Экспрессия генов, ассоциированных с иммунитетом, в тканях слепых отростков кишечника и поджелудочной железы цыплят-бройлеров (Gallus gallus L.) при экспериментальном Т-2 токсикозе

Автор: Йылдырым Е.А., Грозина А.А., Вертипрахов В.Г., Ильина Л.А., Филиппова В.А., Лаптев Г.Ю., Бражник Е.А., Калиткина К.А., Тарлавин Н.В., Дубровин А.В., Новикова Н.И., Тюрина Д.Г.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Микотоксикозы

Статья в выпуске: 4 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Значительная часть кормов для сельскохозяйственной птицы загрязнена Т-2 токсином. У птиц иммунная система представляет собой одну из мишеней для этого микотоксина. Однако результаты изучения действия Т-2 токсина на изменение функциональной активности генов, связанных с иммунной системы, у птиц крайне ограничены. В представляемом исследовании мы впервые показали, что активация в тканях поджелудочной железы генов регуляторных молекул развития воспалительной реакции ( IL6 и PTGS2 ), генов, связанных с клеточной гибелью ( Casp6 ), а также генов антимикробных факторов (прежде всего AvBD10 ) может служить ранним прогностическим маркером Т-2 токсикоза у бройлеров. Цель работы заключалась в оценке влияния Т-2 токсина на экспрессию вовлеченных в реакции иммунной системы генов в тканях слепых отростков кишечника и поджелудочной железы. Из бройлеров кросса Смена 8 сформировали четыре группы: I - контрольная, птица получала рацион без добавления Т-2 токсина, II - получала рацион с добавлением Т-2 токсина в количестве 100 мкг/кг (1ПДК), III - 200 мкг/кг (2ПДК), III опытная - 400 мкг/кг (4ПДК) (виварий ФНЦ ВНИТИП РАН, 2020 год). Длительность эксперимента - с 30- до 50-суточного возраста птицы, основной рацион соответствовал требованиям по кормлению кросса с учетом возраста. Анализировали активность генов, ассоциированных с воспалительной реакцией, апоптозом, а также с антимикробной и антивирусной защитой, - интерлейкина 6 IL6 , интерлейкина 8 IL8 , интерферона 7 IRF7 , простагландин-эндопероксид-синтазы 2 (циклооксигеназы) PTGS2 , β-дефензина 9 AvBD9 ( Gal9 ), β-дефензина 10 AvBD10 ( Gal10 ) и каспазы 6 Casp6 . Референсным служил ген белка бета-актина ACTB . Режим и условия ПЦР-амплификации соответствовали предложенным разработчиками праймеров. Относительный уровень экспрессии оценивали с использованием метода 2-∆∆Ct. Для сопоставления экспрессии генов и биохимических показателей крови применили метод анализа главных компонент (PCA). Полученные нами данные свидетельствуют о модуляции экспрессии генов, ассоциированных с иммунитетом, в изученных тканях под воздействием Т-2 токсина. При экспериментальном Т-2 токсикозе у бройлеров активировалась (р ≤ 0,05) экспрессия генов провоспалительного цитокина IL6 и гена PTGS2 циклооксигеназы, участвующей в регуляции воспаления. Это может иметь неблагоприятные последствия для здоровья и продуктивности птицы, поскольку гиперпродукция провоспалительных цитокинов вовлечена в патогенез ряда заболеваний. Усиление (до 41,7-кратного, р = 0,0005) экспрессии гена PTGS2 в поджелудочной железе по сравнению с контролем наблюдалось во всех опытных группах. Также во всех опытных группах в тканях слепых отростков кишечника экспрессия гена Casp6 , ассоциированного с фактором апоптоза, снижалась (максимально в 12,5 раза, р = 0,02) по сравнению с контролем. В тканях поджелудочной железы наблюдалось, наоборот, резкое повышение экспрессии гена Casp6 при увеличении концентрации Т-2 токсина в кормах (р ≤ 0,0008). Во II группе экспрессия повышалась в 22,4 раза (р = 0,0008), в III группе - в 715,8 раза (р = 0,0003), в IV - в 31288,3 раза (р = 0,0003) по сравнению с контролем. В тканях слепых отростков кишечника бройлеров из III и IV групп экспрессия генов AvBD9 и AvBD10 снижалась по сравнению с контролем в 2,1-5,3 раза (р ≤ 0,05). В тканях поджелудочной железы, напротив, экспрессия этих генов во всех опытных группах значительно активировалась по сравнению с контролем (р ≤ 0,04). AvBD9 и AvBD10 - это гены, ассоциированные у птиц с синтезом β-дефензинов, которые связаны с усилением бактериостатической активности в отношении многих патогенов. В слепых отростках кишечника бройлеров из II группы происходило 3-кратное (р = 0,03) угнетение экспрессии гена IRF7 по сравнению с контролем. Это может иметь негативные последствия для организма, поскольку ген IRF7 связан с синтезом регуляторного фактора интерферона 7, участвующего в противовирусной защите. В целом ткани поджелудочной железы оказались намного более чувствительны к воздействию Т-2 токсина, так как экспрессия практически всех исследованных генов значительно усиливалась по сравнению с таковой в тканях слепых отростков кишечника. Обращает на себя внимание повышение частоты апоптоза, с которым тесно связана активация каспазы, в тканях поджелудочной железы. Эта разница в выраженности иммунного ответа может быть обусловлена функциональным отличием кишечника от поджелудочной железы. C применением метода главных компонент (PCA) было продемонстрировано, что уровень экспрессии генов PTGS2 в поджелудочной железе, IL6 , PTGS2 , IL8 , IRF7 , AvBD9 , AvBD10 и Casp6 в слепых отростках кишечника бройлеров, а также содержание в крови общего белка, глюкозы, триглицеридов, активность щелочной фосфатазы и трипсина и соотношение активности этих ферментов находились в тесной взаимосвязи.

Еще

Т-2 токсин, микотоксикоз, бройлеры, экспрессия генов, иммунитет, цитокины, интерферон, апоптоз, β-дефензины

Короткий адрес: https://sciup.org/142231399

IDR: 142231399   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.4.664rus

Список литературы Экспрессия генов, ассоциированных с иммунитетом, в тканях слепых отростков кишечника и поджелудочной железы цыплят-бройлеров (Gallus gallus L.) при экспериментальном Т-2 токсикозе

  • Adhikari M., Negi B., Kaushik N., Adhikari A., Al-Khedhairy A.A., Kaushik N.K., Ha Choi E. T-2 mycotoxin: toxicological effects and decontamination strategies. Oncotarget, 2017, 16(8): 33933-33952 (doi: 10.18632/oncotarget.15422).
  • Creppy E.E. Update of survey, regulation and toxic effects of mycotoxins in Europe. Toxicology Letters, 2002, 127(1-3): 19-28 (doi: 10.1016/s0378-4274(01)00479-9).
  • Безбородова Н.А. Мониторинг микотоксинов в кормах и кормовом сырье и клинико-иммуно-логические особенности микотоксикозов животных в Уральском регионе. Aвтореф. канд. дис. Екатеринбург, 2009.
  • Гогина Н.Н. Мониторинг содержания микотоксинов в кормах, поступивших в испытательный центр внитип в период с 2012 по 2014 годы. Материалы XVIII Международной конференции Всемирной научной ассоциации по птицеводству (Российское отделение) «Инновационное обеспечение яичного и мясного птицеводства России». НП «Научный центр по птицеводству», п. Ржавки, 2015: 127-129.
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А., Зотова Е.В. Микотоксикологический мониторинг. Сообщение 3. Кормовая продукция от переработки зернового сырья. Ветеринария сегодня, 2020, 3(34): 213-219 (doi: 10.29326/2304-196X-2020-3-34-213-219).
  • Oswald I.P., Marin D.E., Bouhet S., Pinton P., Taranu I., Accensi F. Immunotoxicological risk of mycotoxins for domestic animals. Food Additives and Contaminants, 2005, 22(4): 354-360 (doi: 10.1080/02652030500058320).
  • Wan Q., Wu G., He Q., Tang H., Wang Y. The toxicity of acute exposure to T-2 toxin evaluated by the metabonomics technique. Molecular bioSystems, 2015, 11(3): 882-891 (doi: 10.1039/c4mb00622d).
  • Akande K.E., Abubakar M.M., Adegbola T.A., Bogoro S.E. Nutritional and health implications of mycotoxins in animal feeds: a review. Pakistan Journal of Nutrition, 2006, 5: 398-403 (doi: 10.3923/pjn.2006.398.403).
  • Maresca M., Mahfoud R., Garmy N., Fantini J. The mycotoxin deoxynivalenol affects nutrient absorption in human intestinal epithelial cells. The Journal of Nutrition, 2002, 132(9): 2723-2731 (doi: 10.1093/jn/132.9.2723).
  • Sergent T., Parys M., Garsou S., Pussemier L., Schneider Y.-J., Larondelle Y. Deoxynivalenol transport across human intestinal Caco-2 cells and its effects on cellular metabolism at realistic intestinal concentrations. Toxicology Letters, 2006, 164(2): 167-176 (doi: 10.1016/j.toxlet.2005.12.006).
  • Pang V.F., Adams J.H., Beasley V.R., Buck W.B., Haschek W.M. Myocardial and pancreatic lesions induced by T-2 toxin, a trichothecene mycotoxin, in swine. Veterinary Pathology, 1986, 23(3): 310-319 (doi: 10.1177/030098588602300312).
  • Seeboth J., Solinhac R., Oswald I.P., Guzylack-Piriou L. The fungal T-2 toxin alters the activation of primary macrophages induced by TLR-agonists resulting in a decrease of the inflammatory response in the pig. Veterinary Research, 2012, 43(1): 35 (doi: 10.1186/1297-9716-43-35).
  • Pierron A., Alassane-Kpembi I., Oswald I.P. Impact of mycotoxin on immune response and consequences for pig health. Animal nutrition (Zhongguo xu mu shou yi xue hui), 2016, 2(2): 63-68 (doi: 10.1016/j.aninu.2016.03.001).
  • Oswald I.P. Role of intestinal epithelial cells in the innate immune defence of the pig intestine. Veterinary Research, 2006, 37(3): 359-368 (doi: 10.1051/vetres:2006006).
  • Nochi T., Jansen C.A., Toyomizu M., van Eden W. The well-developed mucosal immune systems of birds and mammals allow for similar approaches of mucosal vaccination in both types of animals. Frontiers in Nutrition, 2018, 5: 60 (doi: 10.3389/fnut.2018.00060).
  • Casteleyn C., Doom M., Lambrechts E., Van den Broeck W., Simoens P., Cornillie P. Locations of gut-associated lymphoid tissue in the 3-month-old chicken: a review. Avian Pathology,2010, 39(3): 143-150 (doi: 10.1080/03079451003786105).
  • Bar-Shira E., Sklan D., Friedman A. Establishment of immune competence in the avian GALT during the immediate post-hatch period. Developmental and Comparative Immunology, 2003, 27(2): 147-157 (doi: 10.1016/s0145-305x(02)00076-9).
  • Goitsuka R., Chen C.-L.H., Benyon L., Asano Y., Kitamura D., Cooper M.D. Chicken cathelicidin-B1, an antimicrobial guardian at the mucosal M cell gateway. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2007, 104(38): 15063-15068 (doi: 10.1073/pnas.0707037104).
  • Nile C.J., Townes C.L., Michailidis G., Hirst B.H., Hall J. Identification of chicken lysozyme g2 and its expression in the intestine. Cellular and Molecular Life Sciences, 2004, 61(21): 2760-2766. (doi: 10.1007/s00018-004-4345-z).
  • Cuperus T., van Dijk A., Dwars R.M., Haagsman H.P. Localization and developmental expression of two chicken host defense peptides: cathelicidin-2 and avian β-defensin 9. Developmental and Comparative Immunology, 2016, 61: 48-59 (doi: 10.1016/j.dci.2016.03.008).
  • Gibson M.S., Kaiser P., Fife M. The chicken IL-1 family: evolution in the context of the studied vertebrate lineage. Immunogenetics, 2014, 66(7-8): 427-438 (doi: 10.1007/s00251-014-0780-7).
  • Klotman M.E., Chang T.L. Defensins in innate antiviral immunity. Nature Reviews Immunology, 2006, 6(6): 447-456 (doi: 10.1038/nri1860).
  • Lynn D.J., Higgs R., Gaines S., Tierney J., James T., Lloyd A.T., Fares M.A., Mulcahy G., O’Farrelly C. Bioinformatic discovery and initial characterisation of nine novel antimicrobial peptide genes in the chicken. Immunogenetics, 2004, 56(3): 170-177 (doi: 10.1007/s00251-004-0675-0).
  • Yacoub H.A., Elazzazy A.M., Abuzinadah O.A.H., Al-Hejin A.M., Mahmoud M.M., Harakeh S.M. Antimicrobial activities of chicken β-defensin (4 and 10) peptides against pathogenic bacteria and fungi. Frontiers in Cellular and infection Microbiology, 2015, 5: 36 (doi: 10.3389/fcimb.2015.00036).
  • Cuperus T., Coorens M., van Dijk A., Haagsman H.P. Avian host defense peptides. Developmental and Comparative Immunology, 2013, 41(3): 352-369 (doi: 10.1016/j.doi.2013.04.019).
  • Kapczuk P., Kosik-Bogacka D., Kupnicka P., Metryka E., Simińska D., Rogulska K., Skórka M., Gutowska I., Chlubek D., Baranowska-Bosiacka I. The influence of selected gastrointestinal parasites on apoptosis in intestinal epithelial cells. Biomolecules, 2020, 10(5): 674 (doi: 10.3390/biom10050674).
  • Xue C.Y., Wang G.H., Chen F., Zhang X.B., Bi Y.Z., Cao Y.C. Immunopathological effects of ochratoxin A and T-2 toxin combination on broilers. Poultry Science, 2010, 89(6): 1162-1166 (doi: 10.3382/ps.2009-00609).
  • Zeka F., Vanderheyden K., Smet E., Cuvelier C., Mestdagh P., Vandesompele J. Straightforward and sensitive RT-qPCR based gene expression analysis of FFPE samples. Scientific Reports, 2016, 6: 21418 (doi: 10.1038/srep21418).
  • Meza Cerda M.I., Gray R., Higgins D.P. Cytokine RT-qPCR and ddPCR for immunological investigations of the endangered Australian sea lion (Neophoca cinerea) and other mammals. PeerJ, 2020, 8: e10306 (doi: 10.7717/peerj.10306).
  • Laptev G.Y., Filippova V.A., Kochish I.I., Yildirim E.A., Ilina L.A., Dubrovin A.V., Brazhnik E.A., Novikova N.I., Novikova O.B., Dmitrieva M.E., Smolensky V.I., Surai P.F., Griffin D.K., Romanov M.N. Examination of the expression of immunity genes and bacterial profiles in the caecum of growing chickens infected with Salmonella enteritidis and fed a phytobiotic. Animals, 2019, 9(9): 615 (doi: 10.3390/ani9090615).
  • Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCT method. Methods, 2001, 25(4): 402-408 (doi: 10.1006/meth.2001.1262).
  • Jolliffe I.T. Principal component analysis. Springer series in statistics. New York, Springer-Verlag, 2002 (doi: 10.1007/b98835).
  • Brown S., Wilburn W., Martin T., Whalen M. Butyltin compounds alter secretion of interleukin 6 from human immune cells. Journal of Applied Toxicology, 2018, 38(2): 201-218 (doi: 10.1002/jat.3514).
  • Moldawer L.L., Gelin J., Scherstén T., Lundholm K.G.. Circulating interleukin 1 and tumor necrosis factor during inflammation. The American Journal of Physiology, 1987, 253(6): 922-928 (doi: 10.1152/ajpregu.1987.253.6.R922).
  • Cannon J.G., Tompkins R.G., Gelfand J.A., Michie H.R., Stanford G.G., van der Meer J.W., Endres S., Lonnemann G., Corsetti J., Chernow B. Circulating IL-1 and TNF in septic shock and experimental endotoxin fever. Journal of Infectious Diseases, 1990, 161(1): 79-84 (doi: 10.1093/infdis/161.1.79).
  • Lotze A.T.M. The cytokine handbook. Academic Press, 2003.
  • Broom L.J., Kogut M.H. Inflammation: friend or foe for animal production? Poultry Science, 2018, 97(2): 510-514. (doi: 10.3382/ps/pex314).
  • Moldawer L.L., Andersson C., Gelin J., Lundholm K.G. Regulation of food intake and hepatic protein synthesis by recombinant-derived cytokines. American Journal of Physiology, 1988, 254(3): 450-456 (doi: 10.1152/ajpgi.1988.254.3.G450).
  • Tracey K.J., Wei H., Manogue K.R., Fong Y., Hesse D.G., Nguyen H.T., Kuo G.C., Beut-ler B., Cotran R.S., Cerami A. Cachectin/tumor necrosis factor induces cachexia, anemia, and inflammation. Journal of Experimental Medicine, 1988, 167(3): 1211-1227 (doi: 10.1084/jem.167.3.1211).
  • Fong Y., Moldawer L.L., Marano M., Wei H., Barber A., Manogue K., Tracey K.J., Kuo G. Cachectin/TNF or IL-1 alpha induces cachexia with redistribution of body proteins. American Journal of Physiology, 1989, 256(3-Pt 2): R659-665 (doi: 10.1152/ajpregu.1989.256.3.R659).
  • Prescott S.M., Fitzpatrick F.A. Cyclooxygenase-2 and carcinogenesis. Biochimica et Biophysica Acta, 2000, 1470(2): 69-78 (doi: 10.1016/s0304-419x(00)00006-8).
  • Thuresson E.D., Lakkides K.M., Rieke C.J., Sun Y., Wingerd B.A., Micielli R., Mulichak A.M., Malkowski M.G., Garavito R.M., Smith W.L. Prostaglandin Endoperoxide H Synthase-1: the functions of cyclooxygenase active site residues in the binding, positioning, and oxygenation of arachidonic acid 210. Journal of Biological Chemistry, 2001, 276(13): 10347-10357 (doi: 10.1074/jbc.M009377200).
  • Yan H., Takamoto M., Sugane K. Exposure to Bisphenol A prenatally or in adulthood promotes T(H)2 cytokine production associated with reduction of CD4CD25 regulatory T cells. Environmental Health Perspectives, 2008, 116(4): 514-519 (doi: 10.1289/ehp.10829).
  • Kuo C.-H., Hsieh C.-C., Kuo H.-F., Huang M.-Y., Yang S.-N., Chen L.-C., Huang S.-K., Hung C.-H. Phthalates suppress type I interferon in human plasmacytoid dendritic cells via epigenetic regulation. Allergy, 2013, 68(7): 870-879 (doi: 10.1111/all.12162).
  • Feng Y., Tian J., Xie H.Q., She J., Xu S.L., Xu T., Tian W., Fu H., Li S., Tao W., Wang L., Chen Y., Zhang S., Zhang W., Guo T.L., Zhao B. Effects of acute low-dose exposure to the chlorinated flame retardant Dechlorane 602 and Th1 and Th2 immune responses in adult male mice. Environmental Health Perspectives, 2016, 124(9): 1406-1413 (doi: 10.1289/ehp.1510314).
  • Pestka J.J., Zhou H.-R., Moon Y., Chung Y.J. Cellular and molecular mechanisms for immune modulation by deoxynivalenol and other trichothecenes: unraveling a paradox. Toxicology Letters, 2004, 153(1): 61-73 (doi: 10.1016/j.toxlet.2004.04.023).
  • Alnemri E.S., Livingston. D.J., Nicholson D.W., Salvesen G., Thornberry N.A., Wong W.W., Yuan J. Human ICE/CED-3 protease nomenclature. Cell, 1996, 87: 171 (doi: 10.1016/s0092-8674(00)81334-3).
  • Krammer P.H. CD95’s deadly mission in the immune system. Nature, 2000, 407(6805): 789-795 (doi: 10.1038/35037728).
  • Savino W., Dardenne M. Neuroendocrine control of thymus physiology. Endocrine Reviews, 2000, 21(4): 412-443 (doi: 10.1210/edrv.21.4.0402).
  • Lv Q.-Y., Wan B., Guo L.-H., Zhao L., Yang Y. In vitro immune toxicity of polybrominated diphenyl ethers on murine peritoneal macrophages: apoptosis and immune cell dysfunction. Chemosphere, 2015, 120: 621-630 (doi: 10.1016/j.chemosphere.2014.08.029).
  • Wu B., Guo H., Cui H., Peng X., Fang J., Zuo Z., Deng J., Wang X., Huang J. Pathway underlying small intestine apoptosis by dietary nickel chloride in broiler chickens. Chemico-biological Interactions, 2016, 243: 91-106 (doi: 10.1016/j.cbi.2015.11.010).
  • Huang F.-M., Chang Y.-C., Lee S.-S., Ho Y.-C., Yang M.-L., Lin H.-W., Kuan Y.-H. Bisphenol A exhibits cytotoxic or genotoxic potential via oxidative stress-associated mitochondrial apoptotic pathway in murine macrophages. Food and Chemical Toxicology, 2018, 122: 215-224 (doi: 10.1016/j.fct.2018.09.078).
  • Hwang J.K., Min K.H., Choi K.H., Hwang Y.C., Jeong I.-K., Ahn K.J., Chung H.-Y., Chang J.S. Bisphenol A reduces differentiation and stimulates apoptosis of osteoclasts and osteoblasts. Life Sciences, 2013, 93(9-11): 367-372 (doi: 10.1016/j.lfs.2013.07.020).
  • Neri M., Virzì G.M., Brocca A., Garzotto F., Kim J.C., Ramponi F., de Cal M., Lorenzin A., Brendolan A., Nalesso F., Zanella M., Ronco C. In vitro cytotoxicity of Bisphenol A in monocytes cell line. Blood Purification, 2015, 40(2): 180-186 (doi: 10.1159/000437039).
  • Mokra K., Kocia M., Michałowicz J. Bisphenol A and its analogs exhibit different apoptotic potential in peripheral blood mononuclear cells (in vitro study). Food and Chemical Toxicology, 2015, 84: 79-88 (doi: 10.1016/j.fct.2015.08.007).
  • Baker A.H., Wu T.H., Bolt A.M., Gerstenfeld L.C., Mann K.K., Schlezinger J.J. From the cover: tributyltin alters the bone marrow microenvironment and suppresses B cell development. Toxicological Sciences, 2017, 158(1): 63-75 (doi: 10.1093/toxsci/kfx067).
  • Miura K., Aminova L., Murayama Y. Fusarenon-X induced apoptosis in HL-60 cells depends on caspase activation and cytochrome c release. Toxicology, 2002, 172(2): 103-112 (doi: 10.1016/s0300-483x(01)00586-8).
  • Nagase M., Shiota T., Tsushima A., Murshedul Alam M., Fukuoka S., Yoshizawa T., Sakato N. Molecular mechanism of satratoxin-induced apoptosis in HL-60 cells: activation of caspase-8 and caspase-9 is involved in activation of caspase-3. Immunology Letters, 2002, 84(1): 23-27 (doi: 10.1016/s0165-2478(02)00127-x).
  • Pae H.O., Oh G.S., Choi B.M., Seo E.A., Oh H., Shin M.K., Kim T.H., Kwon T.O., Chunga H.T. Induction of apoptosis by 4-acetyl-12,13-epoxyl-9-trichothecene-3,15-diol from Isaria japonica Yasuda through intracellular reactive oxygen species formation and caspase-3 activation in human leukemia HL-60 cells. Toxicology in vitro, 2003, 17(1): 49-57 (doi: 10.1016/s0887-2333(02)00097-8).
  • Ihara T., Yamamoto T., Sugamata M., Okumura H., Ueno Y. The process of ultrastructural changes from nuclei to apoptotic body. Virchows Archiv, 1998, 433(5): 443-447 (doi: 10.1007/s004280050272).
  • Islam Z., Nagase M., Ota A., Ueda S., Yoshizawa T., Sakato N. Structure-function relationship of T-2 toxin and its metabolites in inducing thymic apoptosis in vivo in mice. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 1998, 62(8): 1492-1497 (doi: 10.1271/bbb.62.1492).
  • van Dijk A., Veldhuizen E.J.A., Haagsman H.P. Avian defensins. Veterinary Immunology and Immunopathology, 2008, 124(1-2): 1-18 (doi: 10.1016/j.vetimm.2007.12.006).
  • Chertov O., Michiel D.F., Xu L., Wang J.M., Tani K., Murphy W.J., Longo D.L., Taub D.D., Oppenheim J.J. Identification of defensin-1, defensin-2, and CAP37/azurocidin as T-cell chemoattractant proteins released from interleukin-8-stimulated neutrophils. Journal of Biological Chemistry, 1996, 271(6): 2935-2940 (doi: 10.1074/jbc.271.6.2935).
  • Yang D., Chertov O., Bykovskaia S.N., Chen Q., Buffo M.J., Shogan J., Anderson M., Schröder J.M., Wang J.M., Howard O.M., Oppenheim J.J. Beta-defensins: linking innate and adaptive immunity through dendritic and T cell CCR6. Science, 1999, 286(5439): 525-528 (doi: 10.1126/science.286.5439.525).
  • Niyonsaba F., Iwabuchi K., Matsuda H., Ogawa H., Nagaoka I. Epithelial cell-derived human beta-defensin-2 acts as a chemotaxin for mast cells through a pertussis toxin-sensitive and phospholipase C-dependent pathway. International Immunology, 2002, 14(4): 421-426 (doi: 10.1093/intimm/14.4.421).
  • Gupta S., Jindal N., Khokhar R.S., Asrani R.K., Ledoux D.R., Rottinghaus G.E. Individual and combined effects of ochratoxin A and Salmonella enterica serovar Gallinarum infection on pathological changes in broiler chickens. Avian Pathology, 2008, 37(3): 265-272 (doi: 10.1080/03079450802043759).
  • Elissalde M.H., Ziprin R.L., Huff W.E., Kubena L.F., Harvey R.B. Effect of ochratoxin A on Salmonella-challenged broiler chicks. Poultry Science, 1994, 73(8): 1241-1248 (doi: 10.3382/ps.0731241).
  • Oswald I.P., Desautels C., Laffitte J., Fournout S., Peres S.Y., Odin M., Le Bars P., Le Bars J., Fairbrother J.M. Mycotoxin fumonisin B1 increases intestinal colonization by pathogenic Escherichia coli in pigs. Applied and Environmental Microbiology, 2003, 69(10): 5870-5874 (doi: 10.1128/aem.69.10.5870-5874.2003).
  • Verbrugghe E., Vandenbroucke V., Dhaenens M., Shearer N., Goossens J., De Saeger S., Eeckhout M., D’Herde K., Thompson A., Deforce D., Boyen F., Leyman B., Van Parys A., De Backer P., Haesebrouck F., Croubels S., Pasmans F. T-2 toxin induced Salmonella typhimurium intoxication results in decreased Salmonella numbers in the cecum contents of pigs, despite marked effects on Salmonella-host cell interactions. Veterinary Research, 2012, 43(1): 22 (doi: 10.1186/1297-9716-43-22).
  • Ning S., Pagano J.S., Barber G.N. IRF7: activation, regulation, modification and function. Genes and Immunity, 2011, 12(6): 399-414 (doi: 10.1038/gene.2011.21).
  • Wang Y., Yang F., Yin H., He Q., Lu Y., Zhu Q., Lan X., Zhao X., Li D., Liu Y, Xu H. Chicken interferon regulatory factor 7 (IRF7) can control ALV-J virus infection by triggering type I interferon production through affecting genes related with innate immune signaling pathway. Developmental & Comparative Immunology, 2021, 119(5573): 104026 (doi: 10.1016/j.dci.2021.104026).
  • Haller O., Kochs G., Weber F. The interferon response circuit: induction and suppression by pathogenic viruses. Virology, 2006, 344(1): 119-130 (doi: 10.1016/j.virol.2005.09.024).
  • Lessard M., Savard C., Deschene K., Lauzon K., Pinilla V.A., Gagnon C.A., Lapointe J., Guay F., Chorfi Y. Impact of deoxynivalenol (DON) contaminated feed on intestinal integrity and immune response in swine. Food and Chemical Toxicology, 2015, 80: 7-16 (doi: 10.1016/j.fct.2015.02.013).
  • Nascimento A.A., Sales A., Cardoso T.R.D., Pinheiro N.L., Mendes R.M.M. Immuno-cytochemical study of the distribuition of endocrine cells in the pancreas of the Brazilian sparrow species Zonotrichia capensis subtorquata (Swaison, 1837). Brazilian Journal of Biology, 2007, 67(4): 735-740 (doi: 10.1590/s1519-69842007000400021).
  • Scaglia L., Cahill C.J., Finegood D.T., Bonner-Weir S. Apoptosis participates in the remodeling of the endocrine pancreas in the neonatal rat. Endocrinology, 1997, 138(4): 1736-1741 (doi: 10.1210/endo.138.4.5069).
  • Petrik J., Arany E., McDonald T.J., Hill D.J. Apoptosis in the pancreatic islet cells of the neonatal rat is associated with a reduced expression of insulin-like growth factor II that may act as a survival factor. Endocrinology, 1998, 139(6): 2994-3004 (doi: 10.1210/endo.139.6.6042).
  • Adams J.M., Low M.J. Gene expression profiling reveals a possible role for somatostatin in the innate immune response of the liver. Genomics Data, 2015, 5: 42-45 (doi: 10.1016/j.gdata.2015.04.029).
  • Malmstrøm M.L., Hansen M.B., Andersen A.M., Ersbøll A.K., Nielsen O.H., Jørgensen L.N., Novovic S. Cytokines and organ failure in acute pancreatitis: inflammatory response in acute pancreatitis. Pancreas, 2012, 41(2): 271-277 (doi: 10.1097/MPA.0b013e3182240552).
  • Al-Zghoul M.B., Alliftawi A.R.S., Saleh K.M.M., Jaradat Z.W. Expression of digestive enzyme and intestinal transporter genes during chronic heat stress in the thermally manipulated broiler chicken. Poultry Science, 2019, 98(9): 4113-4122 (doi: 10.3382/ps/pez249).
  • Saluja A., Saluja M., Villa A., Leli U., Rutledge P., Meldolesi J., Steer M. Pancreatic duct obstruction in rabbits causes digestive zymogen and lysosomal enzyme colocalization. Journal of Clinical Investigation, 1989, 84(4): 1260-1266 (doi: 10.1172/JCI114293).
  • Saluja A.K., Bhagat L., Lee H.S., Bhatia M., Frossard J.L., Steer M.L. Secretagogue-induced digestive enzyme activation and cell injury in rat pancreatic acini. American Journal of Physiology, 1999, 276(4): 835-842 (doi: 10.1152/ajpgi.1999.276.4.G835).
  • Dixit A., Dawra R.K., Dudeja V., Saluja A.K. Role of trypsinogen activation in genesis of pancreatitis. Pancreapedia: Exocrine Pancreas Knowledge Base, 2016 (doi: 10.3998/panc.2016.25).
  • Kisselev A.F., Garcia-Calvo M., Overkleeft H.S., Peterson E., Pennington M.W., Ploegh H.L., Thornberry N.A., Goldberg A.L. The caspase-like sites of proteasomes, their substrate specificity, new inhibitors and substrates, and allosteric interactions with the trypsin-like sites. Journal of Biological Chemistry, 2003, 278(38): 35869-35877 (doi: 10.1074/jbc.M303725200).
  • Tang X.-E., Li H., Chen L.-Y., Xia X.-D., Zhao Z.-W., Zheng X.-L., Zhao G.-J., Tang C.-K. IL-8 negatively regulates ABCA1 expression and cholesterol efflux via upregulating miR-183 in THP-1 macrophage-derived foam cells. Cytokine, 2019, 122: 154385 (doi: 10.1016/j.cyto.2018.04.028).
  • Varshney P., Narasimhan A., Mittal S., Malik G., Sardana K., Saini N. Transcriptome profiling unveils the role of cholesterol in IL-17A signaling in psoriasis. Scientific Reports, 2016, 6: 19295 (doi: 10.1038/srep19295).
Еще
Статья научная