. Глубже расположенный слой горизонтальных фибробластов грануляционной ткани имеет более зрелый характер по сравнению с контрольными ранами, заживающими под струпом. Он представлен 2–5 рядами фибробластов, ориентированных параллельно поверхности раны. Здесь же выявляются метахромазия межклеточного матрикса, обусловленная активацией синтеза фибробластами кислых гликозамингликанов, а также незрелые аргирофильные коллагеновые волоконца, встречаются многочисленные макрофаги, нейтрофильные лейкоциты не многочисленны.

Поверхностный лейкоцитарно-фибринозный слой грануляционной ткани представлен фрагментированным фибринозным экссудатом, нейтрофильными лейкоцитами и остатками тканевого детрита. В нем иногда определяются остатки раневых покрытий ДПЦПВП, окруженных нейтрофилами и макрофагами.

В краевых участках раны наблюдается регенерация поврежденного эпидермиса, проявляющаяся врастанием тонкого пласта малодифференцированных эпителиальных клеток.

Следует отметить, что так же, как и контрольной группе исследования, в ряде препаратов в грануляционной ткани встречаются микроабсцессы (больше у животных, леченных раневым покрытием ДАЦПВП 4:1).

На 14-е сутки после начала лечения отмечается постепенное созревание новообразованной грануляционной ткани, причем это созревание протекает несколько более активно по сравнению с контрольными ранами.

Поверхность раны представлена фрагментированным лейкоцитарно-фибринозным слоем, в котором определяются элементы применявшегося покрытия, резорбируемого макрофагами.

Изменяется соотношение слоев в грануляционной ткани: уменьшается площадь вертикальных сосудов и увеличивается площадь слоя горизонтальных фибробластов. В наружных участках слоя вертикальных сосудов преобладают нейтрофильные лейкоциты, в глубоких – макрофаги и фибробласты. Увеличение числа последних объясняет более активное протекание процессов фибриллогенеза, при этом по сравнению с контрольной группой животных чаще определяются коллагеновые волокна, в том числе относительное зрелые, окрашиваемые по ван-Гизону в красный цвет. В краях раневого дефекта регенерация поврежденного эпидермиса протекает более активно, по сравнению с контрольными ранами, при этом новообразованный пласт малодифференцированных эпителиальных клеток на большем протяжении покрывает поверхность раневого дефекта.

На 21 сутки лечения раневой дефект в опытных группах выполнен созревающей грануляционной тканью, подвергающейся фиброзной трансформации с формированием зрелых фуксинофильных пучков коллагеновых волокон в дерме, а поверхность раны представлена зрелым эпителиальным пластом.

При заживлении гнойных ран под микроволокнистыми раневыми покрытиями по данным прижизненной контактной люминесцентный микроскопии и морфологических исследований отмечено ослабление микроциркуляторных изменений, активируются, как это показывали морфологические исследования, репаративные процессы, заключающиеся в активации, дифференцировке, пролиферации и синтетической активности фибробластов, фибриллогенезе и эпителизации раневого дефекта, что приводит к сокращению сроков заживления ран.

Таким образом, несмотря на наличие обычной стереотипной схемы заживления экспериментальных гнойных ран при использовании 3 сравнительных типов раневых покрытий, установлено, что в случае использования ДАЦПВП в соотношении 5:1, все эти процессы протекают в 1,5 раза быстрее (р<0,05), чем в других сравнительных группах.

Клиническая оценка процессов репарации гнойных ран у крыс, леченных микроволокнистыми раневыми покрытиями

Нами отмечена определенная зависимость течения раневого процесса от вида используемого нами раневого покрытия, отражением которой являются сроки клинических проявлений фаз раневого процесса. В группе животных, у которых в качестве перевязочного материала использовали «Медитекс», купирование перифокального воспаления наступило через 10,1±0,5 сут., очищение раны от гнойнонекротического процесса – на 14,3±0,6 сут., появление грануляций нами отмечено на 14,3±0,5 сут., начало эпителиза-ции – 14,3±0,5 сут.

В группе животных, у которых в качестве перевязочного материала использовали ДАЦПВП 4:1, эти сроки были на 2–3 дня короче.

Лучшие результаты были нами получены в группе животных, у которых в качестве перевязочного материала использовали ДАЦПВП в соотношении 5:1, а именно: сроки купирования перифокального воспаления составили 7,1±0,4 сут., очищение раны от гнойно-некротического процесса – 7,3±0,4 сут., появление грануляций – 7,1±0,4 сут., начало эпителизации – 7,1±0,4 сут.

Средние сроки отторжения первичного струпа у животных, леченных ДАЦВПВ 5:1 и ДАЦПВП 4:1, составили 7,3 ± 0,5 и 10,9±0,3 суток, а средние сроки полного заживления – 21,5±0,5 и 24,2±0,7 суток соответственно. В контрольной группе крыс эти сроки были больше и статистически достоверно отличались от показателей опытных групп животных (р<0,05). Средний срок очищения ран от гнойных и некротических тканей составил 14,3±0,2 суток, а полное заживление наблюдалось только на 26,8±0,8 сутки лечения.

Наибольшее ускорение заживления гнойных ран отмечено при местной терапии многослойным перевязочным материалом ДАЦПВП 5:1 (5,8%). Лечение гнойных ран у крыс перевязочным средством ДАЦПВП 4:1 было менее эффективным – ускорение заживления составило 4,7%.

Планиметрические исследования показали, что к десятым суткам лечения использование ДАЦПВП 5:1 и ДАЦПВП 4:1 обусловило сокращение площади экспериментальных ран у животных до 70±2,4 и 84,3±1,5 мм2 соответственно. В то же время у крыс контрольной группы животных площадь раневой поверхности все еще была значительной и статически достоверно отличалась от показателей опытных групп (117,5±7,8 мм2, р<0,05) (табл. 3).

К 15 суткам лечения наблюдалось дальнейшее уменьшение площади ран у животных контрольной и опытных групп. К данному сроку исследования площадь ран у крыс, леченных местным применением повязок на основе ЭФВ-процесса (первая и вторая опытные группы), не превышала 46,9±1,6 мм2, статистически достоверно отличаясь от контрольной группы сравнения (р<0,05).

Результаты наших исследований показали, что к двадцатым суткам лечения у крыс первой опытной группы раневые дефекты не превышают 32,2±1,3 мм2, а местное применение перевязочного средства ДАЦПВП 4:1 обеспечивает сокращение площади ран до 21,3±1,6 мм2, что статистически достоверно больше (р<0,05) по сравнению с предыдущей опытной группой.

Таким образом, полученные результаты дают основание считать, что лечение гнойных ран крыс микроволокнисты-ми перевязочными средствами более эффективно по сравнению с перевязочным материалом «Медитекс».

Анализируя эти данные, видно, что перевязочные материалы ДАЦПВП 4:1 и ДАЦПВП 5:1 обусловили очищение раневой поверхности от гнойно-некротических масс на трое суток раньше по сравнению с «Медитексом». Из изученных раневых покрытий наиболее эффективным является перевязочный материал ДАЦПВП 5:1, позволяющий добиться полного заживления ран на трое суток раньше по сравнению с ДАЦПВП 4:1 (р<0,05).

Местное лечение гнойных ран микроволокнистым раневыми покрытиями ДАЦПВП 5:1 способствует ослаблению нарушений микроциркуляторного русла, дистрофических

Таблица 3

Динамика уменьшения площади ран в результате проводимого лечения

Группа животных	Метод лечения	Площадь ран (мм2 ) М±m
		10 сутки	15 сутки	20 сутки	25 сутки
Контрольная	«Медитекс»	117,5±7,8	63,2±2,4	41,3±2,4	11,5±17
1-я опытная	ДАЦПВП 4:1	84,3±1,5*	46,9±1,5#	32,2±1,3#	–
2-я опытная	ДАЦПВП 5:1	70,7±2,4*	38,4±1,6*	21,3±1,6 *	–

Отличия статистически достоверны (р<0,5) при сравнении:

* – с контрольной группой;

# – c первой опытной группой.

и некротических изменений в области повреждения. При этом в более короткие сроки, по сравнению с ДАЦПВП 4:1, наблюдается ограничение первичного некроза, быстрое его отторжение и уменьшение микробной обсемененности раневой поверхности.

Морфологические исследования показали, что при заживлении гнойных ран под микроволокнистыми раневыми покрытиями наблюдается ослабление микроциркуляторных изменений и воспалительной реакции при одновременном более раннем формировании и созревании грануляционной ткани. При этом на фоне ускорения очищения раны от раневого детрита и микроорганизмов, восстановления нарушенной микроциркуляции, ослабления воспалительных изменений активируются регенеративные процессы, заключающиеся в активации дифференцировки, пролиферации и синтетической активности фибробластов, эпителизации раневого дефекта, что приводит к сокращению сроков заживления ран. Несмотря на наличие обычной стереотипной схемы заживления экспериментальных гнойных ран при использовании 3-х сравнительных типов раневых покрытий, установлено, что в случае использования ДАЦПВП в соотношении 5:1, все эти процессы протекают в 1,5 раза быстрее (р<0,05).

Выводы

• 1.    Таким образом, анализ результатов изучения физикомеханических характеристик исследуемых перевязочных материалов позволяет заключить, что новые микроволокнистые раневые покрытия, выработанные на основе ЭФВ-процесса, обладают высокими прочностными свойствами, влаговпиты-ваемостью и капиллярностью, превосходят по фильтрующей способности традиционные раневые покрытия.

• 2.    Лечебную эффективность микроволокнистого раневого покрытия обеспечивают особенности микроструктуры нетканых полотен, характеризующихся наличием минимальных расстояний между отдельными волокнами (1– 3 мкм), что обеспечивает свободное прохождение воздуха, но задерживает пылевые, водные частицы и микроорганизмы и обладают выраженной сорбционной активностью, что способствует уменьшению микробной обсемененности раневой поверхности.

• 3.    Использование микроволокнистых перевязочных средств, созданных на основе метода электроформирования волокнообразующих полимеров, в лечении гнойных ран, по данным морфологических, планиметрических и бактериологических исследований, приводят к более быстрому (в 1,5 раза по сравнению с «Медитексом») исчезновению признаков воспаления (отек, гиперемия), очищению ран от раневого детрита и колоний микроорганизмов (р<0,05) и сокращению сроков заживления экспериментальной гнойной раны на трое суток.

• 4.    Микроволокнистые раневые покрытия, созданные на основе ЭФВ-процесса, по своей лечебной эффективности значительно превосходят традиционные раневые покрытия и могут быть рекомендованы к клинической апробации.