Электронно-микроскопические особенности парафолликулярных клеток щитовидной железы крыс после 60-дневного введения тартразина и препарата мексидол®

Автор: Лузин В.И., Морозов В.Н.

Журнал: Саратовский научно-медицинский журнал @ssmj

Рубрика: Патологическая анатомия

Статья в выпуске: 2 т.19, 2023 года.

Бесплатный доступ

Цель: установить влияние чистого тартразина, вводимого в течение 60 суток, а также в комбинации с препаратом Мексидол® на структурные особенности парафолликулярных клеток щитовидной железы крыс на электронно-микроскопическом уровне. Материал и методы. Тридцать белых крыс-самцов массой 200-210 г разделены на пять групп по 6 крыс в каждой. I группа - контрольная; II и III группы - крысы в течение 60 суток получали тартразин в концентрации 750 и 1500 мг/кг; IV и V группы - в аналогичных условиях вводили Мексидол® из расчета 50мг/кг Качественные изменения парафолликулярных клеток изучали при помощи электронной микроскопии, а количественные - морфометрии. Результаты. После воздействия тартразина в цистернах гранулярной эндоплазматической сети выявлялось мелкозернистое или волокнистое содержимое, а в некоторых митохондриях - участки разрушенного матрикса. Отношение площадей эу- и гетерохроматина уменьшалось во II и III группах на 5,7 и 56,9% соответственно, а диаметр секреторных гранул - на 12,3 и 19% соответственно по сравнению с контролем. Отношение эу- и гетерохроматина в V группе увеличивалось на 79,6%, а диаметр секреторных гранул - на 8,2 и 6,5% в IV и V группах соответственно, по сравнению сданными II и III групп. Заключение. Введение тартразина в разных дозах в течение 60 дней вызывает дозозависимые качественные и количественные изменения ультраструктуры парафолликулярных клеток, а введение препарата Мексидол® на этом фоне вызывает уменьшение их выраженности.

Еще

Мексидол, морфометрия, парафолликулярные клетки, тартразин, ультраструктура, щитовидная железа

Короткий адрес: https://sciup.org/149143911

IDR: 149143911   |   DOI: 10.15275/ssmj1902194

Список литературы Электронно-микроскопические особенности парафолликулярных клеток щитовидной железы крыс после 60-дневного введения тартразина и препарата мексидол®

  • Kobun R, Shafiquzzaman S, Sharifudin MS. Review of extraction and analytical methods for the determination of tart-razine (E 102) in foodstuffs. Crit Rev Anal Chem. 2017; 47 (4): 309-24. DOI: 10.1080/10408347.2017.1287558.
  • Khayyat L, Essawy A, Sorour J, et al. Tartrazine induces structural and functional aberrations and genotoxic effects in vivo. Peer J. 2017; (5):e3041. DOI: 10.7717/peerj.3041.
  • Ovalioglu АО, Ovalioglu TC, Canaz G, et al. Effects of tartrazine on neural tube development in the early stage of chicken embryos. Turk Neurosurg. 2020; 30 (4): 583-7. DOI: 10.5137/1019-5149. JTN.28793-19.6.
  • Matsyura O, Besh L, Besh O, et al. Hypersensitivity reactions to food additives in pediatric practice: two clinical cases. Georgian Med News. 2020; (307): 91-5.
  • Bhatt D, Vyas K, Singh S, et al. Tartrazine induced neu-robiochemical alterations in rat brain sub-regions. Food Chem Toxicol. 2018; (113): 322-7. DOI: 10.1016/j.fct.2018.02.011.
  • Cemek M, Buyukokuroglu ME, Sertkaya F, et al. Effects of food color additiveson antioxidant functions and bioel-ement contents of liver, kidney and brain tissues in rats. Journal of Food and Nutrition Research. 2014; 2 (10): 686-91. DOI: 10.12691/jfnr-2-10-6.
  • Albasher G, Maashi N, Alfarraj S, et al. Perinatal exposure to tartrazine triggers oxidative stress and neurobehavioral alterations in mice offspring. Antioxidants (Basel). 2020; 9 (1): 53. DOI: 10.3390/antiox9010053.
  • Schulkin AV. Mexidol: modern aspects of the pharmaco-kinetics and pharmacodynamics. Farmateka. 2016; s4: 65-71.
  • European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purpose: Council of Europe 18.03.1986. Strasbourg, 1986; 52 p.
  • Reynolds ES. The use of lead citrate at high pH as an electron opaque stain in electron microscopy. J Cell Biol. 1963; 17(1): 208-12. DOI: 10.1083/jcb.17.1.208.
  • Dadan J, Zbucki R, Andrzejewska A, et al. Activity of thyroid parafollicular (C) cells in rats with hyperthyroidism — preliminary ultrastructural investigations. Roczniki Akademii Medycznej w Biatymstoku. 2004; 49 (1): 132-4.
  • El-Desoky GE, Wabaidur SM, AlOthman ZA, et al. Regulatory role of nano-curcumin against tartrazine-induced oxidative stress, apoptosis-related genes expression, and genotoxicity in rats. Molecules. 2020; 25 (24): 5801. DOI: 10.3390/mole-cules25245801.
  • Gonzalez-Hunt CP, Wadhwa M, Sanders LH. DNA damage by oxidative stress: Measurement strategies for two genomes. Current Opinion in Toxicology. 2018; (47): 87-94. DOI: 10.1016/j.cotox.2017.11.001.
  • Shakoor S, AN F, Ismail A, et al. Toxicity of tartrazine, curcumin and other food colorants; possible mechanism of adverse effects. Online Journal of Veterinary Research. 2019; 23 (6): 466-86.
  • Shakoor S, Ismail A, Rahman Z, et al. Impact of tartrazine and curcumin on mineral status, and thyroid and reproductive hormones disruption in vivo. International Food Research Journal. 2022; 29 (1): 186-99. DOI: 10.47836/ifrj. 29.1.20.
  • Махмуров A.M., Юлдашева M.A., Юлдашев А.Ю. Ультраструктура клеток фолликулов щитовидной железы при гипо- и гиперкальциемии. Вестник экстренной медицины. 2019; 12 (2): 55-60.
  • Alioui L, Mehedi N, Youcef В, et al. Tartrazine induced oxidative damage in mice liver and kidney. South Asian Journal of Experimental Biology. 2017; 7 (6): 271-8. DOI: 10.38150/sajeb. 7(6).
Еще
Статья научная